CC BY
50
фузин. В этих группах эффективность профилактики оказалась выше на 8 и 16 %. Применение биоинфузина эффективно и позволяет снизить количество возникновения маститов у коров опытных групп до 12 и 20 % по сравнению с традиционными методами профилактики, применяемыми в данных хозяйствах. Следовательно, биоинфузин является эффективным препаратом для профилактики острых послеродовых эндометритов у коров.
Использование биоинфузина оказало благоприятное влияние на организм животных. Исследования на Ло-бановской МТФ показали, что внутримышечное введение биоинфузина сухостойным коровам опытной группы способствует активизации показателей неспецифической резистентности.
Анализ результатов гематологических исследований свидетельствует, что у животных опытной группы за 50, 10 и через 30 дней после отёла отмечено превышение на 2,4-12,1 % содержания эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина, что свидетельствует об усилении окислительно-восстановительных процессов в организме, а также о стимулирующем влиянии биоин-фузина на процессы кроветворения.
Анализ лейкограммы животных показал, что в крови коров, которым вводили биоинфузин, за весь период исследований количество сегментоя-
Животноводство
Показатель Хозяйства, препарат
ООО «Русь» ФГУП УОХ «Липовая гора»
контрольная (препарат не применялся) опытная (биоинфузин) контрольная, (препарат не применялся) опытная (биоинфузин)
Количество животных, гол. 25 25 25 25
Заболело эндометритом, коров, % 8 (32 %) 6 (24 %) 13 (52 %) 9 (36 %)
П роф и ла ктичес кая эффектиктивность, % 68 76 48 64
Заболевания вымени: мастит, % 6 (24 %) 3 (12 %) 10 (40 %) 5 (20 %)
П роф и ла ктичес кая эффектиктивность, % 76 88 60 80
Таблица 2
Эффективность профилактики задержания последа и эндометрита у коров
при применении биоинфузина
дерных нейтрофилов возросло на 2,712,6 % (Р > 0,95), что свидетельствует об активизации неспецифического иммунного ответа организма.
Таким образом, проведённые исследования свидетельствуют о том, что применение препарата биоинфузин в дозе 2,5 мл/100 кг живой массы внутримышечно за 60, 50, 40, 30, 20, 10 дней до отёла оказало позитивное влияние на состояние клеток периферической крови.
Биоинфузин обладает выраженной эффективностью в профилактике патологии родовой деятельности (в опытных группах этот показатель составил 8 % и 16 %).
Профилактику послеродовых гинекологических заболеваний у коров следует проводить путём однократного введения препарата биоинфузин в дозе 2,5 мл/100 кг живой массы в сухостойный период один раз в 10 дней (за 60, 50, 40, 30, 20, 10 дней до отёла).
Литература
1. Топурия Л. Ю., Топурия Г. М. Влияние препаратов природного происхождения на воспроизводительную способность и иммунный статус коров // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2007. № 5. С. 52-55.
2. Методические рекомендации по практическому применению методов крио-, озоно- и аутогемотерапии и гомеопатических препаратов при профилактике и лечении гинекологических заболеваний коров // Иваново: ГНУ Ивановский НИИСХ, 2005. С. 6.
3. Рекомендации по повышению эффективности воспроизводства молочного скота // Киров: Зональный НИИСХ Северо-Востока, 2001. С. 76.
4. Методические рекомендации по коррекции системных иммунодефицитов для профилактики и терапии массовых желудочно-кишечных и респираторных болезней телят // Нижний Новгород: ГНУ НИВИ НЗ РФ, 2005. С. 27.
5. Овсянников А. И. Основы опытного дела. М.: Колос, 1976. С. 304.
6. Кондрахин И. П., Курилов Н. В. и др. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии. М., 1983. С. 63.
7. Лебедев П. Т., Усович А. Т. Методы исследования кормов органов и тканей животных. М.: Россельхозиздат, 1976. С. 423.
8. Пособие по биохимическим исследованиям крови, мочи, молока для диспансеризации с.-х. животных и оборудованию биохимических отделов ветеринарных лабораторий. Москва, 1970. С. 45.
