Научная статья на тему 'Экспериментальный анализ влияния половых стероидных гормонов на состояние стероидсекреторных клеток у молоди лососевых рыб'

Экспериментальный анализ влияния половых стероидных гормонов на состояние стероидсекреторных клеток у молоди лососевых рыб Текст научной статьи по специальности «Биологические науки»

CC BY
175
67
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Журнал
Biological Communications
WOS
Scopus
ВАК
RSCI
Область наук
Ключевые слова
ГОРМОНАЛЬНОЕ ВОЗДЕЙСТВИЕ / СТЕРОИДСЕКРЕТОРНЫЕ КЛЕТКИ / ГОРБУША / КИЖУЧ / HORMONAL TREATMENT / STEROID-PRODUCING CELLS / PINK SALMON / COHO SALMON

Аннотация научной статьи по биологическим наукам, автор научной работы — Мосягина Марина Васильевна, Зеленников Олег Владимирович

Экспериментальное исследование на молоди горбуши и кижуча проводилось с целью воздействовать гормональными препаратами на ход естественного развития гонад и, в частности, на процессы дифференцировки пола, формирование фонда половых клеток, темп роста ооцитов и получить данные о роли СК в их регуляции. Суммируя полученные данные, можно отметить, что независимо от вида рыб, этапа гаметогенеза, на который приходилось начало гормонального воздействия (индифферентный — опыты 1 и 4, в период цитологической дифференцировки пола — опыт 2, или после формирования у самок старшей генерации превителлогенных ооцитов — опыт 3), способа воздействия (инъекция или с кормом), вида гормона (тестостерона пропионат, эстрадиола дипропионат, эстрадиол-17β) наблюдали сходные изменения. У самок в ходе развития яичников происходило подавление протоплазматического роста ооцитов и стероидогенной функции овариальных фолликулов, с одной стороны, и активация функции СК в строме гонад — с другой. У самцов во всех вариантах обработки эстрадиолом наблюдали новообразование ооцитов и смещение активности СК из стромы гонад в овариальные фолликулы.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по биологическим наукам , автор научной работы — Мосягина Марина Васильевна, Зеленников Олег Владимирович

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

A study of steroid cells in gonads of salmon fry after hormonal treatment

The state of steroid-producing cells (SPCs) in fry pink and coho salmon was studied after treatment with sex steroid hormones in different doses and at different stages of gonadal sex differentiation. Thus, SPCs activity increased in gonads in test fish whose condition of gonads at the moment of analysis was different from the condition of gonads in control fish. High activity of SPCs was observed irrespective of whether hormonal treatment suppressed or stimulated development of sex cells fund and also irrespective of the time of SPCs investigation (during the hormonal treatment of test fish or a long period of time aft erwards).

Текст научной работы на тему «Экспериментальный анализ влияния половых стероидных гормонов на состояние стероидсекреторных клеток у молоди лососевых рыб»

2012 ВЕСТНИК САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКОГО УНИВЕРСИТЕТА Сер. 3 Вып. 4

ЗООЛОГИЯ

УДК 597.533.2.591.46

М. В. Мосягина, О. В. Зеленников

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЙ АНАЛИЗ ВЛИЯНИЯ ПОЛОВЫХ СТЕРОИДНЫХ ГОРМОНОВ НА СОСТОЯНИЕ СТЕРОИДСЕКРЕТОРНЫХ КЛЕТОК У МОЛОДИ ЛОСОСЕВЫХ РЫБ

К настоящему времени в литературе накоплено много сведений о роли стероид-секреторных клеток (СК) в регуляции процессов дифференцировки пола у рыб [1-5]. Вместе с тем все имеющиеся по данной теме работы посвящены анализу естественного протекания этого процесса у разных видов рыб. Цель нашей работы, также посвященной исследованию регуляции дифференцировки пола, — впервые проанализировать состояние СК после гормонального воздействия на ход оо- и сперматогенеза.

Материалы и методы исследования

Стероидсекреторные клетки исследовали в гонадах молоди горбуши ^п^^п^ш gorbuscha) и кижуча ^. kisutch), которых обрабатывали гормональными препаратами в разном возрасте и при различном исходном состоянии гонад. Всего было поставлено четыре опыта, для проведения которых икру лососей на стадии пигментации глазных бокалов доставляли в лабораторию ихтиологии СПбГУ: горбуши — с Выгского (Республика Карелия) и Анивского (Сахалинская обл.), кижуча — с Буюкловского рыбоводных заводов (Сахалинская обл.). В лаборатории икру и личинок содержали при температуре воды 9-11°С, а молодь после начала кормления — при температуре 15-18 °С. В первом и втором опытах инъекцию гормона делали непосредственно в желточный мешок эмбрионов и личинок. В третьем и четвертом — гормон задавали с кормом.

Опыт 1: зародышам горбуши, гонады которых находились в индифферентном состоянии, с целью повлиять на ход феминизации половых желез, была сделана инъекция 1%-ного масляного раствора тестостерона пропионата. Доза гормона составила 4 мкг/икринку или 24 мкг/г массы. Пик вылупления зародышей пришелся на 14-е сутки после воздействия. Фиксацию гонад для электронно-микроскопического исследования провели через 108 сут после воздействия в возрасте 94 сут после вылупления.

Опыт 2: личинкам горбуши в возрасте одних суток после вылупления была проведена инъекция 0,1%-ного раствора эстрадиола дипропионата с целью повлиять на ход инверсии пола у самцов и формирование фонда ооцитов у самок. Доза гормона составила 4 мкг/особь. Ультраструктурный анализ состояния СК проводили через 76 сут после воздействия.

