CC BY
22ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
© Коллектив авторов, 2020
Щ Check for updates
Эпидемиология и молекулярно-генетическая характеристика возбудителей Лайм-боррелиоза, циркулирующих в популяции клещей на территории Алматинской области Республики Казахстан
Бисенбай А.О.Н, Жигайлов А.В., Перфильева Ю.В., Найзабаева Д.А., Неупокоева А.С., Бердыгулова Ж.А., Остапчук Е.О., Мальцева Э.Р., Куатбекова С.А., Низкородова А.С., Дмитровский А.М., Скиба Ю.А., Мамадалиев С.М.
Филиал Республиканского государственного предприятия «Национальный центр биотехнологии» в г. Алматы — Центральная референтная лаборатория, 050054, Алматы, Республика Казахстан
Введение. Информация о географическом распространении различных видов комплекса Borrelia burgdorferi sensu lato (B. burgdorferi s.l.) имеет важное эпидемиологическое значение, поскольку различные ге-новиды связаны с определенными клиническими проявлениями Лайм-боррелиоза. Алматинская область Республики Казахстан считается эндемичной по клещевому боррелиозу, однако точная информация об уровне зараженности боррелиями клещей, обитающих в области, включая информацию о генотипах циркулирующих боррелий, отсутствует.
Целью данной работы было исследование клещей, снятых с людей в Алматинской области Республики Казахстан в 2018 г.
Материалы и методы. Клещей (n = 253) изучали на содержание в них ДНК B. burgdorferi s.l., генотипиро-вание выявленных боррелий по участку гена 16S рРНК осуществляли методом секвенирования. Проведен анализ эпидемиологических данных по заболеваемости Лайм-боррелиозом в Алматинской области за 2013-2018 гг.
Результаты. Превалирующими видами клещей, снятых с людей, оказались Rhipicephalus turanicus (n = 116), Haemaphysalis punctata (n = 74), Dermacentor marginatus (n = 28) и Ixodes persulcatus (n = 23). Уровень зараженности клещей I. persulcatus бактериями B. burgdorferi s.l. составил 39,13% (n = 9). ДНК B. burgdorferi s.l. также была детектирована в единичных особях D. marginatus, H. punctata и R. turanicus, хотя данные виды не являются компетентными векторами B. burgdorferi s.l. В результате секвенирования положительных гомогенатов клещей были идентифицированы два генотипа B. burgdorferi s.l.: B. afzelii и B. garinii и/или B. bavariensis.
Выводы. На территории Алматинской области циркулируют по меньшей мере два геновида: B. afzelii и B. garinii и/или B. bavariensis.
Ключевые слова: Лайм-боррелиоз; Borrelia burgdorferi s.l.; геновиды; ген 16S рРНК; 16S секвенирование.
Источник финансирования. Работа проводилась в рамках научного проекта № AP05132856 «Идентификация и молекулярно-генетическая характеристика штаммов Borrelia sp., распространенных в различных регионах Казахстана, для усовершенствования системы эпидемиологического надзора за клещевым боррелиозом» Комитета по науке Министерства образования и науки Казахстана. Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.
Для цитирования: Бисенбай А.О., Жигайлов А.В., Перфильева Ю.В., Найзабаева Д.А., Неупокоева А.С., Бердыгулова Ж.А., Остапчук Е.О., Мальцева Э.Р., Куатбекова С.А., Низкородова А.С., Дмитровский А.М., Скиба Ю.А., Мамадалиев С.М. Эпидемиология и молекулярно-генетическая характеристика возбудителей Лайм-боррелиоза, циркулирующих в популяции клещей на территории Алматинской области Республики Казахстан. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2020; 97(6): 535-545.
DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-2020-97-6-4
Поступила 05.08.2020 Принята в печать 26.10.2020
Epidemiology and molecular genetic characteristics of Lyme borreliosis pathogens circulating in tick's population in the Almaty oblast of the Republic of Kazakhstan
Akerke O. Bissenbay0, Andrey V. Zhigailov, Yuliya V. Perfilyeva, Dinara A. Naizabayeva, Alena S. Neupokoyeva, Zhanna A. Berdygulova, Yekaterina O. Ostapchuk, Elina R. Maltseva,
ORIGINAL RESEARCHES
Saltanat A. Kuatbekova, Anna S. Nizkorodova, Andrey M. Dmitrovskiy, Yuriy A. Skiba, Seydigapbar M. Mamadaliyev
Almaty Branch of Republican State Enterprise «National Center for Biotechnology» — Central Reference Laboratory, 050054, Almaty, Kazakhstan
Background. Information on the geographical distribution of different species of the Borrelia burgdorferi sensu lato (B. burgdorferi s.l.) complex is of great epidemiological importance, since different genospecies are associated with certain clinical manifestations of Lyme borreliosis. Although Almaty region of the Republic of Kazakhstan is considered to be endemic for tick-borne borreliosis, there is still no accurate data on the level of borrelia infection in ticks in the region, including information on the genotypes of circulating borrelia.
The aim of this work was to study ticks collected from humans in the Almaty region of the Republic of Kazakhstan in 2018.
Materials and methods. Ticks were tested for the presence of B. burgdorferi s.l. DNA, genotyping of the identified borrelia was done by sequencing of the fragment of 16S rRNA gene. The analysis of epidemiological data on the incidence of Lyme borreliosis in the Almaty region in 2013-2018 was performed.
Results. Rhipicephalus turanicus (116/253), Haemaphysalis punctata (74/253), Dermacentor marginatus (28/253), and Ixodes persulcatus (23/253) were the predominant species of ticks taken from humans. The prevalence of B. burgdorferi s.l. infection in I. persulcatus ticks was 39.13% (9/23) It should be noted that the DNA of B. burgdorferi s.l. was also detected in single individuals of D. marginatus, H. punctata, and R. turanicus, although these species are not considered as competent B. burgdorferi s.l. vectors.
Conclusion. As a result of sequencing of the positive homogenates of ticks, two genotypes of B. burgdorferi s.l. were identified: B. afzelii and B. garinii and/or B. bavariensis. Thus, at least two genospecies, B. afzelii and B. garinii and/or B. bavariensis, circulate in the territory of the Almaty region.
Keywords: Lyme borreliosis; Borrelia burgdorferi s.l.; genospecies; 16S rRNA gene; 16S sequencing.
Acknowledgments. The work was carried out within the framework of the scientific project No. AP05132856 «Identification and molecular genetic characterization of Borrelia sp. strains widespread in various regions of Kazakhstan to improve the epidemiological surveillance system for tick-borne borreliosis» by the Science Committee of the Ministry of Education and Science of Kazakhstan.
Conflict of interest. The authors declare no apparent or potential conflicts of interest related to the publication of this article.