ЭПИЗООТОЛОГИЯ НЕКРОБАКТЕРИОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ПРЕДПРИЯТИЯХ СВЕРДЛОВСКОЙ ОБЛАСТИ
С. А. МАРКОВСКАЯ,
Областная ветеринарная станция, г. Екатеринбург
А. В. МОЛОКОВА,
аспирант,
О. Г. ПЕТРОВА,
доктор ветеринарных наук, профессор, Уральская ГСХА
620075, г. Екатеринбург, ул. Карла Либкнехта, 42; тел. 8 (343) 371-33-63
№ 11-2 (77), 2010 г.
Аграрный вестник Урала
43
Ключевые слова: некробактериоз, возбудитель, благополучие.
В настоящее время Свердловская область считается благополучной по некробактериозу крупного рогатого скота, но, тем не менее, каждый год в ветеринарные лаборатории поступает патологический материал на бактериологическое исследование с подозрением на некробактериоз. В ряде хозяйств проводится вакцинация против данного инфекционного заболевания: в Богдановичевском, Сысертском, Каменском, Талицком районах. Это свидетельствует, что изучение данного заболевания в нашей области, несмотря на относительное благополучие, является актуальным. Профилактику проводят, но заболевания дистальных отделов конечностей крупного рогатого скота встречаются часто. Задачами исследований является разработка методов лечения наравне с вакцинацией, т. к. вакцинация - не самый надежный метод профилактики некро-бактериоза. Также лечение этой бактериальной инфекции не всегда дает положительный эффект, что часто связано с наложением других инфекционных заболеваний. Экономический ущерб складывается из потери продуктивности животных, падежа, вынужденного убоя, абортов, расходов на лечение и карантинирование хозяйств.
Некробактериоз - острая контагиозная болезнь всех видов животных и птиц, проявляющаяся гнойно-некротическим поражением мышечной и соединительной тканей. Поражаются преимущественно дистальные отделы конечностей, иногда слизистые оболочки рта, пищеварительного тракта, кожа вымени и половых органов. Наиболее восприимчивы к нему северные олени, крупный и мелкий рогатый скот, менее - лошади, свиньи, куры. Могут заболевать собаки, кролики, зайцы, дикие копытные, чувствителен человек. Характеризуется стационарностью.
Возбудитель - Fusobacterum necrophorum широко распространен в природе: нормальный обитатель желудочно-кишечного тракта животных присутствует в почве. Fusobacterum necrophorum - строгий анаэроб, представляет грамотрицательную, неподвижную, не образующую спор полиморфную палочку, образует ряд сильных токсинов (гемолизин, лейкоцидин, цитоплазматический токсин) и ферментов (лецитиназа, гиалуронидаза), которые разрушают клетки организма и угнетают его иммунную систему. Возбудитель некробактериоза является нормальным обитателем пищеварительного тракта здоровых животных, он с фекалиями выделяется во
Necrobakteriosis, the activator, well-being.
внешнюю среду, постоянно инфицируя стойла, подстилку. Причиной, способствующей распространению болезни среди крупного рогатого скота, считают нарушения ветеринарно-санитарных и технологических нормативов, заключающиеся в высокой концентрации животных на ограниченных площадях, неправильной системе их содержания (особенно отсутствия у животных сухой подстилки и моциона, укороченные стойла), сырости в помещениях, недостатке грубых кормов.
Заболевание может возникнуть и как вторичная инфекция. По данным многих авторов, некробактериоз часто протекает совместно с инфекционным ринотрахеитом крупного рогатого скота, ПГ-3, пастереллезом.