© М. В. Мосягина, О. В. Зеленников, 2012

Опыт 3: на молодь горбуши с возраста 55 сут от вылупления оказывали воздействие масляным раствором 0,1%-ного эстрадиола дипропионата в течение 30 сут с целью: у самцов вновь вызвать вторичную феминизацию гонад после завершения естественной инверсии пола; у самок — стимулировать пополнение фонда ооцитов. Гормональный препарат замешивали в корм — замороженный мотыль из расчета 50 мкг/г массы тела.

Опыт 4: на молодь кижуча с возраста 58 сут оказывали воздействие эстрадио-лом-17^, который задавали с кормом в течение 42 сут с целью повлиять на формирование фонда ооцитов. Гормон предварительно растворяли в спирте и замешивали в гранулированный корм из расчета 100 мг/кг корма.

Молодь обоих видов кормили комбинированным кормом производства «Биомар» (Дания), рассчитывая периодичность кормления и суточную норму корма, согласно приложенным к нему рекомендациям с учетом возраста рыб и температуры воды.

Фиксацию гонад у всех особей проводили в 6%-ном глутаральдегиде на каккоди-латном буферном растворе (рН 7,2-7,4) в течение 2 ч при 4 °С. Затем после промывки материал дофиксировали в 1%-ном растворе 0з04 на том же буфере, и после обезвоживания в спиртах и ацетоне заливали в Эпон-812. Полутонкие срезы, полученные на ультратоме ЬКБ-Ш и иКгаси^ окрашивали метиленовым синим. Ультратонкие срезы контрастировали уранил-ацетатом и цитратом свинца [6]. Готовые препараты просматривали на электронном микроскопе Тез1а-500.

Стероидсекреторные клетки в гонадах идентифицировали по характерным для них ультраструктурным признакам — митохондриям с трубчато-везикулярными кри-стами, канальцам агранулярного эндоплазматического ретикулума и липидным включениям [7].

Для оценки функциональной активности СК проводили количественный анализ, в ходе которого измеряли размеры самих СК, их ядер, диаметры митохондрий, канальцев эндоплазматического ретикулума и различных включений, а также относительные объемные плотности этих ультраструктур. Клетки, выявленные в составе оболочек ооцитов: теки и гранулезы имели уплощенную форму; их размеры представляли по наибольшему и наименьшему диаметру (например: 8,7 ± 0,62 х 2,6 ± 0,18 мкм). Клетки, локализованные в строме или оболочке гонад, имели полигональную форму; их размеры представляли как полусумму большого и малого диаметров. Измерения проводили по стандартным методикам [8-10] с использованием компьютерной системы анализа изображений «ВидеоТест-Морфа». Обработку данных проводили с помощью стандартных статистических программ. Для сравнения средних значений использовали ^критерий Стьюдента.

Результаты исследования

Опыт 1. Влияние тестостерона пропионата на гаметогенез горбуши в период протогинической феминизации гонад у зародышей. Воздействие тестостерона про-пионата не предотвратило феминизацию гонад у зародышей как будущих самок, так и будущих самцов, а также не оказало заметного влияния на последующую естественную инверсию пола у генотипических самцов. Вместе с тем у самок последствия однократного гормонального воздействия проявились значительно позже, уже в процессе формирования в яичниках фонда превителлогенных ооцитов, и выразились в умень-

шении числа и снижении темпа роста клеток этого периода [11]. Для анализа возможного отсроченного действия экзогенного тестостерона на развитие гонад исследовали состояние СК у рыб через 108 сут после инъекции гормона (в возрасте 94 сут после вылупления). В момент фиксации длина и масса контрольных и подопытных рыб были сходными и варьировали от 35 до 47 мм и от 220 до 420 мг соответственно. В яичниках тех и других рыб в момент фиксации присутствовали преимущественно ооциты периода превителлогенеза (7-12 на поперечный срез) диаметром до 120-150 мкм, а также единичные гонии и мейоциты. В семенниках контрольных и подопытных самцов присутствовали только гонии.

У контрольных самок СК были обнаружены только в теке фолликулов превител-логенных ооцитов, а у самцов исключительно в эпителии семенников.

В отличие от этого у подопытных самок СК присутствовали как в теке фолликулов превителлогенных ооцитов, так и в строме гонад. При этом большинство СК характеризовались сравнительно небольшими размерами, полигональной формой и находились именно в строме яичников, располагаясь у многочисленных кровеносных капилляров, часто группами по 2-3. В ядрах этих клеток, округлой или вытянутой формы, можно было видеть характерное для СК пристеночное расположение хроматина (рис. 1 А), а в цитоплазме канальцы хорошо развитой агранулярной эндоплазматиче-ской сети (АЭР), о чем можно судить по их среднему диаметру (0,21 мкм) и относительной объемной плотности в цитоплазме — 28,5% (таблица). Стероидсекреторные клетки в составе теки фолликулов (рис. 1 Б) отличались уплощенной формой с вере-теновидным ядром. Размеры этих клеток, а также диаметр митохондрий и канальцев агранулярной сети были достоверно меньше, чем в контроле. Отмечено также снижение объемной плотности этих органоидов в цитоплазме СК у подопытных самок (см. таблицу), и появление липидных включений размером в среднем 1,04 ± 0,14 мкм. Таким образом, активность СК в составе теки фолликулов превителлогенных ооцитов в яичниках подопытных самок понижается. При этом появляется большое количество активных СК в составе стромы.

В отличие от контрольных, у подопытных самцов СК располагались исключительно в строме семенников. Диаметр митохондрий и канальцев агранулярной эндоплаз-матической сети был значительно меньше, чем у контрольных рыб (см. таблицу).

