CC BY
160
Расположение селезёнки в брюшной полости хищных животных изменчивое и зависит от наполненности желудка: при пустом желудке орган может располагаться в подвздошной области. У собаки и лисицы в среднюю часть селезёнки вклинивается дубликатура большого сальника, что приводит к её сужению. Селезёнка хорька незначительно выходит за область подреберья, верхушкой достигая доли печени, в сравнении с сусликом, у которого селезёнка выходит за область подреберья, располагаясь на петлях кишок, прикрепляясь ободочно-селезёночной связкой к ободочной кишке.
Ворота селезёнки животных расположены на висцеральной поверхности, у крупного рогатого скота на дорсальном конце органа, у остальных животных образуют длинную линию, проходя -щую по всей висцеральной поверхности ближе к дорсальному краю. У лошади и свиньи в области ворот формируется массивный гребень.
Литература
1. Вишневская Т.Я., Абрамова Л.Л. Гистологическая картина селезёнки кроликов при стрессе // Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения: матер. V Междунар. науч.-практич. конф. Ульяновск: ГСХА им. П.А. Столыпина. Ульяновск, 2013. Т. II. С. 22-24.
2. Вишневская Т.Я., Абрамова Л.Л. Морфофункциональные типы селезёнки разных видов млекопитающих // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2015. № 6 (56). С. 247-249.
3. Брыкова Т.С., Ягмуров О.Д. Строение и функции селезёнки // Морфология. 1993. Вып. 5-6. С. 142-160.
4. Молдавская А.А., Долин А.В. Морфологические критерии строения селезёнки в постнатальном онтогенезе // Успехи современного естествознания. 2009. № 2. С. 15-18.
5. Соколов В.Е. Систематика млекопитающих. В 3-х томах. М.: Высшая школа, 1979. 528 с.
6. Динец В.Л., Ротшильд Е.В. Звери. Энциклопедия природы России / 2-е изд., доп. и перераб. М.: ABF, 1998. 344 с.
7. Сидорович В.Е. Норки, выдра, ласка и другие куньи. Минск: Ураджай, 1995. 191 с.
8. Budras K.D. Bovine anatomy: an illustrated text. University of Berlin, Germany, 2004. 138 p.
9. Velanovich V., Shurafa M. Laparoscopic excision of accessory spleen // Am. J. Surg. 2000. Vol. 180. P. 62-64.
10. Reece W.O. Functional anatomy and physiology of domestic animals // Wiley-Blackwell, 2009. 592 p.
Эффективный метод лечения диареи молодняка крупного рогатого скота
ЗА Галиева, к.с.-х.н, З.З. Ильясова, к.б.н, И.Р. Газеев,
к.с.-х.н., С.Р. Зиянгирова, ст. преподаватель, ФГБОУ ВО Башкирский ГАУ
Увеличение производства высококачественной продукции животноводства является основной задачей отрасли [1—4]. Её решение требует использования здоровых, высокопродуктивных животных [5—10]. Известно, что желудочно-кишечные болезни молодняка крупного рогатого скота причиняют огромный экономический ущерб животноводству всех развитых стран. По статистическим данным, заболеваемость молодняка крупного рогатого скота первых месяцев жизни превышает 35% с летальностью до 20% и выше. Одним из путей увеличения производства животноводческой продукции и улучшения её качества является повышение сохранности молодняка за счёт уменьшения потерь от желудочного-кишечных болезней. Эта патология телят остаётся важной проблемой, наносит ущерб, который слагается из снижения прироста живой массы, потерь от падежа и затрат на лечебные мероприятия, увеличения расходов на проведение общих и специфических мероприятий, снижения генетического потенциала их продуктивности. Несмотря на достижения современной ветеринарной науки, заболевания телят желудочно-кишечными болезнями продолжают иметь широкое распространение.
В настоящее время одной из экономически значимых причин признана вирусная диарея телят, являющаяся энзоотичной в большинстве стран, в
том числе и в России. Количество экспериментальных работ, посвящённых изучению вирусной диареи телят, как самостоятельной болезни, так и в ассоциации с бактериальными инфекциями, в России ограничено. Работы большинства авторов посвящены изучению биологических процессов, развивающихся в организме коров, заражённых вирусной диареей крупного рогатого скота. Также мало данных о влиянии иммунодефицитного состояния больных вирусной диареей коров на развитие иммунного статуса, биохимических показателей крови и естественной резистентности кишечника телят, полученных от таких животных.
