Научная статья на тему 'Экспериментальные исследования лазерного метода обнаружения стрессовых состояний растений'

Экспериментальные исследования лазерного метода обнаружения стрессовых состояний растений Текст научной статьи по специальности «Физика»

CC BY
291
22
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
ЛАЗЕРНЫЙ МЕТОД / ЛАЗЕРНО-ИНДУЦИРОВАННАЯ ФЛУОРЕСЦЕНЦИЯ / КОНТРОЛЬ СОСТОЯНИЯ РАСТЕНИЙ

Аннотация научной статьи по физике, автор научной работы — Федотов Ю. В., Булло О. А., Белов М. Л., Городничев В. А.

Разработан лазерный флуоресцентный метод обнаружения стрессовых состояний растений. Для волны возбуждения флуоресценции длиной 532 нм приведены результаты экспериментальных исследований спектров лазерно-индуцированной флуоресценции растений в нормальном и разных стрессовых состояниях, вызванных наличием в почве загрязнителей (соли, железного и медного купороса), недостаточным или избыточным поливом растений, механическими повреждениями листьев и корневой системы. Выполнен сравнительный анализ вариантов выбора спектральных диапазонов регистрации лазерно-индуцированного флуоресцентного излучения растений. Показано, что для задачи контроля состояний растений наиболее эффективными (с точки зрения надежности правильного обнаружения стрессовых состояний) диапазонами регистрации флуоресцентного излучения являются спектральные диапазоны с центральными длинами волн 685 и 740 нм.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по физике , автор научной работы — Федотов Ю. В., Булло О. А., Белов М. Л., Городничев В. А.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Experimental Research into Laser Method for Detecting Plant Stress

The purpose of the work was to develop a laser fluorescence method for detecting plant stress. For the fluorescence excitation wave of 532 nm. length, we give the results of experimental studies of the spectra of laser-induced plant fluorescence in normal and various stress conditions caused by the presence of various pollutants in the soil (salt, iron and copper sulfate), insufficient or excessive watering, mechanical damage to the leaves and the plant root system. We carried out a comparative analysis of options for selecting the spectral ranges of registering laser-induced fluorescence plant emission. Findings of the research show that for the plant state monitoring tasks, spectral bands with central wavelengths of 685 and 740 nm are the most efficient (in terms of reliability of correct detection of stress state) bands of fluorescence radiation detection.

Текст научной работы на тему «Экспериментальные исследования лазерного метода обнаружения стрессовых состояний растений»

УДК 504.064.36 001: 10.18698/0236-3933-2017-2-21-32

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ ЛАЗЕРНОГО МЕТОДА ОБНАРУЖЕНИЯ СТРЕССОВЫХ СОСТОЯНИЙ РАСТЕНИЙ

Ю.В. Федотов fed@bmstu.ru

О.А. Булло ekomonit@bmstu.ru

М.Л. Белов belov@bmstu.ru

В.А. Городничев gorod@bmstu.ru

МГТУ им. Н.Э. Баумана, Москва, Российская Федерация

Аннотация

Разработан лазерный флуоресцентный метод обнаружения стрессовых состояний растений. Для волны возбуждения флуоресценции длиной 532 нм приведены результаты экспериментальных исследований спектров лазерно-индуцированной флуоресценции растений в нормальном и разных стрессовых состояниях, вызванных наличием в почве загрязнителей (соли, железного и медного купороса), недостаточным или избыточным поливом растений, механическими повреждениями листьев и корневой системы. Выполнен сравнительный анализ вариантов выбора спектральных диапазонов регистрации лазерно-индуцированного флуоресцентного излучения растений. Показано, что для задачи контроля состояний растений наиболее эффективными (с точки зрения надежности правильного обнаружения стрессовых состояний) диапазонами регистрации флуоресцентного излучения являются спектральные диапазоны с центральными длинами волн 685 и 740 нм

Ключевые слова

Лазерный метод, лазерно-индуци-рованная флуоресценция, контроль состояния растений

Поступила в редакцию 02.06.2016 © МГТУ им. Н.Э. Баумана, 2017

Работа выполнена при поддержке Министерства образования и науки Российской Федерации (проект 1965/14)

Введение. В настоящее время лазерные методы широко используются в различных областях науки и техники. Перспективным направлением использования лазерных методов является дистанционный контроль состояния растений, основанный на регистрации лазерно-индуцированной флуоресценции [1-14].