По совокупности полученных данных можно заключить, что состояние СК у контрольных и подопытных рыб, изученных нами спустя 108 сут после гормонального воздействия, как у самок, так и у самцов существенно различалось. Исследования, проведенные ранее [12], позволяют выделить основные направления развития секреторной функции гонад у молоди горбуши. Так, у самок с ростом превителлогенных ооци-тов в яичниках происходит изменение локализации СК из стромы в оболочки ооцитов и увеличение функциональной активности СК в составе теки. У самцов в период инверсии пола СК располагаются только в строме — наибольшая активность СК в стро-ме, а после завершения этого процесса — только в эпителии половых желез. Затем СК снова появляются в строме, т. е. располагаются именно там, где и у взрослых рыб в период созревания [13]. Учитывая эти тенденции, следует отметить, что после воздействия тестостероном у подопытных самок горбуши гонады были менее развиты, а у самцов, напротив, более развиты, чем в контроле. Об этом можно судить по тому, что и в яичниках, и в семенниках СК локализованы преимущественно в строме гонад. Однако если для самок это соответствует гонадам, менее развитым в плане становления

Рис. 1. Стероидсекреторные клетки в составе стромы (А) и в теке фолликула превител-логенного ооцита (Б) в яичнике подопытной самки горбуши после воздействия экзогенным тестостероном

На рис. 1 можно видеть ядро (я), митохондрии с трубчато-везикулярными кристами (м), канальцы гранулярного (ГЭР) и агранулярного эндоплазматического ретикулума (АЭР), а также липидные включения (л); Ув. (А) х10200. Ув. (Б) х16500.

Характеристика стероидсекреторных клеток (СК) в гонадах у молоди рыб после воздействия

гормональными препаратами

Пол Проба Локализация СК Средний диаметр, мкм (относительная объемная плотность, %)

СК митохондрий канальцев АЭР

Горбуша через 108 сут (94 сут от вылупления) после инъекции раствора тестостерона пропионата зародышам с гонадами индифферентного состояния (ОП-1)

Самки К тека 10,1 ± 0,87 х 2,4 ± 1,26 0,58 ± 0,054 (15,7) 0,23 ± 0,026 (18,8)

ОП то же 7,3 ± 1,84 х 1,7 ± 0,06 0,44 ± 0,035 (10,5) 0,15 ± 0,022 (14,7)

строма 5,2 ± 0,57 0,46 ± 0,033 (14,7) 0,21 ± 0,029 (28,5)

Самцы К эпителий 4,9 ± 0,82 0,62 ± 0,027 (12,7) 0,16 ± 0,029 (14,1)

ОП строма 4,3 ± 0,79 0,33 ± 0,017 (7,6) 0,12 ± 0,019 (16,9)

Горбуша через 76 сут (76 сут от вылупления) после инъекции эстрадиола дипропионата личинкам после феминизации их гонад (ОП-2)

Самки К тека 11,9 ± 0,84 х 4,2 ± 0,53 0,59 ± 0,090 (16,1) 0,10 ± 0,019 (17,7)

гранулеза 14,2 ± 1,72 х 2,3 ± 0,35 0,66 ± 0,060 (15,7) 0,16 ± 0,008 (16,2)

строма 5,0 ± 0,68 0,46 ± 0,053 (10,6) 0,11 ± 0,013 (11,5)

ОП тека 12,0 ± 1,01 х 3,7 ± 0,56 0,48 ± 0,032 (15,3) 0,16 ± 0,017 (16,5)

гранулеза 15,4 ± 2,03 х 2,1 ± 0,16 0,62 ± 0,092 (16,6) 0,11 ± 0,009 (16,0)

строма 5,2 ± 0,72 0,47 ± 0,062 (13,8) 0,16 ± 0,017 (18,4)

Самцы К то же 7,5 ± 0,89 0,55 ± 0,034 (13,1) 0,23 ± 0,021 (21,7)

ОП гранулеза 20,6 ± 2,65 х 1,9 ± 0,27 0,75 ± 0,098 (25,0) 0,32 ± 0,048 (20,8)

строма 5,5 ± 0,44 0,49 ± 0,045 (9,0) 0,16 ± 0,049 (14,5)

Горбуша после окончания хронического воздействия эстрадиола дипропионата в возрасте от 55 до 85 сут от вылупления (после завершения естественной дифференцировки пола) (ОП-3)

Самки К тека 12,5 ± 0,97 х 2,9 ± 0,47 0,62 ± 0,030 (18,7) 0,25 ± 0,031 (18,9)

гранулеза 13,4 ± 0,56 х 2,5 ± 0,24 0,71 ± 0,058 (12,7) 0,28 ± 0,033 (13,0)

строма 5,1 ± 0,91 0,36 ± 0,030 (11,6) 0,16 ± 0,016 (21,5)

ОП тека 12,8 ± 1,09 х 2,3 ± 0,36 0,64 ± 0,056 (19,5) 0,21 ± 0,011 (17,6)

гранулеза 16,1 ± 1,17 х 2,4 ± 0,72 0,61 ± 0,780 (13,5) 0,16 ± 0,020 (11,7)

строма 10,7 ± 1,76 0,62 ± 0,046 (19,9) 0,21 ± 0,020 (15,5)

Самцы К эпителий 4,5 ± 0,35 0,69 ± 0,041 (14,3) 0,16 ± 0,021 (15,2)

ОП строма 6,6 ± 0,52 0,96 ± 0,043 (16,2) 0,32 ± 0,022 (13,7)

Кижуч после окончания хронического воздействия эстрадиола-17@ на молодь в возрасте от 58 до 100 сут от вылупления (ОП-4)

Самки К внешн. тека 6,7 ± 0,81 0,53 ± 0,025 (16,9) 0,19 ± 0,012 (27,3)