В России разработаны и применяются различные эффективные вакцинные препараты, но не всегда они обладают высокой эффективностью и не лишены недостатков. Анализ литературных данных показывает, что в настоящее время используются, создаются и внедряются разные средства для усиления действия вакцин и создания устойчивого иммунитета к вирусным и бактериальным инфекциям.
С целью изучения диареи у молодняка КРС и методов её лечения нами были проведены эксперименты по определению влияния Миксоферона в комплексе с Кепроцерилом на фоне вакцинации с применением Седемина и Элеовита, а также влияния сыворотки СПВИ-КРС, Биферона-Б, Кепроцерила и Бифидумбактерина на фоне вакцинации с применением Седемина и Элеовита на динамику гемоглобина и эритроцитов в крови, динамику нормофлоры кишечника с определе-
нием бифидобактерий и показатели сохранности и живой массы телят.
Материал и методы исследования. В опытах были использованы 15 телят чёрно-пёстрой породы с 3-суточного возраста. Животные по принципу аналогов были разделены на три группы по 5 гол. в каждой.
Молодняк I гр. был контрольным — клинически здоровые; телята II и III гр. — опытные больные. Животных всех групп вакцинировали ассоциированной эмульсионной инактивированной вакциной против парагриппа-3, инфекционного ринотра-хеита и вирусной диареи крупного рогатого скота. Вакцину вводили внутримышечно в дозе 2 мл на голову с интервалом 21 сут., в 3- и 24-суточном возрасте. Для профилактики обмена веществ по недостатку микроэлементов применяли внутримышечно препарат Седимин в дозе 5 мл на животное однократно в 4-суточном возрасте. Также применяли комбинированный витаминный препарат Элеовит внутримышечно по 5 мл с интервалом 2 недели в 4- и 18-суточном возрасте.
Животным I гр. (контроль) для усиления действия вакцины вводили внутримышечно Миксо-ферон, обладающий противовирусным и иммуно-моделирующим действием, с профилактической целью двукратно с интервалом в 48 час. по 5 доз на 1 животное в 3- и 5- суточном возрасте.
Животным II гр. в качестве противовирусного и иммуномоделирующего средства с лечебной целью вводили Миксоферон внутримышечно два раза в сутки в течение 10 сут. по 10 доз на одно животное с 3-суточного возраста. Для подавления сопутствующей бактериальной микрофлоры применяли антибиотик Кепроцерил WSP с лечебной целью перорально индивидуально с водой для поения в суточной дозе 1 г на 1 л воды в течение 7 сут. В течение 7 сут. соблюдали 6-часовую голодную диету.
Телятам III гр. с лечебной целью вводили гипериммунную сыворотку СПВИ-КРС по 25 мл внутримышечно на 1 животное двукратно с интервалом 24 часа, в 3- и 4-суточном возрасте. В качестве противовирусного и иммуномодели-рующего средства с лечебной целью применяли биопрепарат Биферон-Б внутримышечно по 3 мл на одно животное в течение 10 сут. с 3- суточного возраста. Для подавления сопутствующей бактериальной микрофлоры применяли антибиотик Кепроцерил WSP с лечебной целью перорально индивидуально с водой для поения в суточной дозе 1 г на 1 л воды в течение 7 сут. На протяжении недели (7 сут.) соблюдали 6-часовую голодную диету После курса Кепроцерила выпаивали Бифидумбак-терин в течение 14 сут. 2 раза в сутки по 5 мл на одно животное с 50 мл тёплой воды или молока с 3-суточного возраста.
В начале опыта, а затем через 5, 10, 20, 30 и 60 сут. от начала эксперимента проводили взятие
крови, фекалий и носовой слизи от исследуемых животных для лабораторных исследований.
Кровь для исследований набирали в пробирки обычным способом по 10 мл без консервантов.