For citation: Bissenbay A.O., Zhigailov A.V., Perfilyeva Yu.V., Naizabayeva D.A., Neupokoyeva A.S., Berdygulova Zh.A., Ostapchuk E.O., Maltseva E.R., Kuatbekova S.A., Nizkorodova A.S., Dmitrovskiy A.M., Skiba Y.A., Mamadaliyev S.M. Epidemiology and molecular genetic characteristics of Lyme borreliosis pathogens circulating in tick's population in the Almaty oblast of the Republic of Kazakhstan. Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology = Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii. 2020; 97(6): 535-545. (In Russ.).
DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-2020-97-6-4
Received 5 August 2020 Accepted 26 October 2020
Введение
Боррелии — грамотрицательные спирохеты, относящиеся к порядку Spirochaetales, семейству Spirochaetaceae, роду Borrelia, являются облигатны-ми внутриклеточными паразитами [1]. Представители Borrelia spp. сгруппированы в три основные филогенетические группы: группа Лайм-боррелиоза (ЛБ), формирующая надвидовой комплекс B. burgdorferi sensu lato (B. burgdorferi s.l.), группа боррелий клещевых возвратных лихорадок, в которую входят B. miyamotoi, B. theileri и B. lonestari, а также группа боррелий, связанных с рептилиями, включающая B. turcica [2-4].
К комплексу B. burgdorferi s.l. на сегодняшний день относят 22 геновида на основе общности генетических характеристик. По крайней мере 10 из них (B. afzelii, B. bavariensis, B. bissettii, B. burgdorferi sensu stricto, B. garinii, B. kurtenbachii, B. lusitaniae, B. spielmanii и B. valaisiana [5-7], B. chilensis [8]) являются патогенными для челове-
ка, и один геновид — B. mayonii — был недавно выделен из клинических образцов пациента, но его па-тогенность еще не была доказана экспериментально [9]. Каждый из патогенных геновидов тропен к определенным системам органов, хотя при этом может вызывать поражения любой локализации.
Заражение людей происходит при укусе ик-содовых клещей, которые, в свою очередь, заражаются B. burgdorferi на любом этапе своего жизненного цикла, во время укуса естественных хозяев боррелий (мыши, полевки, бурундуки и другие мелкие млекопитающие, олени, а также некоторые виды птиц) [10]. Хотя возбудителей ЛБ периодически детектируют в клещах, относящихся к родам Boophilus, Dermacentor, Haemaphysalis, Hyalomma и Rhipicephalus, возможность выступать в качестве переносчиков заболевания доказана лишь для представителей рода Ixodes [11]. Основными векторами патогенов ЛБ в США и Канаде являются I. scapularis и I. pacificus, в Европе — I. ricinus, в Азии —
ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
I. persulcatus [1, 11]. В Казахстане основным переносчиком боррелий является I. persulcatus [12-15]. На территории Казахстана встречаются и другие представители рода Ixodes (I. kazakstani, I. pavlovskyi, I. laguri, I. crenulatus, I. redikorzevi, I. stromi, I. cornutus, I. subterraneus, I. lividus, I. apronophorus, I. eldaricus) [14, 16], но их роль в качестве переносчиков ЛБ пока остается невыясненной [16].
Официальная регистрация ЛБ в Казахстане была начата в 2012 г. [12, 15]. Эндемичными по данному заболеванию считаются Алматинская и Восточно-Казахстанская области, на территории которых сосредоточены ареалы распространения I. persulcatus. Однако в последнее время единичные случаи данного заболевания стали регистрироваться в Акмолинской, Костанайской и Северо-Казахстан-ской областях [17]. Инфицированность клещей рода Ixodes B. burgdorferi s.l. в Восточно-Казахстанской области составляет около 40,9% [13], однако в Ал-матинской области данный показатель не определен. Геновиды надвидового комплекса B. burgdorferi s.l., циркулирующих в популяции клещей, обитающих на территории Алматинской области, не изучены.
Согласно классификации Кёппена-Гейгера, территория Алматинской области характеризуется влажным континентальным климатом, включающим 5 климатических зон: жаркий-летний влажный континентальный климат (Dfa), холодный полузасушливый климат (BSk), теплый-летний влажный континентальный климат (Dfb), средиземноморский жаркий-летний влажный континентальный климат (Dsa), холодный пустынный климат (BWk) [18]. Южный и восточный районы области расположены у подножия хребта северного Тянь-Шаня — Заилийского Алатау и Джунгарского Алатау. Предгорные и горные районы Алматинской области состоят из лиственных и смешанных лесов, типичных мест обитания I. persulcatus [19].
Характерные для ЛБ полиморфность клинической картины, сходность симптоматики с рядом других заболеваний, одновременное поражение нескольких органов и частая латентная персистенция возбудителя в организме могут приводить к ошибкам в диагностике заболевания, поздней постановке диагноза, несвоевременной медицинской помощи и, как следствие, к серьезным социально-экономическим потерям, связанным с временной нетрудоспособностью и инвалидизацией пациентов [13, 20, 21]. Известно, что геновиды B. burgdorferi s.l связаны с различной патогенностью и клиническими проявлениями у пациентов. В связи с этим определение генотипов, циркулирующих в том или ином регионе, является важным для диагностики заболевания и может содействовать лучшему ведению пациентов с ЛБ [22].
В эпидемиологических исследованиях для детекции и генотипирования наиболее часто приме-
няются видоспецифичный ПЦР-анализ, полиморфизм длины рестрикционных фрагментов, анализ последовательности конкретных локусов генов [11]. В качестве мишеней при диагностике и гено-типировании B. burgdorferi s.l. методами на основе ПЦР чаще всего используют гены рибосомной РНК (рРНК), такие как flaB, recA, p66 и плазмид-ный ген ospA [11]. Наличие в гене 16S рРНК как высококонсервативных, так и гипервариабельных участков позволяет, помимо выявления ДНК B burgdorferi s.l., осуществлять типирование боррелий для выявления геновидов, а также проводить филогенетический анализ различных генотипов этих бактерий [23, 24].
Практика изучения зараженности клещей в эндемичных районах основывается на методах активного и пассивного мониторинга, а также эпидемиологического надзора за случаями ЛБ. При этом пассивный мониторинг дает возможность проанализировать не только уровень распространенности клещей в отдельных районах и степень зараженности их патогенами, но и риск заражения людей [25], а также успешно предсказать появление случаев заболевания людей и своевременно выявить новые зоны распространения ЛБ [26].
Поскольку в Алматинской области ежегодно увеличивается количество атак клещей и случаев лихорадки неясной этиологии [27], выявление уровня зараженности клещей B. burgdorferi s.l. и их генотипов крайне необходимо для разработки эффективных мер профилактики заболеваемости ЛБ. Понимание возможной дифференциальной па-тогенности между боррелиями разных генотипов важно для изучения этиологии заболевания и улучшения лабораторной диагностики.