внутр. тека 19,5 ± 1,10 х 6,2 ± 0,35 0,67 ± 0,058 (11,3) 0,11 ± 0,060 (15,8)

гранулеза 15,8 ± 1,50 х 2,1 ± 0,30 0,71 ± 0,056 (23,4) 0,17 ± 0,021 (22,3)

строма 9,0 ± 1,43 0,42 ± 0,078 (19,0) 0,16 ± 0,019 (14,6)

ОП тека 10,7 ± 0,85 х 1,2 ± 0,27 0,44 ± 0,015 (9,0) 0,15 ± 0,035 (9,1)

гранулеза 23,0 ± 1,60 х 2,3 ± 0,04 0,69 ± 0,048 (27,4) 0,17 ± 0,010 (28,1)

строма 7,7 ± 1,77 0,42 ± 0,030 (8,1) 0,11 ± 0,009 (12,5)

Самцы К строма 1 6,3 ± 0,42 0,75 ± 0,051 (29,6) 0,21 ± 0,019 (17,8)

строма 2 8,4 ± 1,06 0,41 ± 0,085 (5,8) 0,13 ± 0,014 (20,3)

эпителий 8,8 ± 0,81 0,66 ± 0,051 (10,5) 0,35 ± 0,040 (32,6)

ОП гранулеза 28,5 ± 0,96 х 4,8 ± 0,94 0,59 ± 0,090 (24,6) 0,20 ± 0,019 (29,3)

строма 8,7 ± 2,26 0,52 ± 0,093 (7,4) 0,12 ± 0,018 (10,4)

Примечание. К — контроль; ОП — опыт.

стероидсекреторной функции, то для самцов, напротив, гонадам с более развитой сте-роидсекреторной функцией.

Опыт. 2. Влияние эстрадиола на гаметогенез горбуши в период естественной инверсии пола. Однократная инъекция 0,1%-ного масляного раствора эстрадиола ди-пропионата в желточный мешок зародышей горбуши непосредственно после пика вылупления (возраст одни сутки) предотвращала естественную инверсию пола у ге-нотипических самцов горбуши и стимулировала оогенез как у самок, так и у самцов [14, 15]. В возрасте 76 сут длина и масса контрольных и подопытных рыб в среднем были сходными и варьировали от 36,0 до 52,0 мм и от 220 до 428 мг соответственно. У контрольных самок присутствовали преимущественно ооциты периода превител-логенеза (5-15 на поперечный срез) диаметром до 150 мкм, а также единичные гонии и мейоциты. У самцов в контроле фонд половых клеток был представлен исключительно гониями. У самок в опыте состояние гонад по микроанатомической структуре, числу и составу половых клеток не отличалось от состояния яичников у контрольных рыб. В отличие от этого, у всех самцов в опыте помимо гониев в гонадах присутствовали ооциты периодов ранней профазы мейоза и превителлогенеза.

У всех контрольных самок СК были обнаружены в составе теки и гранулезы фолликулов превителлогенных ооцитов, а также в строме яичников. У самцов СК располагались только в строме семенников.

У подопытных самок СК, как и у рыб в контроле, располагались в теке, гранулезе и строме гонад. Анализируя СК, локализованные в составе теки фолликулов, у первых можно отметить достоверное (р < 0,05) уменьшение диаметра митохондрий, у вторых — диаметра канальцев агранулярной сети. Впрочем в обоих случаях уменьшение размеров органоидов было компенсировано увеличением числа митохондриев и объема сети, в результате чего их относительная объемная плотность у самок в контроле и опыте оказалась сходной (см. таблицу). Вместе с тем у подопытных рыб значительно увеличилось количество СК в составе стромы, где они образовывали скопления по 5-6 клеток (рис. 2 А), и общее количество этих СК на срезе было сравнимо с количеством СК в составе теки фолликулов превителлогенных ооцитов. В этих клетках у подопытных рыб достоверно возрастает относительная объемная плотность митохон-дриев, а также объемная плотность и диаметр канальцев эндоплазматической сети, что, наряду с увеличением количества самих клеток в гонаде, говорит о возрастании их синтетической активности. Отметим также, что в яичниках подопытных самок преимущественно в периферической части цитоплазмы ооцитов значительно возрастало количество липидных включений, средний диаметр которых составил 1,23 ± 0,158 мкм.

Как было отмечено ранее, в семенниках всех подопытных самцов присутствовали ооциты периода превителлогенеза, резорбция которых была предотвращена экзогенным эстрадиолом. Однако в отличие от яичников генотипических самок у самцов оо-циты занимали не более половины площади гонад на поперечных срезах. СК в этих гонадах располагались как среди стромальных клеток, так и в составе гранулезы оставшихся ооцитов периода превителлогенеза.

Функциональная активность СК, выявленных в строме семенников у подопытных рыб, явно была понижена. Об этом можно судить по достоверному (р < 0,05) уменьшению размеров как самих клеток, так и объема агранулярной сети и диаметра ее канальцев (см. таблицу). Функциональная активность СК в гранулезе у самцов, напротив, существенно повысилась, о чем свидетельствует достоверное, почти в 2 раза, увеличение

Рис. 2. Стероидсекреторные клетки в яичнике (А) и семеннике (Б) подопытных особей горбуши после воздействия экзогенным эстрадиолом в период естественной инверсии пола:

А — группа СК в строме. Ув. х10400; Б — в гранулезе превителлогенного ооцита. Ув. х10000. оц — цитоплазма превителлогенного ооцита, бм — базальная мембрана, остальные условные обозначения как на рис. 1.

диаметра канальцев агранулярной эндоплазматической сети (см. таблицу) и наличие многочисленных липидных включений (рис. 2 Б) диаметром 1,67 ± 0,140 мкм.