Пробы фекалий брали в стерильные пробирки или банки. Для определения бифидобактерий в лаборатории отбирали 1 см3 фекалий, массу тщательно перемешивали в изотоническом (0,9%) растворе натрия хлорида и оставляли на 5—10 мин. при комнатной температуре для осаждения крупных частиц. Затем готовили последовательные десятикратные разведения, из которых делали посев в питательную среду. Выделение анаэробных бифидобактерий проводили путём посева больших разведений (10-5, 10-7 и 10-9) на питательную среду для выделения и культивирования бифидобакте-рий — бифидум-среда. Пробирки со средами и исследуемым материалом культивировали в анаэробных условиях, которые создавали с помощью пирогаллола в стеклянном эксикаторе с притёртой крышкой.
Пробы истечений из носовой полости отбирали с помощью стерильных ватных тампонов, которые помещали в носовую полость на 5—10 мин. Тампоны до отправки в лабораторию помещали в морозилку бытового холодильника.
Предварительный диагноз на вирусную диарею телят устанавливали на основании клинических признаков и лабораторных исследований.
При клиническом исследовании у телят наблюдалось повышение температуры до 41—41,5°С (норма 38,5—40,5°С), серозные и слизистые истечения из носа, слезотечение, тахикардия — 110—115 ударов в минуту (норма 99—108 уд/мин), учащённое дыхание — 58—65 дыханий в мин. (норма 50—56), отсутствие аппетита. Одновременно у телят наблюдалась диарея, фекалии были водянистые, с примесью слизи. Телята стояли сгорбленные, угнетённые или лежали, быстро худели.
Температуру измеряли ректально. Наблюдались серозные, слизистые и слизисто-гнойные истечения из носа.
Слизистая оболочка глаз была гиперемирована в разной степени, наблюдалось слезотечение.
Частоту дыхания определяли по движению грудной клетки, по толчкам выдыхаемого воздуха, ощущаемым подставленной около ноздрей ладонью.
Окончательный диагноз устанавливали на основании клинических данных и результатов лабораторных исследований.
Результаты исследования. Изменения сод ер -жания эритроцитов в крови телят контрольной и опытных групп по дням исследования представлены на рисунке. Фоновый показатель уровня эритроцитов в крови телят I гр. составлял 4,11 млн/мкл, а в крови больных телят был понижен до 3,25—3,86 млн/мкл. В процессе эксперимента этот показатель имел тенденцию к повышению. У телят I контрольной гр. он колебался в пределах от 4,01
до 4,35 млн/мкл, достигнув максимума к 10-м сут. эксперимента. Содержание эритроцитов в крови телят II гр. было выше контрольного уровня на 20-, 30- и 60-е сут. эксперимента соответственно в 1,07 раза (на 0,28 млн/мкл), в 1,11 раза (на 0,45 млн/мкл) и в 1,09 раза (на 0,39 млн/мкл). Более высокие показатели уровня эритроцитов в крови телят наблюдались в III гр. Содержание эритроцитов в этой группе превысило контрольные цифры здоровых телят I гр. и показатели животных II гр. во все сроки опыта.
На рисунке видно, что применение противовирусного и иммуномоделирующего средства Миксоферон в комплексе с антибиотиком (II гр.) способствует незначительному повышению в крови телят уровня эритроцитов. Комплексное применение готовых антител в виде сыворотки СПВИ-КРС, противовирусного препарата Биферон-Б, антибиотика Кепроцерил WSP и Бифидумбактерина оказывало благоприятное влияние на повышение в крови телят уровня эритроцитов.
Уровень гемоглобина в крови телят контрольной и опытных групп также имел тенденцию к изменению. В крови телят I контрольной гр. гемоглобин на протяжении всего эксперимента находился в пределах от 52,6 до 69,3%. В крови животных опытных групп наблюдалось увеличение уровня гемоглобина в разной степени выраженности. Так, у телят II гр. уровень гемоглобина был выше по отношению к фоновым значениям, но уступал показателям животных I гр. Наиболее выраженный процесс увеличения гемоглобина в крови регистрировали у телят III гр. начиная с 20-х сут. опыта. К этому сроку уровень гемоглобина приблизился к показателям контрольной группы.
Таким образом, в крови телят опытных групп уровень гемоглобина стабильно повышался по отношению к фоновым параметрам и максимально приблизился к параметрам контрольной группы. Особенно их повышению способствовало комплексное применение сыворотки СПВИ-КРС, Биферона-Б, Кепроцерила и Бифидумбактерина.