Целью настоящего исследования был пассивный мониторинг распространенности и степени зараженности клещей разных видов B. burgdorferi s.l. и их генотипирование по гену 16S рРНК для определения генотипов, циркулирующих в популяции клещей, а также анализ эпидемиологических данных по заболеваемости ЛБ в Алматинской области за 2013-2018 гг.
Материалы и методы
Для анализа эпидемиологических данных по заболеваемости ЛБ в Алматинской области использовали материалы Научно-практического центра санитарно-эпидемиологической экспертизы и мониторинга (НПЦСЭЭиМ) Комитета охраны общественного здоровья Министерства здравоохранения Республики Казахстан за 2013-2018 гг. [27].
Также в исследовании использовали 253 клеща, снятых с людей, проживающих в Алматинской области, в период с марта по июль 2018 г. Клещи были предоставлены НПЦСЭЭиМ. Видовую идентификацию клещей проводили морфологически с
ORIGINAL RESEARCHES
использованием лупы, бинокулярного микроскопа и таксономических ключей идентификатора «Кровососущие клещи Казахстана» [28]. После этого клещей замораживали в индивидуальных криопро-бирках при -20°С.
Клещей гомогенизировали индивидуально с использованием герметичного гомогенизатора «Homogenizer Mixer Mill MM 400» («Retsch»). Для этого единичных клещей помещали в пробирки с тремя размольными боросиликатными шарами (5 мм в диаметре) и 600 мкл фосфатно-солевого буфера и проводили гомогенизацию в течение 3 мин при 30 Гц. Гомогенаты центрифугировали в течение 5 мин при 5000g и 4°С. Далее отбирали супернатан-ты, из которых выделяли нуклеиновые кислоты с использованием набора «АмплиСенс® РИБО-преп» («ИнтерЛабСервис») согласно инструкции производителя.
ДНК B. burgdorferi s.l. выявляли с использованием набора «АмплиСенс® TBEV, B. burgdorferi s.l., A. phagocytophilum, E. chaffeensis/E.muris-FL» («ИнтерЛабСервис») по методике производителя. Положительными считали образцы, значение Ct которых было меньше 38.
Для секвенирования ДНК B. burgdorferi s.l. сначала проводили амплификацию участка гена 16S рРНК боррелий с использованием полиме-разы High-Fidelity («Thermo Fisher») в ампли-фикаторе «Mastercycler X50h» («Eppendorf») с использованием праймеров 16S1A (5CTAACG-CTGGCAGTGCGTCTTAAGC)/16S1B (5'AGCGT-CAGTCTTGACCCAGAAGTTC) [29]. Далее проводили электрофорез полученных нуклеиновых кислот в системе для электрофореза «BioRad» в 1,5% агарозном геле на 1* трис-ацетатном буфере, содержащем 0,5 пг/мл бромистого этидия («Sigma-Aldrich»). Элюцию ДНК-фрагментов из агарозного геля проводили с использованием набора «QIAquick Gel Extraction Kit» («Qiagen») по методике производителя. Очищенные амплификаты секвенировали в обоих направлениях, используя праймеры для ПЦР, набор для секвенирования «BigDye® Terminator v3.1» («Applied Biosystems») и генетический анализатор «ABI 3500XL» («Applied Biosystems»). Полученные участки гена 16S рРНК сравнивали с нуклеотидными последовательностями различных геновидов боррелий, взятыми из базы данных NCBI1, и выравнивали с использованием алгоритма MUSCLE. Филогенетическое древо было создано методом максимального правдоподобия с использованием программного обеспечения «MEGA X»2. Значения надежности в процентах на каждом внутреннем узле были определены в соответствии с анализом начальной загрузки с 1000 повторов.
1 URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov
2 URL: http://www.megasoftware.net
Статистическую обработку результатов проводили с применением программы R. Для расчета 95% доверительных интервалов (95% ДИ) был использован метод Клоппера-Пирсона. Критерий Пирсона х2 использовался для определения статистически значимой разницы между ожидаемыми частотами. Различия считали статистически значимыми при р < 0,05.
Результаты
Анализ эпидемиологических данных по заболеваемости ЛБ за 2013-2018 гг.
На данный момент в районах Казахстана, эндемичных по клещевым инфекциям, существует значительный пробел в мониторинге лиц, укушенных клещами. Клещи, принесенные укушенными пациентами, не проверяются на наличие возбудителя боррелиоза, не проводится комплексное серологическое обследование пациентов в динамике, что затрудняет своевременную диагностику заболеваний.
По данным НПЦСЭЭиМ, количество подтвержденных случаев ЛБ в Казахстане за 20132018 гг. варьирует от 7 до 21 случая в год, таким образом средний уровень заболеваемости составляет 0,04-0,12 на 100 тыс. человек в год (табл. 1) [27].
Что касается Алматинской области, то в 2017 г. было зарегистрировано 4 подтвержденных случая ЛБ (0,11 на 100 тыс. человек), а в 2018 г. — 7 случаев (0,19 на 100 тыс. человек). К сожалению, клещи, укусившие данных пациентов, не были включены в наше исследование.
Видовой состав клещей, нападавших на людей в Алматинской области
Клещи, снятые с пострадавших от укуса людей в Алматинской области в марте-июле 2018 г., были идентифицированы до вида. Основываясь на морфологической идентификации, все 253 клеща были отнесены к имаго. Из 253 клещей 23 (9,1%) принадлежали к основному переносчику ЛБ — I. persulcatus (95% ДИ 5,9-13,3%; рис. 1). Наиболее часто на людей в Алматинской области нападали клещи R. turanicus (116/253; 45,9%; 95% ДИ 39,5-52,2%), Ha. punctata (74/253; 29,3%; 95% ДИ 23,7-35,3%) и D. marginatus (28/253; 11,1%; 95% ДИ 7,5-15,6%). Наименьшее количество напавших на людей клещей были идентифицированы как Hy. asiaticum (7/253; 2,7%; 95% ДИ 1,1-5,6%) и D. pictus (5/253, 1,9%; 95% ДИ 0,6-4,5%; рис. 1).
Периоды активности у разных родов клещей отличаются. Период наибольшей активности основного переносчика возбудителей ЛБ I. persulcatus в Алматинской области был отмечен с апреля по июнь. Преобладающие по количеству укусов виды клещей (R. turanicus, Ha. punctata и D. marginatus) проявляли наибольшую активность в период с мая
ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
Таблица 1. Мониторинг заболеваемости ЛБ в Республике Казахстан в 2013-2018 гг. Table 1. Monitoring of the LB incidence in the Republic of Kazakhstan in 2013-2018
Показатель Index 2013 2014 2015 2016 2017 2018
Количество подтвержденных случаев клещевого иксодового боррелиоза Number of confirmed cases of tick-borne borreliosis 21 17 7 12 12 19
Количество случаев на 100 тыс. человек (уровень заболеваемости) Number of cases per 100,000 population (incidence rate) 0,12 0,09 0,04 0,06 0,07 0,11
Rhipicephalus turanicus; 116
Dermacentor marginatus; 28
Dermacentor pictus; 5
Hyalomma asiaticum; 7
a 74a
puncta
Ixodes persulcatus; 23
Рис. 1. Видовой состав клещей, снятых с людей в Алматинской области в марте-июле 2018 г
Fig. 1. Species composition of ticks collected from people in Almaty region in the period from March to July 2oi8.