Недостаточное или избыточное количество воды в почве, недостаток питательных веществ, болезни растений, наличие загрязнителей в почве и другие факторы приводят к невозможности нормального роста растений (стрессовым ситуациям). На ранних стадиях такие стрессовые состояния сложно обнаружить по внешнему виду растений. Поэтому важным является разработка методов и приборов обнаружения стрессовых состояний растений, как индикаторов неблагоприятных внешних факторов.

Физической основой лазерных флуоресцентных методов контроля состояния растений является изменение спектра лазерно-индуцированной флуоресценции растений в стрессовом состоянии (по сравнению со спектром растения в нормальном состоянии).

Основной составляющей флуоресцентного излучения живого листа растения в нормальном состоянии является флуоресценция хлорофилла [15]. Для растения в стрессовом состоянии процесс фотосинтеза нарушается и спектр ла-зерно-индуцированной флуоресценции изменяется. Однако окончательной ясной картины происходящих процессов на сегодняшний день нет [16].

К настоящему времени накоплены экспериментальные данные по спектрам ла-зерно-индуцированной флуоресценции различных растений в нормальном и стрессовом состоянии при длинах волн возбуждения флуоресценции от 266 до 635 нм.

Лазерный анализатор, предназначенный для контроля состояния растений, облучает растительность на длине волны возбуждения флуоресценции и регистрирует характеристики лазерно-индуцированного флуоресцентного излучения.

Перспективным вариантом лазерного анализатора, предназначенного для дистанционных измерений (например, с беспилотного летательного аппарата), является лазерный флуориметр, принимающий флуоресцентное излучение в двух узких спектральных диапазонах и проводящий тематическую обработку данных измерений для построения карт состояния растительности вдоль трассы полета носителя (в настоящее время реальными для лазерного флуориметра являются высоты полета порядка 100 м).

Анализ публикаций показывает, что в большинстве работ рекомендуют проводить измерение в узких спектральных диапазонах около двух центральных длин волн 680.. .690 нм и 730.. .740 нм, а в качестве информативного признака для обнаружения стрессовых состояний растений использовать отношение интен-сивностей в этих двух спектральных диапазонах.

Несмотря на то, что число публикаций, посвященных экспериментальным исследованиям спектров флуоресценции растительности и задаче обнаружения стрессовых состояний растений, достаточно велико, остаются неясными некоторые важные вопросы, одним из которых является вопрос о выборе наиболее эффективной (для задачи обнаружения стрессовых состояний растений) пары спектральных диапазонов для регистрации флуоресцентного излучения растений.

Работа посвящена экспериментальным исследованиям спектров лазерно-индуцированной флуоресценции растений в нормальном и стрессовом состояниях и определению на основе данных измерений наиболее эффективной пары спектральных диапазонов регистрации флуоресценции для задачи обнаружения стрессовых состояний растений. В экспериментах использовалась длина волны возбуждения лазерно-индуцированной флуоресценции 532 нм (из-за большой эффективности возбуждения флуоресценции на этой длине волны).

Такие исследования представляют практический интерес для разработчиков лазерной аппаратуры контроля состояния растений по результатам дистанционного измерения флуоресценции растений.

Лабораторная установка для проведения экспериментов. Для измерения спектров лазерно-индуцированной флуоресценции растений в нормальном и стрессовом состояниях была создана лабораторная установка, функциональная схема которой показана на рис. 1.

Пи]

мпульсныи лазер

Блок управления лазером

I

УАСг:Ш лазер

Генератор второй гармоники

Оптическая система

Подсистема регистрации излучения флуоресценции

U

Блок усилителя яркости

U £

о

&

Блок питания и генератор строба

ПЗС-детектор Турель светофильтров Адаптер оптического волокна

.....<к 1...........................................

Входная щель Полихроматор

Блок дифракционных решеток

09

т

ПЭВМ со специальным ПО

ияв

о

"1

г cd

о Я

11 и

V н

U

н N

д и

о

Оптическое волокно !

Электрические связи Оптические связи

Рис. 1. Функциональная схема лабораторной установки

В качестве лазера для возбуждения флуоресценции был использован YAG:Nd лазер Екзрк ЫЬ204 с длиной волны 1064 нм с диодной накачкой и удвоением частоты.

Лазерно-индуцированное излучение флуоресценции собирается приемной оптической системой и вводится в оптическое волокно.