Уровень бифидобактерий в кишечнике телят в начале эксперимента находился в пределах 7,0—7,5 ^ КОЕ. У животных I контрольной гр. уровень бифидобактерий находился в пределах от 7,5 до 13,2 ^ КОЕ. В кишечнике животных II гр. антибиотики оказывали негативное влияние на состояние бифидобактерий. Их уровень повышался незначительно и был самым низким по сравнению с данными I контрольной и III опытной гр. В крови телят III гр. применяемые нами препараты, наоборот, оказывали положительное влияние на состояние бифидофлоры кишечника. Уже на 5-е сут. опыта их содержание сравнялось с показателями сверстников контрольной группы, составив 8,6 ^ КОЕ. В последующие дни эксперимента уровень бифидобактерий был максимально приближен к параметрам здоровых телят I гр.
Таким образом, применение животным II гр. противовирусного препарата Миксоферон в комплексе с антибиотиком на фоне вакцинации способствовало повышению уровня нормофлоры (бифидобактерий) к концу опыта по сравнению с фоновым показателем в 1,35 раза, но был ниже контроля и данных III гр. в 1,36 и в 1,29 раза соответственно. У телят III гр. к 60-м сут. опыта уровень бифидобактерий увеличился в 1,8 раза по сравнению с началом исследования и практически достиг показателей бифидобактерий у животных контрольной группы.
Динамика изменения живой массы в период эксперимента и сохранность телят представлены в таблице.
Живая масса телят к началу опыта находилась в пределах от 26,4 до 29,2 кг. У животных I контрольной гр. к концу опыта она составляла 68,7 кг. Среднесуточный прирост живой массы за период опыта у них был равен 658 г. Сохранность телят составляла 100%. У телят II гр. средняя масса к концу опыта находилась на уровне 64,9 кг. Среднесуточный прирост живой массы у них достиг 642 г, сохранность составила 80%. Падёж произошёл в 7-суточном возрасте. Телята III гр. к концу опыта достигли средней массы 67,8 кг. Среднесуточный прирост составлял 683 г, сохранность поголовья — 100%.
Таким образом, живая масса телят к концу опыта находилась в пределах от 64,9 до 68,7 кг. К хорошим результатам для повышения среднесуточного прироста живой массы и сохранности телят привело комплексное применение сыворотки СПВИ-КРС, противовирусного и иммуномодулирующего препарата Биферон-Б, антибиотика Кепроцерил и Бифидумбактерина.
В результате проведённого исследования и анализа полученных данных можно сделать следующие выводы.
Применение животным противовирусного и иммуномодулирующего средства Миксоферон в комплексе с антибиотиком на фоне вакцинации с применением Седемина и Элеовита способствует повышению уровня эритроцитов в крови телят в 1,1 раза (на 0,39 млн/мкл). Комплексное при-
5,5 5
ч
й 4,5
Я
5 4
Фон
10 20 Дни исследований
■ I группа -Ш- II группа -А- III группа
Рис. - Динамика эритроцитов в крови телят, млн/мкл
3
Показатели живой массы и сохранности телят
Группа Живая масса, кг Среднесуточный прирост живой массы, г Сохранность
в начале опыта через 60 сут. % гол.
I контрольная 29,2 68,7 658 100 5
II опытная 26,4 64,9 642 80 4
III опытная 26,8 67,8 683 100 5
менение препаратов, таких, как СПВИ-КРС, Биферон-Б, Кепроцерил и Бифидумбактерин, на фоне вакцинации с применением Седемина и Элеовита более эффективно активизирует уровень эритроцитов — в 1,3 раза (на 1,19 млн/мкл).
Сыворотка СПВИ-КРС, Биферон-Б, Кепро-церил и Бифидумбактерин на фоне вакцинации с применением Седемина и Элеовита повышают уровень гемоглобина до физиологических норм, составив 67,2%, превысив фоновые значения в 1,47 раза (на 21,5%).
Динамика бифидобактерий остаётся в пределах показателей здоровых животных. Лучшие результаты достигаются благодаря комплексному применению сыворотки СПВИ-КРС, Биферона-Б, Кепроцерила и Бифидумбактерина на фоне вакцинации с применением Седемина и Элео-вита, достигнув 11,6 ^ КОЕ/г. Бесконтрольное, массовое применение антибиотиков для лечения и профилактики желудочно-кишечных болезней животных способствует появлению резистентных штаммов микроорганизмов, что осложняет борьбу с этими болезнями.
