CC BY
41
ложительном влиянии препаратов биоинфузин и гистоген на функцию молочной железы коров опытной группы. Наилучший эффект получен в опытной группе при применении биоинфузина и гистогена в комплексе с препаратом цефтонит.
3. Сравнительные результаты производственного испытания биоинфузина и гистогена для лечения клинической формы мастита у коров
Применение препаратов биоинфузин и ги-стоген снижает заболеваемость коров маститом в послеродовой период на 58,3 %. Результаты послужат основанием для разработки эффективного способа лечения мастита у коров в послеродовой период.
Выводы. В ходе исследования было установлено, что мастит коров составляет в среднем 41,7 % от общего числа заболевших животных внутренними незаразными болезнями в Пермском крае. Разработан новый способ лечения клинической формы мастита в послеродовой период, обеспечивающий увеличение терапевтической эффективности на 58,3 %. Он заключается в использовании иммуномодулятора биоинфузина в дозе 2,5 мл/100 кг живой массы животного, ежедневно, в течение 7 суток, гистогена подкожно, в дозе 0,02 мл/1 кг, с 1-го дня лечения,
ежедневно, в течение 7 суток, и цефтонит в дозе 1,0 мл на 50 кг массы тела животного, с интервалом в 24 часа, в течение 5 суток.
Литература
1. Зеккони А., Кальвинхо Л., Фокс Л. Инфицирование молочной железы коров стафилококком // Молочная промышленность. 2007. № 2. С. 27 -28.
2. Экдистероиды: учебно-методическое пособие / А.А. Ивановский, Н.П. Тимофеев, С.Н. Копылов [и др.]. Киров: ФГБОУ ВПО Вятская ГСХА, 2012. 45 с.
3. Овсянников А.И. Основы опытного дела. М.: Колос, 1976. 304 с.
4. Ивановский А.А., Андреева С.Д. Исследование фармакологических свойств фитокомплекса на основе левзеи, серпухи и лабазника // Иппология и ветеринария. 2018. № 2 (28). С. 71 - 74.
5. Мастит у коров. Часть I. Распространение, этиология, классификация, патогенез: учеб. пособие / И.Г Конопельцев, В.Н. Шулятьев, Е.В. Видякина [и др.]. Киров: ГСХА, 2006. 72 С.
6. Леонтьев Л.Б., Кульмакова Н.И. Физиологический статус дойных коров // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2012. № 4. С. 25 - 26.
7. Никулин Д. М. Стафилококковый мастит коров // Нивы Зауралья. 2015. № 6. С. 74 -77.
8. Ветеринарная гематология / Г.А. Симонян [и др.]. М.: Колос, 1995. 256 с.
9. Слободяник В.И. Опыт применения иммунокорректоров // Ветеринария. 2013. №1. С. 42 - 44.
10. Пособие по биохимическим исследованиям крови, мочи, молока для диспансеризации с.-х. животных и оборудованию биохимических отделов ветеринарных лабораторий. М., 1970. 45 с.
11. Жук Ю.В., Любецкий В.И. Комплексное лечение коров, больных маститом // Инновационные технологии в ветеринарии, биологии и экологии: матер. междунар. науч.-практич. конф. Ч. 2: сб. науч. тр. Троицк: УГАВМ, 2013. 181 с.
12. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии / И.П. Кондрахин [и др.]. М., 1983. 63 с.
13. Плохинский Н.А. Биометрия. М.: Изд-во МГУ, 1970. 367 с.
14. Abdussalam M., Kaferstein F.K. Food safety and primary health care // World Health Forum. 1994. Р. 393 - 399.
15. Kaplan M.M. Болезни, передаваемые через молоко // Гигиена молока. Женева, 1983. С. 86.
16. Eberhart R.O. Mastitis and the dry period/R.O.Eberhart//Proceedings of the Fifteenth annual convention: American association of bovine practitioners. 1983. P. 62 - 64.