по июнь, с апреля по июнь и с апреля по май соответственно (рис. 2).
ПЦР-диагностика ДНК-препаратов клещей
В ходе анализа ДНК-препаратов клещей, снятых с людей в Алматинской области в 2018 г., методом ПЦР в режиме реального времени выявлено, что I. persulcatus являются наиболее инфицированными B. burgdorferi s.l. Однако ДНК B. burgdorferi s.l.
была детектирована также в клещах D. marginatus, Ha. punctata и R. turanicus (табл. 2). В любом случае уровень инфицированности клещей I. persulcatus боррелиями B. burgdorferi s.l. был достоверно выше, чем тот же показатель для D. marginatus (х2 = 7,9980; p = 0,001), Ha. punctata (х2 = 23,154; p < 0,0001) и R. turanicus (x2 = 21,986; p < 0,0001). Уровни инфи-цированности B. burgdorferi s.l. клещей, не относящихся к роду Ixodes, не отличались достоверно друг от друга (х2 = 0,6832; p = 0,5).
Следует также заметить, что относительное содержание B. burgdorferi s.l. в клещах D. marginatus, Ha. punctata и R. turanicus оказалось низким по сравнению со средним их содержанием в I. persulcatus, исходя из сравнительно высоких значений Ct (табл. 2).
Секвенирование и филогенетический анализ
Определение видовой принадлежности 16 qPCR-положительных образцов, выделенных из ик-содовых клещей, осуществлялось посредством амплификации части гена 16S рРНК размером 724 п.н. родоспецифичными праймерами с последующим секвенированием очищенных амплификатов. В качестве положительного контроля в ПЦР использовали геномную ДНК B. garinii. В 3 из 16 образцов не удалось получить амплификат, видимо, из-за низкого содержания в них ДНК B. burgdorferi s.l.
Таблица 2. Результаты ПЦР-анализа по детекции ДНК B. burgdorferi s.l. в клещах Table 2. Results of PCR analysis for the detection of B. burgdorferi s.l. DNA in ticks
Вид клещей Tick species Количество клещей, взятых для анализа Number of ticks tested ПЦР-положительные PCR-positive Уровень инфицированности клещей B. burgdorferi s.l., % Infection rate of ticks with B. burgdorferi s.l., % ДИ 95% CI 95% Ct
I. persulcatus 23 9 39,13 19,7-61,5 26,66 ± 1,59
D. marginatus 28 1 3,57 0,1-18,35 30,31
D. pictus 5 0 0,00 - -
Ha. punctata 74 1 1,35 0,0-7,3 31,65
Hy. asiaticum 7 0 0,00 - -
R. turanicus 116 5 4,31 1,4-9,8 35,18 ± 1,88
Всего Total 253 16 6,32
ORIGINAL RESEARCHES
80706050403020100-
a/a
80 -70 -60 -50 -40 -30 -20 -100-
Д
lEL
Л
1
Март March
Апрель April
Май May
Июнь June
Июль July
б/ b
I
Д.
lEL
I
I
Март March
Апрель April
Май May
Июнь June
Июль July
Ц Dermacentor marginatus
I Dermacentor pictus
□ Hyalomma asiaticum
U Haemaphysalis punctata
[] Ixodes persulcatus
[] Rhiрicephalus turanicus
Рис. 2. Данные по клещам, снятым с людей в 2018 г. в Алматинской области. а — общее число нападений клещей разных видов на людей по месяцам; б — процентное соотношение снятых с людей клещей по видам помесячно (общее число нападений клещей одного вида принято за 100%).
Fig. 2. Data on ticks collected from humans in 2018 in the Almaty region. а — the total number of attacks by ticks of different species on people by months (the abscissa shows the months, the ordinate shows the number of tick bites); b — percentage of ticks collected from humans by species per month (the total number of attacks by ticks of one species is taken as 100%) (the abscissa shows the months; the ordinate shows the percentage of ticks collected from humans
by species in each month).
На рис. 3 представлены результаты электрофоре-тического анализа продуктов амплификации участка гена 16S рРНК для 5 образцов, выделенных из I. persulcatus, для которых удалось получить считывание достаточного для анализа качества. Остальные 8 из 13 проанализированных методом секвени-рования ДНК образцов давали миксы по нескольким позициям, что указывает на наличие в них ДНК от более чем одного геновида боррелий.
Согласно результатам проведенного филогенетического анализа, 4 образца (A003A1, A012A1, A041A1 и A196A1) были идентичны по последовательности амплификата линии VS461 (GenBank NR_104748.1) B. afzelii (рис. 4). Один образец (A186A1) содержал ДНК, наиболее близкую по последовательности амплифицированного участка ге-
на 16S рРНК к линии PBi (GenBank NR_074854.1) B. bavariensis (2 нуклеотидные замены) и линии 20047 (GeneBank NR_043413.1) B. garinii (3 нуклеотидные замены) (рис. 4).
Обсуждение
В настоящей работе представлены анализ данных по подтвержденным случаям клещевого борре-лиоза в Казахстане и данные видовой идентификации по видам клещей, нападавших на людей в Ал-матинской области Республики Казахстан с марта по июль 2018 г., уровня их инфицированности возбудителями ЛБ, а также генотипирования выявленных боррелий по участку гена 16S рРНК.
Доминирующими видами клещей, нападающими на людей, были R. turanicus, Ha. punctata,
ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
Рис. 3. Электрофоретический анализ продуктов амплификации участка гена 16S рРНК Borrelia spp. с использованием
праймеров 16S1A/16S1B.
1 kb — ДНК-маркер GeneRuler 1 kb, 100 bp — ДНК-маркер GeneRuler 100 bp plus; PC — B. garinii (положительный контроль); NC — негативный контроль. A003A1, A012A1, A041A1, A186A1, A196A1 — образцы ДНК, выделенные из одиночных клещей.
Fig. 3. Electrophoretic analysis of amplification products of the 16S rRNA gene region of Borrelia spp. using primers
16S1A/16S1B.
1 kb — GeneRuler 1 kb DNA ladder; 100 bp — GeneRuler 100 bp plus DNA ladder; PC — B. garinii (positive control); NC — negative control. A003A1, A012A1, A041A1, A186A1, A196A1 — DNA samples, isolated from individual ticks.