Система регистрации флуоресцентного излучения построена на основе поли-хроматора и высокочувствительного матричного детектора с усилителем яркости.

Полихроматор полностью автоматизирован: смена решеток, оптических фильтров, выбор ширины входной щели осуществляется автоматически.

Спектр лазерно-индуцированной флуоресценции регистрируется высокочувствительной ПЗС-матрицей с усилителем яркости; ПЗС-детектор преобразует изображение в цифровой массив и передает этот массив на компьютер.

Для управления лабораторной установкой использовалось специально разработанное в среде визуального программирования ЬаЪУШ'Ш^ программное обеспечение.

Параметры лабораторной установки

Энергия импульса возбуждения флуоресценции, мДж

Длительность импульса лазера, нс.....................................

Длина волны возбуждения флуоресценции, нм.............

Частота повторения импульсов, Гц...................................

Разрешение по спектру, нм..................................................

Диаметр приемной оптической системы, мм .................

Расстояние от оптической системы до растений, м ......

до 500

2,1 <7 532

8 15 ~1

На установке были проведены измерения спектров флуоресценции растений в диапазоне 595...800 нм. Перед проведением экспериментов на лабораторной установке выполнялась калибровка оборудования (калибровка полихрома-тора по длине волны по стандартной методике на трех длинах волн 253,65 нм, 435,85 нм и 696,54 нм; калибровка системы регистрации по чувствительности в диапазоне от 250 до 750 нм по стандартной методике с использованием калиброванного источника света ЭН2000-СЛЬ).

Результаты экспериментов. Экспериментальные исследования спектров флуоресценции проводились для разных видов растений, которые находились как в нормальном, так и в разных стрессовых состояниях.

Во время измерений образцы растений ставились так, чтобы лазерное излучение попадало на листья образцов, которые находились приблизительно на одной высоте, и не попадало на грунт. Диаметр лазерного пятна на исследуемом образце растения составлял приблизительно 2,5 см.

На рис. 2 для примера приведены измеренные характерные спектры флуоресценции кресс-салата в нормальном (кривые 1, 2) и стрессовом (кривые 3, 4 после обрезания листьев) состояниях. Видно, что спектр флуоресценции растения имеет два максимума — в диапазонах 680.690 нм и 730.740 нм, однако соотношение этих максимумов зависит от состояния растения.

I, отн. ед.

0,2

0,4

0

600

650

700

750

800

Длина волны, нм

Рис. 2. Спектры флуоресценции кресс-салата в нормальном (1, 2) и стрессовом (3, 4) состояниях

В различных публикациях, посвященных лазерному флуоресцентному методу контроля состояния растений, регистрация флуоресцентного излучения проводится в узких спектральных диапазонах (около двух центральных длин волн: одна длина волны Х1 в диапазоне 680.690 нм, другая X 2 — в диапазоне 730.740 нм) и в качестве информативного признака для обнаружения стрессовых состояний растений используется отношение Я = I (ХО/1 (X 2) интенсивно-стей флуоресценции 1(Х), регистрируемых в следующих спектральных диапазонах: Я 680/740 = I (680)/1(740), Я685/740 = I (685)/1(740), ^80/730 = I (680)/1 (730), Я685/730 = I (685)/1(730), Я 690/740 = I (690)/1(740), ^90/735 = I (690)/1(735), ^85/735 = = I (685)/1(735) при ширине спектральных диапазонов (около центральных длин волн) от 5 до 20 нм.

Иногда используется регистрация флуоресцентного излучения и при большой ширине спектральных диапазонов:

712

I I(X) ¿X

г> _ бои_

R680-712/712-750 - 750-•

J I(X) dX

712

В работе при обработке результатов измерения использовались отношения R интенсивности флуоресценции на двух длинах волн: R680/740, R685/74o> R680/730, R685/730, R690/740> R690/735, R685/735 при ширине спектральной полосы регистрации 10 нм, а также R680-712/712-750.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Измерения проводились для различных растений и стрессов, вызванных разными причинами: внесением в почву загрязнителей, избыточным или недостаточным поливом растений, механическими повреждениями растений — смятием или обрезанием листьев, обрезанием корней растений.

На рис. 3-6 приведены примеры результатов обработки измеренных спектров флуоресценции.