17. Mastitis of dairy cows / F.H.S. Newbould, R.S. Butler // Holstein J. 1982.Vol. 45. №1. P. 49 - 50.
Показатель Группа
контрольная опытная
Количество животных, гол. 12 12
Мастит в период после отёла, гол/% 9/75 2/16,7
Лечебная эффективность, % 25 83,3
Эмбриональное развитие кожи и её производных у кошек на стадии развития с 38-го по 44-й день
А.Э. Захарова, аспирантка, Н.А. Татарникова, д.в.н., профессор, ФГБОУ ВО Пермский ГАТУ
Эмбриогенез - это начальная стадия онтогенеза живых существ. Эмбриогенез (от греческого слова «эмбрион» - зародыш, генезис - происхождение) - это физиологический процесс, в ходе которого происходит образование и развитие эмбриона [1 - 3].
Началом развития эмбриона кошки можно считать половой акт, спаривание. В процессе спаривания миллионы сперматозоидов попадают во влагалище кошки, но только несколько сотен из них достигают фаллопиевых труб. Сперма кота, соединяясь с яйцеклеткой, образует зиготы -оплодотворённые яйцеклетки. Развитие зародыша
происходит стадийно, с постепенными качественными и количественными изменениями [4, 5].
Из курса эмбриологии известно, что развитие органов, в том числе и центральной нервной системы, происходит в основном во второй половине формирования эмбриона [6]. Развитие же кожи начинается на первых неделях эмбрионального периода и продолжается вплоть до его окончания. Кожа является не только самым большим органом, но и самым сложноорганизованным и многокомпонентным [3, 7].
Цель исследования - изучение эмбриогенеза кожи и её производных у кошек на различных стадиях развития.
Материалы и методы исследования. Исследование проводили на базе кафедры инфек-
ИЗВЕСТИЯ ОРЕНБУРГСКОГО ГОСУДАРСТВЕННОГО АГРАРНОГО УНИВЕРСИТЕТА
2019 • № 6 (80)
ционных болезней факультета ветеринарной медицины и зоотехнии Пермского государственного аграрно-технологического университета, ветеринарной клиники «Доктор Вет» (г. Пермь), ветеринарной клиники «Единорог» (г. Пермь) и патолого-анатомической лаборатории Пермской краевой детской больницы.
Материалом для исследования служили плоды кошек в возрасте 38 - 44 дн., извлечённые из экстирпированной матки при проведении стерилизации животного. Извлечённые плоды консервировались в 10 %-ном растворе формалина. Срок развития плода устанавливали по определителю A.L. Leipoldt [3]. Плоды были взвешены на аналитических электронных весах и измерены миллиметровой линейкой. Внешний вид плодов был подвергнут тщательному описанию. Мелкие части тела осматривали в тёмном поле при помощи лупы при увеличении в 2 и 3 раза.
После макроскопических измерений материал был подвергнут гистологическому исследованию. Окраску микропрепаратов проводили гематоксилином и эозином (обзорная методика) [8]. Методика сочетает в себе основной и кислый красители и позволяет выявить почти все клетки и неклеточные структуры. Ядра клеток при этом методе окрашивания приобретают сине-фиолетовый цвет, а цитоплазма - желтовато-розовый. Го -товые микропрепараты микроскопировали на световом общепрофессиональном лабораторном тринокулярном микроскопе Microsreen (Hospitex Diagnostics) c широкопольными окулярами х10. При увеличении х4; х10; х40; х100.
Результаты исследования. По результатам макроскопического исследования вес плода на стадии 38 - 44 дн. составлял 19,32 г, размер головы - 23 х 26 мм, туловища - 83 мм, передней лапы - 33 мм, задней лапы - 44 мм (рис. 1).
У плодов отмечали отсутствие выпячиваний в затылочной и лобной частях головы. Ушная раковина была хорошо различима, наблюдалось увеличение размера ушей. Веки были практически сформированы, глаза закрыты. Все пальцы на конечностях, производные когтей, метатар-зальные подушечки хорошо различались. На коже появились складки, она становится толще, удлинялся хвост.
Результаты микроскопического (гистологического) исследования показали происходящие по всей поверхности эпидермиса изменения, ведущие к дифференцировке его слоев. На стадии 38 - 44 дн. в эпидермисе плода были чётко различимы развивающиеся слои: зернистый, шиповатый и базальный (рис. 2).