Таким образом, однократная инъекция эстрадиола дипропионата личинкам горбуши на этапе феминизации гонад не повлияла на ход развития яичников, однако у подопытных самок достоверно увеличилось число и активность СК в строме. В гонадах генотипических самцов волна оогенеза, вызванная гормональным воздействием, сопровождалась смещением стероидогенной активности из стромы в гранулезу фолликулов превителлогенных ооцитов.

Опыт 3. Влияние эстрадиола на гаметогенез горбуши после завершения периода естественной инверсии пола. В начале опыта в возрасте 55 сут от вылупления (длина рыб от 27,5 до 38,5 мм и масса от 108 до 161 мг) в яичниках уже была сформирована единая генерация превителлогенных ооцитов (7-15 на поперечный срез) диаметром 60-80 мкм, а в семенниках присутствовали только гонии. Воздействие эстрадиола ди-пропионата не оказало заметного влияния на развитие гонад у самок. В отличие от этого у самцов наблюдали усиление митотической активности гониев и формирование нового фонда ооцитов [16].

В момент окончания воздействия в возрасте 85 сут у самок в контроле СК располагались среди клеток гранулезы, теки фолликулов ооцитов, а также в строме яичников, преимущественно вблизи мелких кровеносных сосудов. При этом основная масса СК находилась в составе теки. У контрольных самцов СК располагались только в эпителии семенников, в основном вблизи крупного кровеносного сосуда и в основании мезор-хия, поодиночке или небольшими группами (по 2-3 клетки).

У всех подопытных самок горбуши, как и у самок в контроле, СК были выявлены в составе гранулезы, теки и среди стромальных клеток; наибольшее их число обнаружено также в составе теки фолликулов. Морфофункциональное состояние СК в составе гранулезы и теки у подопытных и контрольных самок не различалось (см. таблицу). В отличие от этого размеры СК, локализованных в строме яичников у подопытных рыб, а также размеры ядер этих клеток, митохондрий и канальцев эндо-плазматической сети были достоверно (р < 0,05) больше, чем у самок в контроле (см. таблицу). В этих клетках также присутствовали многочисленные липидные включения (до 18-20 шт. в клетке на срез), диаметр которых варьировал от 0,5 до 2,7 мкм (см. таблицу; рис. 3 А).

У подопытных самцов число СК в ходе гормонального воздействия существенно увеличилось, так что суммарная площадь их поперечных срезов занимала не менее 25% площади среза семенников. Эти клетки располагались не только в оболочке, но и в стромальной ткани гонад. Причем большая их часть располагась именно в строме гонады группами по 5-6 клеток, окружая делящиеся гонии и ооциты периода ранней профазы мейоза. Это были крупные полигональные светлые клетки с округлыми ядрами (рис. 3 Б). Размер СК у подопытных рыб был достоверно (р < 0,05) больше, чем у контрольных, соответственно в среднем 6,6 и 4,5 мкм (см. таблицу). В цитоплазме этих клеток содержалось много крупных митохондрий округлой формы с большим количеством трубчато-везикулярных крист, диаметр которых в среднем также был достоверно (р < 0,05) больше, чем в СК семенников контрольных самцов (0,96 против 0,69 мкм), обширная агранулярная сеть, хорошо развитый аппарат Гольджи, лизосомы, большое количество свободных рибосом и многочисленные светлые липидные включения (см. таблицу).

Рис. 3. Фрагменты ткани яичника (А) и семенника (Б) молоди горбуши после воздействия эстрадиолом в период после завершения естественной инверсии пола:

А — кэ — клетки эпителия, кг — клетки гранулезы, кт — клетки теки. Ув. х4000. Б — группа СК в строме. Все обозначения как на предыдущих рисунках. Ув. х6500.

Анализируя полученные данные, можно сделать заключение, что гормональное воздействие оказало различное влияние на состояние яичников и семенников в целом и стероидсекреторных клеток в частности. У самок отмечено лишь накопление в цитоплазме СК, расположенных в строме, многочисленных липидных включений. Гормональное воздействие на самцов горбуши привело к значительному увеличению количества СК и повышению их синтетической активности, о чем свидетельствуют достоверное увеличение размеров СК, объема агранулярной эндоплазматической сети, рост числа и размеров митохондрий, появление множества липидных включений.

Опыт. 4. Влияние эстрадиола на гаметогенез кижуча в период дифферен-цировки пола и формирования у самок старшей генерации ооцитов. Воздействуя эстрадио-лом на личинок кижуча, предполагали, с одной стороны, предотвратить дифференцировку гонад в направлении семенников или вызвать последующую инверсию пола у генотипических самцов, а с другой — повлиять на процессы формирования фонда половых клеток в яичниках еще до начала дифференцировки пола. В момент начала эксперимента в возрасте 58 сут от вылупления у всех личинок гонады находились в индифферентном состоянии, а половые клетки были представлены исключительно гониями. В ходе эксперимента личинки получали спиртовой раствор эстрадиола-17^ из расчета 100 мкг/г корма в течение 42 сут. В момент окончания воздействия в яичниках всех самок основную часть фонда половых клеток составляли ооциты периода превителлогенеза. Однако у подопытных самок как масса гонад (10,2 ± 0,2 мг против 14,0 ± 0,7 мг), так и число ооцитов (21,9 ± 1,0 против 25,3 ± 1,7) были меньше, чем у самок в контроле. У самцов в контроле фонд половых клеток был представлен исключительно гониями. У подопытных самцов, как и в опытах с горбушей, наблюдали формирование в семенниках фонда ооцитов.