На рис. 3 приведены примеры результатов обработки спектров флуоресценции для газонной травы (из газонной смеси Декор Aros) в нормальном и стрессовых состояниях, вызванных добавлением в почву NaCl (5 г на каждый образец, габаритные размеры горшка, в который высаживался один образец, 9x9x10 см) (см. рис. 3, а) и медного купороса CuSÜ4 (5 г, разбавленные в 200 мл воды на 3 образца) (см. рис. 3, б). Измерения проводились через 4 недели после внесения в почву загрязнителей.

Примеры результатов обработки спектров флуоресценции для кресс-салата в нормальном и стрессовых состояниях, вызванных обрезанием листьев и избыточным поливом растений в течение 24 дней, приведены на рис. 4, а, б. Измерения спектров флуоресценции при механических повреждениях проводились в интервале времени от 20 до 40 мин после механического повреждения. При избыточном поливе корни растения находились постоянно в переувлажненной почве.

R 0,8

0,4

1 2 3 4 5 6 7 /1 а

1 2 3 4 5 6 7 и б

Рис. 3. Отношения Я для газонной травы в нормальном состоянии (1) и стрессовом (2), вызванном добавлением в почву соли (а) и медного купороса (б)

На рис. 3, 4 показаны средние (по серии измерений для каждого растения и каждого вида стресса, размер серии измерений в среднем ~10, всего около 200 спектров) значения Я для стрессового (кривые 2) и для нормального (кривые 1) состояний. По горизонтальной оси отложен номер используемого отношения Я:

1 — Я680/740, 2 — Я685/740, 3 — Я680/730, 4 — Я685/730, 5 — Я690/740, 6 — Я690/735, 7 — Я685/735 , 8 — Я680-712/712-750.

R 0,8 0,4

1 2 3 4 5 6 7 и а

1234567« б

Рис. 4. Отношения Я для кресс-салата в нормальном (1) состоянии и стрессовом (2), вызванном обрезанием листьев (а) и избыточным поливом в течение 24 дней (б)

Из рис. 3, 4 следует, что для приведенных примеров значения Я при стрессовом состоянии растений всегда больше значений Я при нормальном состоянии растений. Однако анализ экспериментальных данных показывает, что не все равно какие спектральные диапазоны регистрации флуоресцентного излучения использовать при обработке.

За критерий эффективности выбора пары спектральных диапазонов (для регистрации флуоресцентного излучения в задаче обнаружения стрессовых состояний растений) естественно взять разность значений Я для стрессового и нормального состояний одного и того же растения (надежность правильного обнаружения стрессовых состояний в условиях шумов и ошибок измерения будет тем выше, чем выше эта разность).

На рис. 5 приведены суммарные результаты обработки 12 серий измерений для разности АЯ величин Я для стрессового и нормального состояний одного и того же растения. Семь серий измерений для кресс-салата при стрессовых состояниях, вызванных, соответственно, примятием, обрезанием листьев, повреждением корневой системы растения, избыточным поливом растений в течение 11, 17 и 24 дней,

отсутствием полива в течение 11 дней. Пять серий измерений для газонной травы при стрессовых состояниях, вызванных добавлением в почву разных загрязнителей — медного Си804 и железного Бе804 купороса, соли ЫаС1. Для Си804 измерения проводились через 4 недели после внесения в почву, для Бе804 и ЫаС1 измерения проводились через 2 и 4 недели после внесения в почву.

а Ъ с abc abc abc abc abc abc abc n 1 2 3 4 5 6 7 8

Рис. 5. Значения AR для стрессового и нормального состояний растений

На рис. 5 горизонтальная ось соответствует горизонтальным осям на рис. 3, 4, а по вертикальной оси отложена величина AR — максимальное, среднее и минимальное (по всем 12 сериям измерений) значения разности R для стрессового и нормального состояний растений для каждого из вариантов выбора спектральных диапазонов регистрации флуоресцентного излучения.

Из рис. 5 следует, что как максимальное, так и среднее значения AR являются наибольшими для отношения R685/740, а минимальное значение AR для отношения R685/74o является одним из наибольших. При этом максимальное значение AR685/740 может на 50 % превышать AR для других вариантов, а среднее значение AR685/740 — почти в 2 раза.