▲ A041A1
▲ A196A1
▲ A012A1
▲ A003A1
33 B.finlandensis strain SV1 (NZ ABJZ02000005.1) L— B.burgdorferi sensu stricto strain B31 (U03396.1)
Рис. 4. Филогенетическое дерево Borrelia spp., обнаруженных в клещах I. persulcatus, на основе фрагмента гена 16S рРНК.
Треугольниками отмечены образцы из настоящего исследования. Единица шкалы соответствует 0,005 нуклеотидной замене
в пересчете на одну нуклеотидную позицию.
Fig. 4. Phylogenetic tree of Borrelia spp. detected in I. persulcatus ticks based on the 16S rRNA gene fragment. The triangles indicate the samples from the present study. The scale unit corresponds to 0.005 nucleotide substitution
per one nucleotide position.
ORIGINAL RESEARCHES
D. marginatus и I. persulcatus. Наиболее высокий уровень зараженности B. burgdorferi s.l. показали клещи I. persulcatus. Несмотря на то что этот показатель является сравнительно высоким, за 2018 г. в Алматинской области, в которой ареал распространения I. persulcatus перекрывается с наиболее густозаселенными районами, зарегистрировано лишь 7 официально подтвержденных случаев клещевого боррелиоза [27]. Возможно, это связано с отсутствием эффективной и своевременной системы диагностики данного заболевания в областных и городских клиниках в силу некоторых факторов: например, низкой информированности врачей о клинических проявлениях ЛБ, который характеризуется выраженным клиническим полиморфизмом течения заболевания; недостаточности/отсутствия в клиниках специфических методов лабораторной диагностики, а также вариабельности результатов таких лабораторных методов на разных стадиях инфекции [20, 21]. Немаловажным является установление факта наличия укуса клеща, т.к. укус клещей зачастую бывает безболезненным и только около 50% пациентов с ЛБ указывают на факт присасывания клеща, что также усложняет процесс диагностики [13, 15].
Согласно результатам анализа ДНК-препаратов клещей, снятых с людей в Алматинской области, выявлено, что I. persulcatus являются наиболее инфицированными B. burgdorferi s.l. Однако следует отметить, что ДНК B. burgdorferi s.l. была детектирована также в клещах D. marginatus, Ha. punctata и R. turanicus, что было продемонстрировано ранее и другими исследовательскими группами. Так, например, F.K. Adham и соавт. показали, что в Египте агенты ЛБ были обнаружены в нескольких видах клещей: Rhipicephalus, Hyalomma и Ornithodoros savignyi, частично с высокой распространенностью — до 66% [30]. Дополнительно Borrelia spp. были обнаружены у клещей-олигофагов, таких как I. frontalis, I. acuminatus и Argas reflexus, а также у полифагов Haemaphysalis [11, 31]. Однако способность заражать людей B. burgdorferi s.l. для данных видов клещей не была доказана [31]. Таким образом, роль этих видов в энзоотических циклах агентов ЛБ остается неясной.
По результатам секвенирования в реальном времени ПЦР-положительных по B. burgdorferi s.l. образцов установлено, что в Алматинской области циркулируют по меньшей мере два гено-вида B. burgdorferi s.l. (B. afzelii и B. garinii и/или B. bavariensis). Однако полученные результаты требуют дополнительных исследований и подтверждений. Наше исследование было частично ограничено некоторыми факторами: отсутствием клинических данных от укушенных исследованными клещами людей, недостаточным количеством исследуемых образцов и объёмом их выборки, отсутствием точных данных ГИС-координат по точкам, где были
зарегистрированы укусы клещей, лимитированно-стью в наличии коммерческих тест-систем для детекции B. burgdorferi s.l., а также материалов для таких современных методов генотипирования, как MLST/MLSA.
Данным исследованием мы хотим подчеркнуть факт зараженности и определенной распространенности патогенов ЛБ в популяции клещей Алматинской области Республики Казахстан. Более того, большая гетерогенность самих патогенов и их переносчиков все еще оставляет многие вопросы без ответа. Следовательно, для более точной картины распространенности и уровня зараженности клещей разных видов, в частности I. persulcatus, патогенами клещевого боррелиоза в дальнейшем необходимо продолжить исследования, охватывающие следующие области:
• комплексные эпидемиологические исследования, в том числе в регионах за пределами основных районов распространения I. persulcatus;
• обнаружение коинфекций с другими клещевыми патогенами и выявление биотических и абиотических факторов, которые влияют на распространение Borrelia spp.;
• ассоциации хозяина и вектора: спирохеты комплекса ЛБ могут быть обнаружены в неожиданно широком диапазоне возможных векторов, что указывает на необходимость изучения потенциала различных видов членистоногих в отношении передачи агентов ЛБ людям или резервуарам позвоночных;
• филогения и таксономия спирохет Borrelia spp.: для характеристики новых генотипов рекомендуется применение самых современных методов, таких как MLSA/MLST.
Благодарность
Авторы выражают признательность Л.С. Ка-рань (ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора) за предоставление в качестве положительного контроля геномной ДНК B. garinii.
ЛИТЕРАТУ РА
1. Halperin J.J. Lyme Disease: an Evidence-Based Approach. Wallingford; 2018.
https://doi.org/10.1079/9781786392077.0000
2. Margos G., Vollmer S.A., Ogden N.H., Fish D. Population genetics, taxonomy, phylogeny and evolution of Borrelia burgdorferi sensu lato. Infect. Genet. Evol. 2011; 11(7): 1545-63. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2011.07.022
3. Adam T., Gossman G.S., Rasiah C., Gobel U.B. Phenotypic and genotypic analysis of Borrelia burgdorferi isolates from various sources. Infect. Immunol. 1991; 59(8): 2579-85. https://doi.org/10.1128/IAI.59.8.2579-2585.1991
4. Baranton G., Marti R.N., Postic D. Borrelia burgdorferi, taxonomy, pathogenicity and spread. Ann. Med. Interne (Paris). 1998; 149(7): 455-8. (in French)
ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
5. Stanek G., Reiter M. The expanding Lyme Borrelia complex -clinical significance of genomic species? Clin. Microbiol. Infect. 2011; 17(4): 487-93.