У самок кижуча СК присутствовали в составе теки и гранулезы превителлогенных ооцитов, а также в строме яичников, причем в отличие от горбуши СК присутствовали среди клеток как внутренней, так и внешней теки. Отличительной особенностью СК в составе внутренней теки являлось присутствие в их цитоплазме липидных включений, количество которых у разных особей сильно варьировало (рис. 4 А), а средний диаметр составил 1,04 ± 0,05 мкм. СК во внешней теке — это некрупные полигональные клетки с округлыми ядрами (рис. 4 Б), содержавшие большое количество некрупных округлых митохондрий и хорошо развитую агранулярную эндоплазматическую сеть (см. таблицу). Липидные включения в цитоплазме этих клеток отсутствовали, а на их апикальной стороне выявляли картины экзоцитоза. СК в составе гранулезы были функционально активны, о чем свидетельствуют обширная агранулярная сеть, развитый аппарат Гольджи и множество крупных митохондрий (рис. 4 В; см. таблицу). Многочисленные СК в строме яичника (до 7-11 на срез гонады) отличались полигональной формой с округлым или слаболопастным ядром. Они отличались наличием небольшого числа сравнительно мелких митохондрий, но в то же время хорошо развитой агранулярной сетью (см. таблицу).

У самцов кижуча обнаружено три типа СК, два из которых располагались в строме, а один в эпителии семенников. Одни СК, расположенные в строме семенников, имели вид некрупных полигональных клеток с округлыми или слаболопастными ядрами, в цитоплазме которых присутствовали крупные митохондрии с трубчатыми кристами и умеренно развитая агранулярная эндоплазматическая сеть. Эти клетки преимущественно располагались в основании мезорхия у крупного сосуда

Рис. 4. Стероидсекреторные клетки в составе внешней (А) и внутренней (Б) теки и грану-лезы (В) фолликула превителлогенного ооцита в яичнике контрольной самки кижуча:

А — в цитоплазме видны митохондрии с трубчато-везикулярными кристами (м) и канальцы агранулярного эндоплазматического ретикулума (АЭР). Ув. х10900. Б — в цитоплазме содержатся липидные включения (л). Ув. х7500; В — в цитоплазме видны крупные митохондрии (м). Ув. х12500.

(см. таблицу; рис. 5 А). Другие СК — и в этом главное отличие семенников кижуча от семенников всех остальных исследованных лососевых — содержали в цитоплазме большое количество липидов (рис. 5 Б). Это были многочисленные клетки — до 1012 на срез гонады. СК, расположенные в эпителии семенников (в среднем 2-3 клетки на срез гонады), отличались небольшим количеством крупных митохондрий и хорошо развитой агранулярной эндоплазматической сетью (см. таблицу).

После воздействия экзогенным эстрадиолом у самок, так же как в контроле, СК были обнаружены в составе теки и гранулезы фолликулов превителлогенных ооцитов и в строме яичников. Вместе с тем в теке мы обнаружили только один тип СК, активность которых была понижена, о чем свидетельствует достоверное (р<0,05) уменьшение размеров как самих клеток, так и митохондрий (см. таблицу). СК в составе гра-нулезы у подопытных рыб, напротив, достоверно (р < 0,05) увеличились в размерах, что может свидетельствовать о возрастании секреторной активности. Размеры СК, расположенных в строме гонад подопытных самок, их ядер и органоидов значимо не отличались от таковых у СК в контроле (см. таблицу). Отличительной особенностью этих клеток было принципиальное (по сравнению с контролем примерно на порядок) увеличение в их цитоплазме липидных включений (рис. 6 А).

У самцов, как и в опыте с молодью горбуши (опыт 3), наблюдали формирование в семенниках фонда ооцитов, при этом СК были обнаружены как в составе гранулезы фолликулов превителлогенных ооцитов, так и в строме гонад. СК в составе грануле-зы — это крупные вытянутые клетки, в цитоплазме которых содержались митохондрии с четко выраженными трубчато-везикулярными кристами и канальцы хорошо развитой агранулярной эндоплазматической сети (рис. 6 Б). Размеры данных клеток и их ядер были достоверно ^ < 0,05) больше, чем у СК в составе гранулезы фолликулов ооцитов в яичниках у контрольных самок (см. таблицу), что может свидетельствовать о значительно большей их функциональной активности в семенниках подопытных самцов. В строме семенников у рыб в опыте обнаружен только один вид СК из описанных в составе стромы гонад у контрольных самцов — полигональные клетки с большим количеством липидных включений в цитоплазме. Состояние этих клеток у контрольных и подопытных рыб не различалось (см. таблицу).

Перед тем как обсудить полученные результаты, отметим, что только у молоди кижуча, не подвергнутой воздействию, мы обнаружили в стероидсекреторных клетках липидные включения. У молоди близкородственных кижучу горбуши, кеты и симы [1] липидные включения обнаружены не были. Не выявили мы их и в опытах на горбуше, представленных в настоящей работе. Можно было предположить, что эта особенность связана с тем, что молодь данного вида была выращена в лабораторных условиях. Однако у молоди горбуши, выращенной как в лабораторных, так и в естественных условиях, липидных включений мы не обнаружили. По всей видимости наличие липидов в СК молоди кижуча характерно именно для данного вида.

После воздействия эстрадиолом в яичниках подопытных самок снизилась активность СК в составе теки. Одновременно в цитоплазме СК, локализованных в строме яичников, появилось большое количество липидных включений, которые у контрольных рыб отсутствовали. При сравнении количественных характеристик видно, что эти клетки не отличаются от СК, содержащих липидные включения в строме семенников контрольных самцов. Необходимо отметить также некоторое повышение активности СК в гранулезе ооцитов в яичниках подопытных самок. Интересно, что при стимуляции

Рис. 5. Стероидсекреторные клетки в строме семенника контрольного самца кижуча:

А — группа СК I вида. В цитоплазме видны крупные митохондрии с трубчато-везикулярными кристами (м); я — ядро СК. Ув. х10000. Б — СК II вида. В цитоплазме содержится большое количество липидных включений (л) и единичные мелкие митохондрии (м). Ув. х12000. Все условные обозначения как на предыдущих рисунках.