Выводы. Для длины волны возбуждения флуоресценции 532 нм выполнены экспериментальные исследования спектров лазерно-индуцированной флуоресценции растений в нормальном и различных стрессовых состояниях, вызванных наличием в почве загрязнителей, недостаточным или избыточным поливом растений, а также механическими повреждениями растений разного типа. Сравнительный анализ различных вариантов выбора спектральных диапазонов регистрации лазерно-индуцированного флуоресцентного излучения растений показывает, что для задачи контроля состояния растений наиболее эффективными (с точки зрения надежности правильного обнаружения стрессовых состояний) диапазонами регистрации флуоресцентного излучения являются спектральные диапазоны с центральными длинами волн 685 и 740 нм.

ЛИТЕРАТУРА

1. Panneton B., Guillaume S., Roger J.M., Samson G. Discrimination of corn from monocotyle-donous weeds with ultraviolet (UV) induced fluorescence // Applied Spectroscopy. 2011. Vol. 65. No 1. Р. 10-19. DOI: 10.1366/10-06100 URL: http://journals.sagepub.com/doi/abs/10.1366/10-06100

2. Water deficit and salt stress diagnosis through LED induced chlorophyll fluorescence analysis in Jatropha curcas L. oil plants for biodisiel / A.S. Gouveia-Neto, E.A. da Silva, R.A. Oliveira, P.C. Cunha, E.B. Costa, T.J.R. Cámara, L.G. Willadino // Proc. of SPIE. 2011. Vol. 7902. Р. 79020А-1-79020А-10. DOI: 10.1117/12.872991

URL: http://proceedings.spiedigitallibrary.org/ proceeding.aspx?articleid=718967

3. Лабораторные и лидарные измерения спектральных характеристик листьев березы в различные периоды вегетации / А.В. Афонасенко, А.И. Иглакова, Г.Г. Матвиенко, В.К. Ошлаков, В.Е. Прокопьев // Оптика атмосферы и океана. 2012. Т. 25. № 3. С. 237-243.

4. Федотов Ю.В., Булло О.А., Белов М.Л., Городничев В.А. Устойчивость результатов лазерного флуоресцентного метода контроля состояния растений // Оптика атмосферы и океана. 2016. Т. 29. № 1. С. 80-84.

5. Panneton B., Guillaume S., Roger J.M., Samson G. Improved discrimination between monocoty-ledonous and dicotyledonous plants for weed control based on the blue-green region of Ultraviolet-induced fluorescence spectra // Applied Spectroscopy. 2010. Vol. 64. No. 1. Р. 30-36.

DOI: 10.1366/000370210790572106

URL: http://journals.sagepub.com/doi/abs/10.1366/000370210790572106

6. Zhi-qiang C, Wen-li C. Effects of NaCl on photosynthesis in Arabidopsis and Thellungiella leaves based on the fluorescence spectra, the fast chlorophyll fluorescence induction dynamics analysis and the delayed fluorescence technique // Proc. of SPIE. 2010. Vol. 7568. Р. 756822-1-756822-8. DOI: 10.1117/12.841257

URL: http://proceedings.spiedigitallibrary.org/proceeding.aspx?articleid=780701

7. Plant abiotic stress diagnostic by laser induced chlorophyll fluorescence spectral analysis of in vivo leaf tissue of biofuel species / A.S. Gouveia-Neto, E.A. da Silva, L.M.H. Silva, E.B. da Costa, T.J.R. Cámara, L.G. Willadino // Proc. of SPIE. 2010. Vol. 7568. Р. 75680G-1-75680G-8.

DOI: 10.1117/12.839462

URL: http://proceedings.spiedigitallibrary.org/proceeding.aspx?articleid=780574

8. Grishaev M.V., Sal'nikova N.S. A Setup for remote recording of the spectrum of laser-induced fluorescence from crowns of woody plants // Instruments and Experimental Techniques. 2010. Vol. 53. №. 5. P. 746-749. DOI: 10.1134/S0020441210050246

URL: http://link.springer.com/article/10.1134/S0020441210050246

9. Laser-induced fluorescence characteristics of vegetation by a new excitation wavelength / J. Yanga, W. Gonga, S. Shia, L. Dua, J. Suna, S. Songe // Spectroscopy Letters. 2016. Vol. 49. №. 4. P. 263-267. DOI: 10.1080/00387010.2016.1138311

URL: http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1080/00387010.2016.1138311

10. Hedimbi M., Singh S., Kent A. Laser induced fluorescence study on the growth of maize plants // Natural Science. 2012. Vol. 4. №. 6. P. 395-401. DOI: 10.4236/ns.2012.46054

URL: http://www.scirp.org/journal/PaperInformation.aspx?PaperID=19977

11. Saito K. Plant and vegetation monitoring using laser-induced fluorescence spectroscopy // Industrial Applications of Laser Remote Sensing. 2012. P. 99-114.