https://doi.org/10.1111/j.1469-0691.2011.03492.x
6. Rudenko N., Golovchenko M., Grubhoffer L., Oliver J.H. Updates on Borrelia burgdorferi sensu lato complex with respect to public health. Ticks Tick Borne Dis. 2011; 2(3): 123-8. https://doi.org/10.10167j.ttbdis.2011.04.002
7. Margos G., Lane R.S., Fedorova N., Koloczek J., Piesman J., Hojgaard A., et al. Borrelia bissettiae sp. nov. and Borrelia californiensis sp. nov. prevail in diverse enzootic transmission cycles. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2016; 66(3): 1447-52. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.000897
8. Ivanova L.B., Tomova A., González-Acuña D., Murúa R., Moreno C.X., Hernández C., et al. Borrelia chilensis, a new member of the Borrelia burgdorferi sensu lato complex that extends the range of this genospecies in the Southern Hemisphere. Environ. Microbiol. 2014; 16(4): 1069-80. https://doi.org/10.1111/1462-2920.12310
9. Pritt B.S., Respicio-Kingry L.B., Sloan L.M., Schriefer M.E., Replogle A.J., Bjork J., et al. Borrelia mayonii sp. nov., a member of the Borrelia burgdorferi sensu lato complex, detected in patients and ticks in the upper midwestern United States. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2016; 66(11): 4878-80. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.001445
10. Shapiro E.D. Borrelia burgdorferi (Lyme disease). Pediatr. Rev. 2014; 35(12): 500-9. https://doi.org/10.1542/pir.35-12-500
11. Franke J., Hildebrandt A., Dorn W. Exploring gaps in our knowledge on Lyme borreliosis spirochaetes — updates on complex heterogeneity, ecology, and pathogenicity. Ticks Tick Borne Dis. 2013; 4(1-2): 11-25.
https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2012.06.007
12. Егембердиева Р.А., Ермуханова Н.Т., Дмитровский А.М., Шапиева Ж.Ж., Кыраубаев К.К., Лавренюк В.И. Эпидемиологическая характеристика некоторых клещевых трансмиссивных инфекций в Казахстане. Национальные приоритеты России. 2013; (2): 92-4.
13. Егембердиева Р.А., Токсанбаева К.Н., Дуйсенова А.К., Ермуханова Н.Т. Клинические проявления хронических форм клещевого боррелиоза в Восточно-Казахстанской области. Вестник Казахского национального медицинского университета. 2013; (2): 89-92.
14. Филиппова Н.А. Иксодовые клещи подсемейства Ixodidae. В кн.: Филиппова Н.А. Фауна СССР. Паукообразные. Том IV, выпуск 4. Ленинград: Наука; 1977.
15. Егембердиева Р.А. Клинико-эпидемиологические проявления некоторых природно-очаговых трансмиссивных инфекций в Казахстане: Дисс. д-ра мед. наук. Алматы; 2011.
16. Kovalev S.Y., Fedorova S.Zh., Mukhacheva T.A. Molecular features of Ixodes kazakstani: first results. Ticks Tick Borne Dis. 2018; 9(3): 759-61. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2018.02.019
17. Курмангалиева К.Б., Атыгаева С.К., Жамбурчинова А.Н., Ширшикбаева Г.Е. Случай болезни Лайма в неэндемичном регионе. Журнал инфектологии. 2014; 6(1): 93-4.
18. Rubel F., Brugger K., Walter M., Vogelgesang J.R., Didyk Y.M., Fu S., et al. Geographical distribution, climate adaptation and vector competence of the Eurasian hard tick Haemaphysalis concinna. Ticks Tick Borne Dis. 2018; 9(5): 1080-9. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2018.04.002
19. Perfilyeva Y.V., Shapiyeva Zh., Ostapchuk E.O., Berdygu-lova Zh., Bissenbay A.O., Kulemin M.V., et al. Tick-borne pathogens and their vectors in Kazakhstan — а review. Ticks Tick Borne Dis. 2020; 11(5): 101498. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2020.101498
20. Strle F., Stanek G. Clinical manifestations and diagnosis of Lyme borreliosis. Curr. Probl. Dermatology. 2009; 37: 51-110. https://doi.org/10.1159/000213070
21. Карпов И.А., Соловей Н.В., Анисько Л.А., Щерба В.В., Данилов Д.Е. Лайм-боррелиоз: вопросы диагностики и рацио-
нальной этиотропной терапии. Клиническая инфектология и паразитология. 2015; (3): 64-80.
22. Crowder C.D., Matthews H.E., Schutzer S., Rounds M.A., Luft B.J., Nolte O., et al. Genotypic variation and mixtures of Lyme Borrelia in Ixodes ticks from North America and Europe. PLoS One. 2010; 5(5): e10650. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0010650
23. Lee S.H., Vigliotti V.S., Vigliotti J.S., Jones W., Pappu S. Increased sensitivity and specificity of Borrelia burgdorferi 16S ribosomal DNA detection. Am. J. Clin. Pathol. 2010; 133(4): 569-76. https://doi.org/10.1309/AJCPI72YAXRHYHEE
24. Greisen K., Loeffelholz M., Purohit A., Leong D. PCR primers and probes for the 16S rRNA gene of most species of pathogenic bacteria, including bacteria found in cerebrospinal fluid. J. Clin. Microbiol. 1994; 32(2): 335-51. https://doi.org/10.1128/JCM.32.2.335-351.1994
25. Ogden N.H., Bouchard C., Kurtenbach K., Margos G., Lindsay L.R., Trudel L., et al. Active and passive surveillance and phylogenetic analysis of Borrelia burgdorferi elucidate the process of Lyme disease risk emergence in Canada. Environ. Health Perspect. 2010; 118(7): 909-14. https://doi.org/10.1289/ehp.0901766
26. Ripoche M., Gasmi S., Adam-Poupart A., Koffi J.K., Lindsay L.R., Ludwig A., et al. Passive tick surveillance provides an accurate early signal of emerging Lyme disease risk and human cases in Southern Canada. J. Med. Entomol. 2018; 55(4): 101626. https://doi.org/10.1093/jme/tjy030
27. Бекшин Ж.М., Есмагамбетова А.С., Ахметов В.Н. Санитарно-эпидемиологическая ситуация в Республике Казахстан за 2018 год. Алматы; 2019: 111-8.
28. Галузо И.Г. Кровососущие клещи Казахстана. Том 1. Алма-Ата; 1946.
29. Richter D., Allgöwer R., Matuschka F.R. Co-feeding transmission and its contribution to the perpetuation of the Lyme disease spirochete Borrelia afzelii. Emerg. Infect. Dis. 2002; 8(12): 1421-5. https://doi.org/10.3201/eid0812.010519
30. Adham F.K., El-Samie-Abd E.M., Gabre R.M., El Hussein H. Detection of tick blood parasites in Egypt using PCR assay II — Borrelia burgdorferi sensu lato. J. Egypt. Soc. Parasitol. 2010. 40: 553-564.
31. Gern L., Humair P.F. Ecology of Borrelia burgdorferi sensu lato in Europe. In: Gray J., Kahl O., Lane R.S., Stanek G., eds. Lyme Borreliosis Biology, Epidemiology and Control. New York: CABI Publishing; 2002: 149-74.