Исследование на некробактериоз включает микроскопию мазков из патологического материала, посевы на питательные среды и заражение лабораторных животных. При микроскопическом исследовании из некротизиро-ванных тканей делают мазки и окрашивают по Муромцеву,
Романовскому-Гимзе, синькой Леф-флера или по Граму. Высевы из патологического материала делают в среду Китта-Тароцци, МПБ и МПА. На среде Китта-Тароцци Fusobacterum песгорЬюшт образует интенсивную муть вначале в нижних слоях среды, а позднее и в верхних, газообразование слабое. Просветление бульона происходит на 5-8 сутки, при этом на дно пробирки выпадает крошковатый осадок. При микроскопии мазков из культуры обнаруживают зернисто-окрашенные длинные переплетающиеся нити. При биологическом исследовании проводят заражение кролика. При наличии в патологическом материале или исследуемой культуре Fusobacterum песгорЬюшт у кролика на месте инъекции через 3-4 дня развивается некроз. Из очага некроза дела-
Животноводство
ют мазки и окрашивают их. При обнаружении в мазках зернистоокрашен-ных нитей, характерных для возбудителя неробактериоза, биопроба считается положительной.
Также есть сведения о разработке диагностической тест-системы, основанной на полимеразноцепной реакции с гнездовыми праймерами, выявляющей патогенные штаммы Fusobacterum песгорЬюшт.
При проведении эпизоотологичес-кого за последние 10 лет, нами было выявлено, что при исследовании патологического материала от жвачных животных положительные результаты составляют 51 %. Из них патматери-ал (из которого был выделен возбудитель Fusobacterum песгорЬюшт) от КРС - 57,1 %, МРС - 42,9 %:
Наиболее интенсивные вспышки регистрировались в 2006 г. - 54 % случаев и 2008 г. - 21 %; в остальных случаях - в 2003 и 2007 г. - 7 %, в 2001 и 2005 - 4 %, в 2002 - 3 %, в 2000, 2001 и 2009 гг. не было случаев выделения возбудителя некробактериоза из пат-материала.
Ниже представлена диаграмма 1, где наглядно представлено, в каких хозяйствах Свердловской области выявлялся возбудитель Fusobacterum песгорЬюшт за последние 10 лет.
Как уже говорилось выше, в данное время Свердловская область благополучна по некробактериозу жвачных, в том числе и КРС. По данным за первое полугодие 2010 г. вакцинация против данного инфекционного заболевания проводится в следующих районах: Богдановичевский, Каменский, Сысертский, Талицкий.
Исходя из выше сказанного, вероятность возникновения некробактери-оза КРС в нашей области на настоящий момент не исключена, и нашей задачей является разработка новых методов лечения, которые позволят ликвидировать заболевание, если вакцинация животных не дает стопроцентной гарантии защиты.
Диаграмма 1
Животноводство
Литература
1. Островский М. В. http://www.agroyug.ru
2. Семенихин В. И., Самоволов А. А., Некрасова Н. В. Полимеразная цепная реакция в диагностике Fusobacterum песгорЬюшт. http://laboratorium.narod.ru
3. http://atlas.0pk.ru
КОРРЕКЦИЯ ИММУННОГО СТАТУСА ПОРОСЯТ ВИДОРОМ И ВИТАДАПТИНОМ
Н. С. КИТАЕВ,
Н. Ю. ПОПОВА,
Е. А. РЕУТОВ,
О. Г. ПЕТРОВА, Уральская ГСХА,
И. А. РУБИНСКИЙ, ООО «Розовый лотос»
Ключевые слова: свиньи, сальмонеллёз, эшерихиоз, иммунитет, Видор, Витадаптин.
Возбудители эшерихиоза и сальмонеллёза широко распространены в природе. Пути их передачи достаточно разнообразны. В связи с этим даже при соблюдении всего комплекса ветеринарно-санитарных мероприятий, направленных на предупреждение заноса возбудителей в благополучное стадо, риск возникновения этих двух болезней в свиноводческом сельхозпредприятии (ферме) достаточно велик.
Одним из эффективных методов профилактики эшерихиоза и сальмонеллёза является вакцинация, при условии, что при производстве используемого средства специфической профилактики использованы штаммы, выделяющиеся в той или иной местности. Но это не решает проблему полностью, т. к. в связи с тем, что животные постоянно попадают в стрессовые ситуации, обусловленные качеством кормов, воды, перепадами температуры, влажности и т. д., введение вакцин не всегда сопровождается формированием выраженной невосприимчивости. Поэтому возникает необходимость в искусственной коррекции иммунного ответа на введение тех или иных антигенов.