12. Pandey J.K., Gopal R. Laser-induced chlorophyll fluorescence and reflectance spectroscopy of cadmium treated Triticum aestivum L. plants // Spectroscopy. 2011. Vol. 26. №. 2. P. 129-139. DOI: 10.3233/SPE-2011-0530

URL: https://www.hindawi.com/journals/jspec/2011/640232/abs

13. Gopal R., Pandey J.K. Laser-induced chlorophyll fluorescence spectra of Cajanus cajan L. plant growing under cadmium stress // Proc. International Symposium on Molecular Spectroscopy. June 21-25, 2010, Ohio State University, Columbus, OH., USA.

14. Pandey J.K., Gopal R. Laser-induced chlorophyll fluorescence: a technique for detection of dimethoate effect on chlorophyll content and photosynthetic activity of wheat plant // Journal of Fluorescence. 2011. Vol. 21. No. 2. P. 785-791. DOI: 10.1007/s10895-010-0771-5

URL: http://link.springer.com/article/10.1007%2Fs10895-010-0771-5

15. Лысенков В.С., Вардуни Т.В., Сойер В.Г., Краснов В.П. Флуоресценция хлорофилла растений как показатель экологического стресса: теоретические основы применения метода // Фундаментальные исследования. Электрон. журн. 2013. № 4-1. С. 112-119. URL: http://fundamental-research.ru/ru/article/view?id=31109

16. Яковец О.Г. Фитофизиология стресса. Минск: БГУ, 2010. 103 с.

Федотов Юрий Викторович — канд. техн. наук, научный сотрудник НИИ радиоэлектроники и лазерной техники МГТУ им. Н.Э. Баумана (Российская Федерация, 105005, Москва, 2-я Бауманская ул., д. 5).

Булло Ольга Алексеевна — аспирантка кафедры «Лазерные и оптико-электронные системы» МГТУ им. Н.Э. Баумана (Российская Федерация, 105005, Москва, 2-я Бауманская ул., д. 5).

Белов Михаил Леонидович — д-р техн. наук, ведущий научный сотрудник НИИ радиоэлектроники и лазерной техники МГТУ им. Н.Э. Баумана (Российская Федерация, 105005, Москва, 2-я Бауманская ул., д. 5).

Городничев Виктор Александрович — д-р техн. наук, начальник отдела НИИ радиоэлектроники и лазерной техники МГТУ им. Н.Э. Баумана (Российская Федерация, 105005, Москва, 2-я Бауманская ул., д. 5).

Просьба ссылаться на эту статью следующим образом:

Федотов Ю.В., Булло О.А., Белов М.Л., Городничев В.А. Экспериментальные исследования лазерного метода обнаружения стрессовых состояний растений // Вестник МГТУ им. Н.Э. Баумана. Сер. Приборостроение. 2017. № 2. C. 21-32. DOI: 10.18698/0236-3933-2017-2-21-32

EXPERIMENTAL RESEARCH INTO LASER METHOD FOR DETECTING PLANT STRESS

Yu.V. Fedotov fed@bmstu.ru

O.A. Bullo ekomonit@bmstu.ru

М.L. Belov belov@bmstu.ru

V^. Gorodnichev gorod@bmstu.ru

Bauman Moscow State Technical University, Moscow, Russian Federation

Abstract

The purpose of the work was to develop a laser fluorescence method for detecting plant stress. For the fluorescence excitation wave of 532 nm. length, we give the results of experimental studies of the spectra of laser-induced plant fluorescence in normal and various stress

Keywords

Laser method, laser-induced fluorescence, plant state control

conditions caused by the presence of various pollutants in the soil (salt, iron and copper sulfate), insufficient or excessive watering, mechanical damage to the leaves and the plant root system. We carried out a comparative analysis of options for selecting the spectral ranges of registering laser-induced fluorescence plant emission. Findings of the research show that for the plant state monitoring tasks, spectral bands with central wavelengths of 685 and 740 nm are the most efficient (in terms of reliability of correct detection of stress state) bands of fluorescence radiation detection