REFERENCES
1. Halperin J.J. Lyme Disease: an Evidence-Based Approach. Wallingford; 2018.
https://doi.org/10.1079/9781786392077.0000
2. Margos G., Vollmer S.A., Ogden N.H., Fish D. Population genetics, taxonomy, phylogeny and evolution of Borrelia burgdorferi sensu lato. Infect. Genet. Evol. 2011; 11(7): 1545-63. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2011.07.022
3. Adam T., Gossman G.S., Rasiah C., Göbel U.B. Phenotypic and genotypic analysis of Borrelia burgdorferi isolates from various sources. Infect. Immunol. 1991; 59(8): 2579-85. https://doi.org/10.1128/IAI.59.8.2579-2585.1991
4. Baranton G., Marti R.N., Postic D. Borrelia burgdorferi, taxonomy, pathogenicity and spread. Ann. Med. Interne (Paris). 1998; 149(7): 455-8. (in French)
5. Stanek G., Reiter M. The expanding Lyme Borrelia complex -clinical significance of genomic species? Clin. Microbiol. Infect. 2011; 17(4): 487-93.
https://doi.org/10.1111/j.1469-0691.2011.03492.x
6. Rudenko N., Golovchenko M., Grubhoffer L., Oliver J.H. Updates on Borrelia burgdorferi sensu lato complex with respect to public health. Ticks Tick Borne Dis. 2011; 2(3): 123-8. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2011.04.002
ORIGINAL RESEARCHES
7. Margos G., Lane R.S., Fedorova N., Koloczek J., Piesman J., Hojgaard A., et al. Borrelia bissettiae sp. nov. and Borrelia cal-iforniensis sp. nov. prevail in diverse enzootic transmission cycles. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2016; 66(3): 1447-52. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.000897
8. Ivanova L.B., Tomova A., González-Acuña D., Murúa R., Moreno C.X., Hernández C., et al. Borrelia chilensis, a new member of the Borrelia burgdorferi sensu lato complex that extends the range of this genospecies in the Southern Hemisphere. Environ. Microbiol. 2014; 16(4): 1069-80. https://doi.org/10.1111/1462-2920.12310
9. Pritt B.S., Respicio-Kingry L.B., Sloan L.M., Schriefer M.E., Replogle A.J., Bjork J., et al. Borrelia mayonii sp. nov., a member of the Borrelia burgdorferi sensu lato complex, detected in patients and ticks in the upper midwestern United States. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2016; 66(11): 4878-80. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.001445
10. Shapiro E.D. Borrelia burgdorferi (Lyme disease). Pediatr. Rev. 2014; 35(12): 500-9. https://doi.org/10.1542/pir.35-12-500
11. Franke J., Hildebrandt A., Dorn W. Exploring gaps in our knowledge on Lyme borreliosis spirochaetes - updates on complex heterogeneity, ecology, and pathogenicity. Ticks Tick Borne Dis. 2013; 4(1-2): 11-25. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2012.06.007
12. Egemberdieva R.A., Ermukhanova N.T., Dmitrovskiy A.M., Shapieva Zh.Zh., Kyraubaev K.K., Lavrenyuk V.I. Epidemiological characteristics of some tick-borne vector-borne infections in Kazakhstan. Natsional'nye prioritety Rossii. 2013; (2): 92-4. (in Russian)
13. Egemberdieva R.A., Toksanbaeva K.N., Duisenova A.K., Er-mukhanova N.T. Clinical manifestations of chronic forms tickborne borreliosis in the East Kazakhstan area. Vestnik Kazakhs-kogo natsional'nogo meditsinskogo universiteta. 2013; (2): 89-92. (in Russian)
14. Filippova N.A. Ixod mites of the subfamily Ixodidae. In: Filip-pova N.A. Fauna of the USSR. Arachnida. Volume IV, Issue 4 [Fauna SSSR. Paukoobraznye. Tom IV, vypusk 4]. Leningrad: Nauka; 1977. (in Russian)
15. Egemberdieva R.A. Clinical and epidemiological manifestations of some natural focal vector-borne infections in Kazakhstan: Diss. Alma-Ata; 2011. (in Russian)
16. Kovalev S.Y., Fedorova S.Zh., Mukhacheva T.A. Molecular features of Ixodes kazakstani: first results. Ticks Tick Borne Dis. 2018; 9(3): 759-61. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2018.02.019
17. Kurmangalieva K.B., Atygaeva S.K., Zhamburchinova A.N., Shirshikbaeva G.E. Case of Lyme disease in a non-endemic-region. Zhurnal infektologii. 2014; 6(1): 93-4. (in Russian)
18. Rubel F., Brugger K., Walter M., Vogelgesang J.R., Didyk Y.M., Fu S., et al. Geographical distribution, climate adaptation and vector competence of the Eurasian hard tick Haemaphysalis concinna. Ticks Tick Borne Dis. 2018; 9(5): 1080-9. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2018.04.002
19. Perfilyeva Y.V., Shapiyeva Zh., Ostapchuk E.O., Berdygulo-va Zh., Bissenbay A.O., Kulemin M.V., et al. Tick-borne patho-
Информация об авторах
Бисенбай Акерке Онгарбайкызым — н.с. отдела
биобезопасности и биозащиты Филиала РГП НЦБ в г. Алматы,
Алматы, Республика Казахстан.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-7109-2534.
E-mail: [email protected]
Жигайлов Андрей Викторович — к.б.н., в.н.с. лаб.
молекулярной биологии Филиала РГП НЦБ в г. Алматы, Алматы,
Республика Казахстан.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-9646-033X.
Перфильева Юлия Викторовна — к.б.н., в.н.с. лаб. экспертизы и диагностики Филиала РГП НЦБ в г Алматы, Алматы, Республика Казахстан.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-6803-0773.