Среди ветеринарных средств, позволяющих повысить качество вакцинации, особое место занимают препараты на основе сырья природного про-и с хожд ен ия . Хот я они д ей с тв ую т медленнее, нежели их синтетические аналоги, результаты, получаемые при их применении, более стабильны и растянуты во времени.
Цель данной работы - оценить влияние ветеринарных средств Видор и Витадаптин на качество вакцинации поросят против эшерихиоза и сальмонеллёза.
Видор - средство на основе вытяжки из лекарственных растений с добавлением АСД 2Ф (ООО «Травник», г. Екатеринбург)._____________________
Витадаптин - комплексный препарат, содержащий природные витамины А, D, Е (230-250 мг%) И полинасы-щенные жирные кислоты (ООО «Розовый лотос», г. Екатеринбург).
620075, г. Екатеринбург, ул. Карла Либкнехта, 42;
" тел. 8 (343) 371-33-63
начале эксперимента (до первой вакцинации), через 14 и 28 суток после второй иммунизации у животных бралась кров. Сыворотки исследовались в реакции агглютинации с соответствующими антигенами. Полученные результаты представлены в таблице1.
Группа Уровень специфических антител в сыворотке крови в РА через разные сроки после второй вакцинации
К сальмонеллёзному антигену log2 К эшерихиозному антигену log2
Фон 14 дней 28 дней Фон 14 дней 28 дней
Видор 1,80±0,31 8,60±0,44 10,60±0,42 2,20±0,12 7,60±0,35 10,20±0,01
Витадаптин 2,10±0,33 8,30±0,45 10,00±0,02 2,10±0,34 7,50±0,42 10,10±0,22
Контроль 1,60±0,12 5,30±0,43 4,60±0,44 2,20±0,31 5,60±0,27 5,40±0,43
Примечание: Ра - реакция агглютинации. _ _ _
Таблица 1
Уровень специфических антител в сыворотке крови поросят, привитых
против эшерихиоза и сальмонеллёза
Для проведения исследований из поросят в возрасте 20-25 и 50-55 дней по принципу аналогов было сформировано шесть групп (две контрольных и четыре опытных) по 10 голов в каждой. Животным первой и четвёртой опытной группы внутримышечно однократно инъецировали Видор, второй и пятой - ветеринарное средство Вита-даптин. Доза в обоих случаях составила 2,5 см3/гол. Поросятам группы контроля (№ 3, 6) вводили плацебо. Обработки стимуляторами иммунитета проводили через две недели после двукратной иммунизации животных против эшерихиоза и сальмонеллёза (бивалентная вакцина против сальмонеллёза свиней из аттенуированных штаммов Salmonella choleraesuis № 9 и Salmonella typhimurium № 3 (группы 1-3) и вакцина против эшерихиоза животных Коли-Вак (группы 4-6) соответственно). Оба средства специфической профилактики применяли в соответствии с действующими наставлениями. Наблюдение за всеми животными вели в течение 28 дней. Эффективность средств Видор и Ви-тадаптин оценивали по изменениям титров антител. С этой целью в самом
Результаты, представленные в таблице, показывают, что до введения вакцин у поросят всех групп антитела к специфическим антигенам выявлялись в титрах 2,10-2,20 и 1,60-2,10 log2, что частично объясняется наличием колостральных антител и явлением иммунизирующей субинфекции. Через 14 дней после последней иммунизации против сальмонеллёза и эшерихиоза во всех группах отмечено увеличение титра антител в 3,31-4,77 и 2,54-3,57 раза соответственно. При этом прирост в опытных группах был, в среднем, на 30,66 и 38,18 % выше, чем в контроле.
Исследование сывороток, проведённое через14 дней после однократной инъекции Видора, Витадаптина и на 28 сутки от завершения иммунизации животных соответствующими вакцинами выявило дополнительное увеличение титров антител в опытных группах на 21,86 и 34,43 %, в то время как в группах контроля титры антител к специфическим антигенам снизились:
Pigs, a Salmonellosis, a Escherichiosis, immunity, _Vidor, Vitadaptin.