REFERENCES

[1] Panneton B., Guillaume S., Roger J.M., Samson G. Discrimination of corn from monocoty-ledonous weeds with ultraviolet (UV) induced fluorescence. Applied Spectroscopy, 2011, vol. 65, no. 1, pp. 10-19. DOI: 10.1366/10-06100

Available at: http://journals.sagepub.com/doi/abs/10.1366/10-06100

[2] Gouveia-Neto A.S., Silva Jr. E.A., Oliveira R.A., Cunha P.C., Costa E.B., Cámara T.J.R., Willadino L.G. Water deficit and salt stress diagnosis through LED induced chlorophyll fluorescence analysis in Jatropha curcas L. oil plants for biodisiel. Proc. of SPIE. 2011, vol. 7902, pp. 79020A-1-79020A-10. DOI: 10.1117/12.872991

Available at: http://proceedings.spiedigitallibrary.org/proceeding.aspx?articleid= 718967

[3] Afonasenko A.V., Iglakova A.I., Matvienko G.G., Oshlakov V.K., Prokop'yev V.E. Laboratory and lidar measurements of birch leaves spectral characteristics in different periods of vegetation. Optika atmosfery i okeana, 2012, vol. 25, no. 3, pp. 237-243 (in Russ.).

[4] Fedotov Yu.V., Bullo O.A., Belov M.L., Gorodnichev V.A. Stability of results of plant state detection by laser fluorescence method. Optika atmosfery i okeana, 2016, vol. 29, no. 1, pp. 80-84 (in Russ.).

[5] Panneton B., Guillaume S., Roger J.M., Samson G. Improved discrimination between monocotyledonous and dicotyledonous plants for weed control based on the blue-green region of ultraviolet-induced fluorescence spectra. Applied Spectroscopy, 2010, vol. 64, no. 1, pp. 30-36. DOI: 10.1366/000370210790572106

Available at: http://journals.sagepub.com/doi/abs/10.1366/000370210790572106

[6] Zhi-qiang C., Wen-li C. Effects of NaCl on photosynthesis in Arabidopsis and Thellungiel-la leaves based on the fluorescence spectra, the fast chlorophyll fluorescence induction dynamics analysis and the delayed fluorescence technique. Proc. of SPIE. 2010, vol. 7568, pp. 756822-1-756822-8. DOI: 10.1117/12.841257

Available at: http://proceedings.spiedigitallibrary.org/proceeding.aspx?Articleid =780701

[7] Gouveia-Neto A.S., Silva Jr. E.A., Costa Jr. E.B., Silva L.M.H., Cámara T.J.R., Willadino L.G. Plant abiotic stress diagnostic by laser induced chlorophyll fluorescence spectral analysis of in vivo leaf tissue of biofuel species. Proc. of SPIE. 2010, vol. 7568, pp. 75680G-1-75680G-8.

DOI: 10.1117/12.839462

Available at: http://proceedings.spiedigitallibrary.org/proceeding.aspx?articleid =780574

[8] Grishaev M.V., Sal'nikova N.S. A Setup for remote recording of the spectrum of laser-induced fluorescence from crowns of woody plants. Instruments and Experimental Techniques, 2010, vol. 53, no. 5, pp. 746-749. DOI: 10.1134/S0020441210050246

Available at: http://link.springer.com/article/ 10.1134/S0020441210050246

[9] Laser-induced fluorescence characteristics of vegetation by a new excitation wavelength / J. Yanga, W. Gonga, S. Shia, L. Dua, J. Suna, S. Songe. Spectroscopy Letters, 2016, vol. 49, no. 4, pp. 263-267. DOI: 10.1080/00387010.2016.1138311

Available at: http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1080/00387010.2016. 1138311

[10] Hedimbi M., Singh S., Kent A. Laser induced fluorescence study on the growth of maize plants. Natural Science, 2012, vol. 4, no. 6, pp. 395-401. DOI: 10.4236/ns.2012.46054 Available at: http://www.scirp.org/journal/PaperInformation.aspx?PaperID=19977

[11] Saito K. Plant and vegetation monitoring using laser-induced fluorescence spectroscopy. In: Industrial Applications of Laser Remote Sensing. 2012, pp. 99-114.