Рис. 2 - А - эпидермис: 1 - базальный слой; 2 -шиповатый слой; 3 -зернистый слой ; Б -дерма. Окраска гематоксилином и эозином, увеличение х40
Под базальным слоем уже появились первые клетки дермы, фибробласты
На рассматриваемом этапе развития ушная раковина и слуховой проход у плода имели чёткие границы и чёткую дифференцировку эпителиальных клеток и хондроцитов (рис. 3).
Рис. 1 - Измерение извлечённого плода
Рис. 3 - А - ушная раковина; Б - слуховой проход. Окраска гематоксилином и эозином, увеличение х4
Происходило формирование первых меланоцитов в радужке глаза.
На данном этапе развития продолжается и усиливается формирование волосяных сумок вибрисов, видна чёткая дифференцировка клеток и слоёв. Сформирован фолликул (волосяная сумка), кутикула, кортекс и медула (рис. 4, 5).
периода происходило формирование и дифференциация клеток перидерма.
Выводы. Эмбриогенез кожи кошек имеет ряд существенных отличий по сравнению с эмбриогенезом кожи, описанных в учебной литературе по эмбриологии и гистологии. Следовательно, мы можем утверждать, что эмбриогенез кожи
Рис. 4 - Развитие вибрисов: 1 - волосяная сумка.
Окраска гематоксилином и эозином, увеличение х4
В данном исследовании не были рассмотрены другие стадии развития эмбрионов и плодов. Это означает, что работу по эмбриогенезу кожи кошек нельзя считать законченной. Нами исследована часть цикла развития плодов кошки и уже на этом этапе мы получили достаточный объём новой информации, которую не встретили в российской и зарубежной литературе. Ранее нами было исследовано развитие плодов кошки на стадии 19 - 21 и 28 - 32 дн. и установлено, что на 3-й неделе развития у эмбриона уже сформирован первичный эпителиальный покров всего тела. Первичный эпидермис состоит из одного слоя плоских эпителиальных клеток, при этом отмечалась неравномерная плотность первичного эпидермиса и первичной дермы (перидермы) на разных частях тела. Так, плотность перидермы на голове и спине эмбриона была меньше, чем на других частях тела, особенно на конечностях. На голове плотность расположения клеток перидерма уменьшалась по направлению к околоплодной жидкости. С 4-й недели развития у эмбриона чётко различались формирующиеся веки и брови. Эпидермис по всей поверхности претерпевал изменения, ведущие к дифференцировке его слоев. На протяжении 3 -5-й недели эмбрионального
Рис. 5 - Развитие вибрисов: 1 - кортекс; 2 - медула;
3 - кутикула. Окраска гематоксилином и эозином, увеличение х40.
различен и индивидуален для каждого вида животного.
Развитие кожи начинается на первых неделях эмбрионального периода и продолжается до его окончания. При этом развитие других органов, в том числе и центральной нервной системы, начинается в основном во второй половине развития эмбриона. Следовательно, кожа является не только самым большим органом, но и самым сложноорганизованным и многокомпонентным.
Литература
1. Улумбеков Э.Г., Челышев Ю.А., Бойчук Н.В. Гистология, эмбриология, цитология. 3-е изд. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. 480 с.
2. Fletcher T.F., Weber A.F. Veterinary Developmental Anatomy (veterinary embryology). 2013. P. 1 - 82.
3. Становление эмбриологии как науки [Электронный ресурс]. URL: http://veterinarua.ru/embriologiya/96-embriologiya.html.
4. Leipoldt A.L. Эмбриология домашней кошки.
5. Histology of the Skin [Электронный ресурс]. URL: https://ru.scribd.
com/document/78595902/Histology-of-the-Skin.
6. Студеникина, Т.М., Жарикова Н.А., Китель В.В. Основы гистологии, цитологии, эмбриологии: учеб.-метод. пособ. Минск: БГМУ, 2014. 152 с.
7. Захарова А.Э., Татарникова Н. А., Волков С.В. Эмбриогенез кожи у кошек на этапе развития 19 - 21 день // Агротехнологии XXI века: матер. Всерос. науч.-практич. конф. с междунар. участ. Пермь, 2017. С. 190 -193.
8. Семченко В.В., Барашкова С.А., Артемьев В.Н. Гистологическая техника: учеб. пособ. 2-е изд., стереотип. Омск: Омская медицинская академия, 2003. 152 с.