Комплексное применение препаратов оказывает терапевтическое действие на организм телят в виде повышения среднесуточных приростов живой массы до 683 г и 100% сохранности поголовья.
Литература
1. Мироненко С.И., Косилов В.И., Жукова О.А. Особенности воспроизводительной функции тёлок и первотёлок на Южном Урале // Вестник мясного скотоводства. 2009. Т. 2. № 62. С. 48-56.
2. Комарова Н.К., Косилов В.И., Востриков Н.И. Влияние лазерного излучения на молочную продуктивность коров различного типа стрессоустойчивости // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2015. № 3 (53). С. 132-134.
3. Косилов В.И. Мясная продуктивность кастратов казахской белоголовой породы и её помесей с симменталами и шароле /
B.И. Косилов, Х.Х. Тагиров, Р.С. Юсупов, А.А. Салихов // Зоотехния. 1999. № 1. С. 25-28.
4. Мироненко С.И. Показатели экономической эффективности выращивания крупного рогатого скота разного направления продуктивности в условиях Южного Урала / С.И. Миро-ненко, В.И. Косилов, Д.А. Андриенко, Е.А. Никонова // Вестник мясного скотоводства. 2014. № 3 (86). С. 58-63.
5. Гатауллина Ю.И., Ильясова З.З. Изменения биохимических показателей крови при беломышечной болезни телят // Научно-методический электронный журнал Концепт. 2017. Т. 39. С. 3651-3655.
6. Ильясова З.З. Повышение продуктивности телят при дисбактериозах // Пути повышения эффективности АПК в условиях вступления России в ВТО: матер. междунар. науч.-практич. конф. Уфа, 2003. С. 342-344.
7. Кутузова А.А., Ильясова З.З. Динамика бифидобактерий в кишечнике телят при диареи // Инновационные подходы и технологии для повышения эффективности производств в условиях глобальной конкуренции: междунар. науч.-практич. конф., посвящ. памяти член-корреспондента КазАСХН, д.т.н., профессора Е.Т. Тулеуова. Семей, 2016.
C. 742-744.
8. Гафарова Ф.М. Молочная продуктивность коров в зависимости от возраста / Ф.М. Гафарова, Ф.А. Гафаров, З.А. Га-лиева, А.М. Шарафутддинова // Аграрная наука: поиск, проблемы, решения: матер. Междунар. науч-практич. конф. Волгоград, 2015. С. 261-263.
9. Долженкова Г.М. Технологии первичной переработки продуктов животноводства / Г.М. Долженкова, З.А. Галиева, М.Б. Ребезов, Ф.А. Гафаров, Э.К. Окусханова // Лабораторный практикум. Алматы: МАП, 2015. 120 с.
10. Долженкова Г.М., Галиева З.А. Эффективность использования питательных веществ и энергии рационов бычками чёрно-пёстрой породы при использовании кормовой добавки биодарин // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. 2016. Т. 1. № 3. С. 40-45.
Показатели крови коров чёрно-пёстрой породы при потреблении энергетического кормового комплекса Фелуцен
Э.Р. Халирахманов, аспирант, И.В. Миронова, д.б.н., ФГБОУ ВО Башкирский ГАУ; Р.Р. Сайфуллин, к.с.-х.н, ФКУ НИИ ФСИН России
Создание оптимальных условий для обеспечения населения страны высококачественными продуктами питания является важнейшей задачей работников агропромышленного комплекса России [1-3].
Молочная продуктивность коров связана с обменными процессами, протекающими в организме, где кровь является внутренней средой, отображающей все изменения, происходящие в нём. В период
лактации в организме коров интенсивно идут биохимические процессы обмена веществ, связанные с трансформацией значительного количества энергии и питательных веществ корма в молоко. В этот период животные особенно нуждаются в организации полноценного и сбалансированного кормления [3, 4].
В современных условиях сложно реализовать генетический потенциал стада и достичь высоких удоев без использования специальных кормовых добавок [4-6].
Перспективным сегментом рынка является введение энергетических кормов, необходимых для