[12] Pandey J.K., Gopal R. Laser-induced chlorophyll fluorescence and reflectance spectroscopy of cadmium treated Triticum aestivum L. plants. Spectroscopy, 2011, vol. 26, no. 2, pp. 129-139. DOI: 10.3233/SPE-2011-0530

Available at: https://www.hindawi.com/journals/jspec/2011/640232/abs

[13] Gopal R., Pandey J.K. Laser-induced chlorophyll fluorescence spectra of Cajanus cajan L. plant growing under cadmium stress. Proc. Int. Symposium on Molecular Spectroscopy. June 21-25, 2010, Ohio State University, Columbus, OH., USA.

[14] Pandey J.K., Gopal R. Laser-induced chlorophyll fluorescence: a technique for detection of dimethoate effect on chlorophyll content and photosynthetic activity of wheat plant. Journal of Fluorescence, 2011, vol. 21, no. 2, pp. 785-791. DOI: 10.1007/s10895-010-0771-5 Available at: http://link.springer.com/article/ 10.1007%2Fs10895-010-0771-5

[15] Lysenkov V.S., Varduni T.V., Soyer V.G., Krasnov V.P. Plant chlorophyll fluorescence as an environmental stress characteristic: a theoretical basis of the method application. Funda-mental'nye issledovaniya [Fundamental research], 2013, no. 4-1, pp. 112-119 (in Russ.). Available at: http://fundamental-research.ru/en/article/view?id=31109

[16] Yakovets O.G. Fitofiziologiya stressa [Stress phytophysiology]. Minsk, BSU Publ., 2010. 103 p.

Fedotov Yu.V. — Cand. Sc. (Eng.), Research Scientist of Radioelectronics and Laser Technology Research Institute, Bauman Moscow State Technical University (2-ya Baumanskaya ul. 5, Moscow, 105005 Russian Federation).

Bullo O.A. — post-graduate of Laser and Optoelectronic Systems Department, Bauman Moscow State Technical University (2-ya Baumanskaya ul. 5, Moscow, 105005 Russian Federation).

Belov M.L. — Dr. Sc. (Eng.), Chief Research Scientist of Radioelectronics and Laser Technology Research Institute, Bauman Moscow State Technical University (2-ya Baumanskaya ul. 5, Moscow, 105005 Russian Federation).

Gorodnichev V.A. — Dr. Sc. (Eng.), Head of Department Radioelectronics and Laser Technology Research Institute, Bauman Moscow State Technical University (2-ya Baumanskaya ul. 5, Moscow, 105005 Russian Federation).

Please cite this article in English as:

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Fedotov Yu.V., Bullo O.A., Belov M.L., Gorodnichev V.A. Experimental Research into Laser Method for Detecting Plant Stress. Vestn. Mosk. Gos. Tekh. Univ. im. N.E. Baumana, Priborostr. [Herald of the Bauman Moscow State Tech. Univ., Instrum. Eng.], 2017, no. 2, pp. 21-32. DOI: 10.18698/0236-3933-2017-2-21-32

в.м. Ачильдиев, ю.к. грузевич, В.А. солдатенков

Информационные измерительные и оптико-электронные системы на основе микро-и наномеханических датчиков угловой скорости и линейного ускорения

В Издательстве МГТУ им. Н.Э. Баумана вышло в свет учебное пособие авторов

В.М. Ачильдиева, Ю.К. Грузевича, В.А. Солдатенкова

«Информационные измерительные и оптико-электронные системы на основе микро-и наномеханических датчиков угловой скорости и линейного ускорения»

Рассмотрены основные физические принципы работы и особенности функционирования гироскопов различных видов. Исследованы микромеханические гироскопы и акселерометры с рамочной и консольной конструкциями чувствительного элемента с емкостными и автоэлектронными преобразователями и наноэлектромеханические измерительные преобразователи для измерения тепловых полей малой интенсивности в инфракрасной и террагерцо-вой областях спектра. Предложены способы изготовления и локальной инициализации вискера по переменному току после формирования механической структуры чувствительного элемента. Описан синтез регуляторов методом модального управления и идентификации коэффициентов чувствительности к температуре и напряжению питания. Приведены примеры схем построения, моделирования и испытаний систем управления и навигации летательных микроаппаратов на основе бесплатформенных инерциаль-ных блоков, различных информационно-измерительных средств с использованием наклономеров, оптико-электронных устройств наблюдения с определением координат удаленных объектов и нашлемных систем ориентации.

По вопросам приобретения обращайтесь:

105005, Москва, 2-я Бауманская ул., д. 5, стр. 1

+7 (499) 263-60-45

press@bmstu.ru

www.baumanpress.ru

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.