Рис. 6. Стероидсекреторные клетки в составе стромы (А) яичника подопытной самки и гранулезы (Б) фолликула превителлогенного ооцита в гонаде подопытного самца кижуча после индуцированной инверсии пола:

А — в цитоплазме содержится большое количество липидных включений; кг — клетка гранулезы; оц — участок цитоплазмы ооцита. Ув. х4500. Б — видны крупные митохондрии с трубчато-везикулярными кристами. Ув. х22 500. Все условные обозначения как на предыдущих рисунках.

оогенеза эстрадиолом у самок горбуши (опыт 2) происходило хотя и не достоверное снижение активности СК гранулезы.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

В семенниках подопытных самцов с появлением превителлогенных ооцитов активные СК обнаруживали в составе гранулезы, а из стромальных СК остались только СК с липидными включениями. Клетки второго типа, выявленные у контрольных рыб, с крупными митохондриями и хорошо развитой агранулярной эндоплазматической сетью в строме гонад подопытных самцов отсутствовали. Такая же локализация активных СК в составе гранулезы превителлогенных ооцитов в гонадах подопытных самцов ранее была отмечена и у горбуши (опыт 2).

Таким образом, при воздействии эстрадиолом у самок кижуча происходило подавление оогенеза, которое сопровождалось снижением стероидогенной активности в теке фолликулов превителлогенных ооцитов и ее повышением в строме. В семенниках же подопытных самцов наблюдалась инициация оогенеза. При этом активные СК обнаруживали в составе фолликулярной оболочки превителлогенных ооцитов, а число и активность СК в строме семенников достоверно снижались.

Обсуждение результатов исследования

Перед тем как рассмотреть особенности реакции стероидсекреторных клеток на гормональное воздействие, кратко подытожим полученные данные, отдельно рассмотрев состояние СК у самок и самцов.

В первом опыте воздействие тестостерона пропионата привело к уменьшению числа ооцитов и снижению темпа их роста у самок горбуши. При этом активность СК в составе теки фолликулов у подопытных рыб была ниже, а в строме яичников, наоборот, выше, чем у контрольных. Таким образом снижение темпа роста ооцитов сопровождалось смещением стероидогенной активности из их оболочек в строму яичников. Во втором и в третьем опытах экзогенный эстрадиол к моменту фиксации не оказал видимого влияния на оогенез самок горбуши. Активность СК, локализованных в фолликулярных оболочках, судя по их ультраструктурной организации, не изменилась, а в строме гонад повысилась. Об этом можно было судить по значительному увеличению либо числа СК (опыт 2), либо размеров как самих клеток, так и органоидов (опыт 3). В четвертом опыте, проведенном на молоди кижуча, экзогенный эстрадиол способствовал уменьшению числа ооцитов и снижению темпа их роста. При этом активность СК в составе оболочек ооцитов у подопытных рыб существенно понизилась. Наиболее заметным было снижение активности СК, локализованных в теке фолликулов; у некоторых особей эти клетки здесь вообще не выявлялись. В отличие от этого активность СК в строме яичников у самок во всех опытах значительно возросла.

Таким образом, по итогам проведенной работы мы можем сделать два принципиальных вывода.

1. Поскольку у всех подопытных самок активизировались СК, локализованные в строме яичников, то изменение стероидогенной активности при гормональном воздействии осуществляется в направлении противоположном ее изменению при естественном развитии гонад (из стромы в фолликулярные оболочки).

2. Во всех опытах независимо от применяемого гормона, срока и способа воздействия, если гормональное воздействие приводило к сокращению числа ооцитов и снижению темпа их роста, наблюдали понижение уровня стероидогенной активности,

поскольку повышение активности СК в строме гонад сопровождалось понижением их активности в фолликулярных оболочках. Если состояние фонда ооцитов у контрольных и подопытных рыб было сходным, понижения уровня стероидогенной активности при гормональном воздействии не происходило. В этом случае при повышении активности СК в строме гонад, активность СК, локализованных в теке и гранулезе, фактически не изменялась.

Данные о локализации и активности СК в яичниках молоди исследованных видов рыб при естественном развитии гонад и гормональном воздействии позволяют составить представление об их возможной роли в регуляции некоторых процессов раннего гонадогенеза. Эстрогенизация приводит к стимуляции СК в строме и подавлению СК в фолликулярных оболочках. Это может быть опосредовано гипоталамо-гипофи-зарной нейросекреторной системой через стимуляцию синтеза андрогенов стероид-секреторными клетками, расположенными в строме, которые в свою очередь тормозят дифференцировку ооцитов и СК в фолликулярных оболочках. Это предположение подтверждают результаты комплексных исследований гонад, секреторных клеток и содержания половых стероидных гормонов в крови осетровых. Так, при сравнении состояния СК в яичниках самок молоди стерляди с разной концентрацией половых гормонов в плазме крови оказалось, что чем выше была концентрация тестостерона, тем меньшее число СК обнаруживалось в составе теки фолликулов превителлогенных ооцитов, а у самки стерляди с самым большим содержанием тестостерона в плазме крови (22,5 нг/мл) СК были расположены только в строме яичника [17].