gens and their vectors in Kazakhstan — a review. Ticks Tick Borne Dis. 2020; 11(5): 101498. https://doi.Org/10.1016/j.ttbdis.2020.101498
20. Strle F., Stanek G. Clinical manifestations and diagnosis of Lyme borreliosis. Curr. Probl. Dermatology. 2009; 37: 51-110. https://doi.org/10.1159/000213070
21. Karpov I.A., Solovey N.V., Anis'ko L.A., Shcherba V.V., Dani-lov D.E. Lyme borreliosis: questions of diagnosis and rational antibacterial treatment. Klinicheskaya infektologiya i parazi-tologiya. 2015; (3): 64-80. (in Russian)
22. Crowder C.D., Matthews H.E., Schutzer S., Rounds M.A., Luft B.J., Nolte O., et al. Genotypic variation and mixtures of Lyme Borrelia in Ixodes ticks from North America and Europe. PLoS One. 2010; 5(5): e10650. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0010650
23. Lee S.H., Vigliotti V.S., Vigliotti J.S., Jones W., Pappu S. Increased sensitivity and specificity of Borrelia burgdorferi 16S ribosomal DNA detection. Am. J. Clin. Pathol. 2010; 133(4): 569-76. https://doi.org/10.1309/AJCPI72YAXRHYHEE
24. Greisen K., Loeffelholz M., Purohit A., Leong D. PCR primers and probes for the 16S rRNA gene of most species of pathogenic bacteria, including bacteria found in cerebrospinal fluid. J. Clin. Microbiol. 1994; 32(2): 335-51. https://doi.org/10.1128/JCM.32.2.335-351.1994
25. Ogden N.H., Bouchard C., Kurtenbach K., Margos G., Lindsay L.R., Trudel L., et al. Active and passive surveillance and phylogenetic analysis of Borrelia burgdorferi elucidate the process of Lyme disease risk emergence in Canada. Environ. Health Perspect. 2010; 118(7): 909-14. https://doi.org/10.1289/ehp.0901766
26. Ripoche M., Gasmi S., Adam-Poupart A., Koffi J.K., Lindsay L.R., Ludwig A., et al. Passive tick surveillance provides an accurate early signal of emerging Lyme disease risk and human cases in Southern Canada. J. Med. Entomol. 2018; 55(4): 1016-26. https://doi.org/10.1093/jme/tjy030
27. Bekshin Zh.M., Esmagambetova A.S., Akhmetov V.N. Sanitary and Epidemiological Situation in the Republic of Kazakhstan in 2018 [Sanitarno-epidemiologicheskaya situatsiya v Respublike Kazakhstan za 2018 god]. Almaty; 2019: 111-8. (in Russian)
28. Galuzo I.G. Blood-Sucking Ticks of Kazakhstan. Volume 1 [Krovososushchie kleshchi Kazakhstana. Tom 1]. Alma-Ata; 1946. (in Russian)
29. Richter D., Allgöwer R., Matuschka F.R. Co-feeding transmission and its contribution to the perpetuation of the Lyme disease spirochete Borrelia afzelii. Emerg. Infect. Dis. 2002; 8(12): 1421-5. https://doi.org/10.3201/eid0812.010519
30. Adham F.K., El-Samie-Abd E.M., Gabre R.M., El Hussein H. Detection of tick blood parasites in Egypt using PCR assay II — Borrelia burgdorferi sensu lato. J. Egypt. Soc. Parasitol. 2010. 40: 553-564.
31. Gern L., Humair P.F. Ecology of Borrelia burgdorferi sensu lato in Europe. In: Gray J., Kahl O., Lane R.S., Stanek G., eds. Lyme Borreliosis Biology, Epidemiology and Control. New York: CABI Publishing; 2002: 149-74.
Information about the authors
Akerke O. Bissenba^ — researcher, Department of biosafety
and biosecurity, Almaty Branch of National Center for Biotechnology
(NCB), Almaty, Kazakhstan.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-7109-2534.
E-mail: [email protected]
Andrey V. Zhigailov — PhD (Biol.), leading researcher, Laboratory
of molecular biology, Almaty Branch of NCB, Almaty, Kazakhstan.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-9646-033X.
Yuliya V. Perfilyeva — PhD (Biol.), leading researcher, Laboratory
for expertise and diagnostics, Almaty Branch of NCB, Almaty,
Kazakhstan.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-6803-0773.
ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
Найзабаева Динара Адамжанкызы — м.н.с. лаб. экспертизы и диагностики Филиала РГП НЦБ в г. Алматы, Алматы, Республика Казахстан.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-0606-4289. Неупокоева Алена Сергеевна — с.н.с. лаб. экспертизы и диагностики Филиала РГП НЦБ в г. Алматы, Алматы, Республика Казахстан.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-7257-8037.
Бердыгулова Жанна Амировна — н.с. лаб. молекулярной биологии Филиала РГП НЦБ в г. Алматы, Алматы, Республика Казахстан.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0003-0379-2472.
Остапчук Екатерина Олеговна — PhD, в.н.с. лаб. молекулярной биологии Филиала РГП НЦБ в г. Алматы, Алматы, Республика Казахстан.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-3771-423X. Мальцева Элина Романовна — PhD, начальник отдела биобезопасности и биозащиты Филиала РГП НЦБ в г. Алматы, Алматы, Республика Казахстан. ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-9198-695X. Куатбекова Салтанат Алимбековна — м.н.с. лаб. экспертизы и диагностики Филиала РГП НЦБ в г. Алматы, Алматы, Республика Казахстан.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-5569-1847. Низкородова Анна Сергеевна — к.б.н., в.н.с. лаб. молекулярной биологии Филиала РГП НЦБ в г. Алматы, Алматы, Республика Казахстан.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-1597-7207.
Дмитровский Андрей Михайлович — д.м.н., проф., зав. лаб. экспертизы и диагностики Филиала РГП НЦБ в г. Алматы, Алматы, Республика Казахстан. ORCID ID: https://orcid.org/0000-0003-4714-3079.
Скиба Юрий Александрович — к.б.н., зам. директора Филиала РГП НЦБ в г. Алматы, Алматы, Республика Казахстан. ORCID ID: https://orcid.org/0000-0003-4895-1473. Мамадалиев Сейдигапбар Мамадалиевич — д.вет.н., проф., директор Филиала РГП НЦБ в г. Алматы, Алматы, Республика Казахстан.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-7767-0251.
Участие авторов: все авторы сделали эквивалентный вклад в подготовку публикации.
Dinara A. Naizabayeva — junior researcher, Laboratory for expertise and diagnostics, Almaty Branch of NCB, Almaty, Kazakhstan. ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-0606-4289. Alena S. Neupokoyeva — senior researcher, Laboratory for expertise and diagnostics, Almaty Branch of NCB, Almaty, Kazakhstan.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-7257-8037.
Zhanna A. Berdygulova — PhD, leading researcher, Laboratory
of molecular biology, Almaty Branch of NCB, Almaty, Kazakhstan.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0003-0379-2472.
Yekaterina O. Ostapchuk — PhD, leading researcher, Laboratory
of molecular biology, Almaty Branch of NCB, Almaty, Kazakhstan.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-3771-423X.
Elina R. Maltseva — PhD, Head, Biosafety and biosecurity department, Almaty Branch of NCB, Almaty, Kazakhstan. ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-9198-695X. SaltanatA. Kuatbekova — junior researcher, Laboratory for expertise and diagnostics, Almaty Branch of NCB, Almaty, Kazakhstan.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-5569-1847.
Anna S. Nizkorodova — PhD (Biol.), leading researcher, Laboratory
of molecular biology, Almaty Branch of NCB, Almaty, Kazakhstan.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-1597-7207.
Andrey M. Dmitrovskiy — D. Sci. (Med.), Prof., Head, Laboratory
for expertise and diagnostics, Almaty Branch of NCB, Almaty,
Kazakhstan.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0003-4714-3079.
Yuriy A. Skiba — PhD (Biol.), Deputy director, Almaty Branch
of NCB, Almaty, Kazakhstan.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0003-4895-1473.
SeydigapbarM. Mamadaliyev — D. Sci. (Vet.), Prof., Director,
Almaty Branch of NCB, Almaty, Kazakhstan.
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-7767-0251.
Contribution: the authors contributed equally to this article.