Инъекция тестостерона пропионата в первом опыте не оказала влияния на ход развития гонад у генотипических самцов горбуши. Однако СК у подопытных рыб можно было видеть не в эпителии, как у контрольных, а преимущественно в строме семенников, что наблюдается в гонадах с более продвинутой стероидсекреторной функцией. Во втором опыте инъекция эстрадиола дипропионата предотвратила естественную инверсию пола у самцов горбуши и стимулировала развитие ооцитов. При этом активные СК у подопытных рыб присутствовали преимущественно в гранулезе ооцитов, тогда как активность СК в строме гонад была значительно ниже.

В третьем опыте на горбуше и четвертом опыте на кижуче экзогенный эстрадиол стимулировал у самцов феминизацию половых желез и индуцировал формирование фонда ооцитов. В ходе этого процесса первоначально значительно повышалась активность СК в строме гонад, а с появлением превителлогенных ооцитов — и в их грану-лезе.

По совокупности всех полученных данных мы видим, что в ходе индуцированного экзогенным эстрадиолом появления ооцитов периода ранней профазы мейоза возрастала активность СК, локализованных в строме гонад. С появлением превителлогенных ооцитов активные СК располагались уже в составе гранулезы. При этом активность СК в строме достоверно снижалась. Таким образом, развитие стероидогенной системы в инвертированных гонадах подопытных самцов происходило так же, как в яичниках у интактных самок.

Литература

1. Мосягина М. В., Зеленников О. В. Стероидсекреторные клетки в гонадах у молоди тихоокеанских лососей перед выпуском с рыбоводных заводов // Вопросы ихтиологии. 2006. Т. 46, № 2. С. 272-277.

2. Федоров К. Е., Зубова С. Э., Семенов В. В., Бурлаков А. Б. Стероидсекреторные клетки в гонадах молоди стерляди Acipenser ruthenus L. в период дифференцировки пола // Вопр. ихтиол. 1990. Т. 30, вып. 1. С. 65-75.

3. Devlin R. H., Nagahama Y. Sex determination and sex differentiation in fish: an overview of genetic, physiological, and environmental influences // Aguaculture. 2002. Vol. 208. P. 191-364.

4. Nakamura M., Kobayashi T., ChangX.-T., Nagahama Y. Gonadal sex differentiation in teleost fish // J. Exp. Biol. 1998. Vol. 281. P. 362-372.

5. Van den Hurk R., Lambert J. G. D., Peute J. Steroidogenesis in the gonads of rainbow trout fry (Salmo gairdneri) before and after the onset of gonadal sex differentiation // Reprod. Nutr. Develop. 1982. Vol. 22, N 2. P. 413-425.

6. Миронов А. А., КомиссарчикЯ. Ю., Миронов В. А. Методы электронной микроскопии в биологии и медицине. СПб: Наука, 1994. 400 с.

7. Lofts B., Bern H. B. The functional morphology of steroidogenic tissue // Steroids in nonmam-malian vertebrates / ed. by D. R. Idler. New York: Academic Press, 1972. P. 37-125.

8. Васильева Е. В. Влияние гипофизэктомии, гормональных и солевых воздействий на функцию интерреналовой железы осетровых: автореф. дис. ... канд. биол. наук. Л.: ЛГУ, 1983. 18 с.

9. Киселева Е. В., Шилов А. Г., Христолюбова Н. Б. Методы оценки основных стереологиче-ских параметров // Применение стереологических методов в цитологии / под ред. А. Д. Груздева. Новосибирск, 1974. С. 33-54.

10. Weibel E. R. Stereological principles for morphometry in electron microscopic cytology // Internat. Rev. Cytol. 1969. Vol. 26. P. 235-302.

11. Федоров К. Е., Зеленников О. В. Дифференцировка пола у горбуши Oncorhynchus gorbuscha Walbaum. Роль онтогенетических факторов и влияние экзогенного тестостерона // Вестн. С.-Петерб. ун-та. Сер. 3. 2009. Вып. 3. С. 111-121.

12. Мосягина М. В., Кузнецова И. В., Зеленников О. В., Гарлов П. Е. Морфофункциональный анализ состояния стероидсекреторных клеток гонад молоди горбуши (Oncorhynhus gorbuscha (Walbaum)) в норме и при воздействии эстрадиолом // Цитология. 2003. Т. 45, № 5. С. 450-455.

13. Арбузова Л.Л. Морфофункциональная характеристика клеток Лейдига семенников горбуши Oncorhynchus gorbuscha в период нерестовой миграции // Морфология. 1995. Т. 108, № 3. С. 72-75.

14. Федоров К. Е., Сабанова Е. В., Лунев Г. Е., Зеленников О. В. Гистофизиологический и экспериментальный анализ онтогенетических и гормональных механизмов дифференцировки пола у протогиниста горбуши // Тез. симп. «Экологические и функциональные основы адаптации гидробионтов». 2000 г. С. 36-37.

15. Zelennikov O. V., Fedorov K. E., Lunev G. E. Effect of sex steroid hormones on gametogenesis of pink salmon in the period of sex differentiation // Tez. 21st conference of European comparative endo-crinologist. 2002. P. 202.

16. Лунев Г. Е., Федоров К. Е., Зеленников О. В. Влияние экзогенного эстрадиола на развитие гонад горбуши Oncorhynchus gorbuscha Walbaum: обработка молоди после дифференцировки пола // Вестн. С.-Петерб. ун-та. 2007. Сер. 3. 2007. Вып. 3. С. 11-22.

17. Мосягина М. В. Развитие стероидсекреторных клеток в гонадах круглоротых и рыб в раннем онтогенезе: дис. канд. ... биол. наук. Санкт-Петербург, 2006. 227 с.

Статья поступила в редакцию 7 июня 2010 г.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.