CC BY
19
Эффективность применения Гамавита при токсокарозе у кошек
И.О. Переслегина, вет. врач, ветеринарный центр «Эвер-ВЕТ», Т.Н. Кожевникова, к.м.н., н.с., ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи»
Токсокароз — высокораспространённая глистная инвазия у кошек [1]. Для её лечения используют антигельминтные средства на основе фебантела в сочетании с празиквантелом, пирантел, фенбен-дазол и др. препараты [2]. При дегельминтизации животных с массивной степенью инвазированности возникает угроза интоксикации, обусловленной как токсинами, выделяемыми гельминтами, так и продуктами разложения погибших паразитов [3]. Для устранения подобных состояний у собак, кошек, овец, северных оленей и других животных врачи нередко используют Гамавит [4—6], деток-сикантные свойства которого доказаны в самых разных тест-системах [7—10]. Цель данной работы состояла в изучении эффективности Гамавита при дегельминтизации кошек.
Материалы и методы исследования. Работа проведена в марте-апреле 2018 г. Всего были изучены биоматериалы восьми кошек в возрасте от 4,5 до 9 лет, из питомника, находящегося в Московской области. Пробы фекалий доставляли в лабораторию в специальных пластиковых контейнерах. Копрологические исследования проводили в тот же день методом Фюллеборна с использованием 20-кратного объёма насыщенного раствора натрия хлорида, а также методом копроовоскопии. В результате у всех кошек был выявлен токсока-роз. Дегельминтизацию проводили препаратом Дирофен-суспензия в дозе 1 мл на кг массы тела в утреннее кормление. Забор крови производили в тот же день и через 10 дней. Четырём животным (опытная группа) из восьми дополнительно применяли Гамавит подкожно в день дегельминтизации в дозе 0,3 мл/кг массы с повтором введения через день. Животные, которым не вводили Гамавит, составляли контрольную группу.
Результаты исследования. На момент дегельминтизации у всех животных в общем анализе крови
(табл. 1) отмечали относительную эритропению, снижение гемоглобина до нижней границы нормы и ниже нормы, также был заметно повышен уровень СОЭ. При повторном анализе, проведённом через 10 дней, в группе животных, которым вводили Гамавит, содержание эритроцитов пришло в норму, тогда как в контрольной группе эритропения сохранялась. Аналогичным образом уровень гемоглобина опытной группы через 10 дней пришёл в норму, а в контроле оставался ниже референсных значений. Также после дегельминтизации в опытной группе отмечали нормализацию СОЭ, тогда как в контроле она оставалась повышенной.
В лейкограмме (табл. 2) у всех кошек к моменту дегельминтизации наблюдали эозинофи-лию (13—14% при норме 2—8%). При повторном исследовании через 10 дней у кошек опытной группы этот показатель снизился до верхней границы нормы, а в контроле по-прежнему превышал её.
По данным биохимического анализа крови (табл. 3), накануне дегельминтизации в сыворотке крови отмечалось снижение общего белка в крови животных обеих групп, а также повышение активности трансфераз (АЛТ и АСТ) и щелочной фосфатазы. Через 10 дн. уровень АСТ в опытной группе почти достиг верхней границы нормы, а уровень АЛТ и ЩФ пришёл в норму. В крови животных контрольной группы все эти показатели оставались выше референсных значений. Также в группе кошек, получавших Гамавит, через 10 дней восстановился уровень железа, тогда как в контроле он оставался ниже нормы.
Токсокароз — одна из наиболее часто встречающихся глистных инвазий кошек, особенно распространённая в питомниках и приютах [11]. Учитывая высокую эффективность современных антигельминтных средств, при дегельминтизации животных с массивной степенью инвазированности возникает угроза интоксикации, обусловленной как токсинами, выделяемыми гельминтами, так и продуктами разложения погибших паразитов [3, 12]. Для профилактики подобных осложнений и сти-
1. Общий анализ крови (X±Sx)
Измерено с Гамавитом Измерено без Гамавита
Параметр Норма в день дегельминтизации через 10 дн. в день дегельминтизации через 10 дн.
(WBC) Лейкоциты, 109/л 5,5-19,5 18,9±0,78 16,3±0,63 19,1±0,95 18,9±0,89
^С) Эритроциты, 1012/л 6,6-9,4 6,5±0,2 7,3±0,3 5,8±0,2 5,95±0,2
(HGB) Гемоглобин, г/л 80-150 79,45±3,45 110,25±4,95* 69,1±2,95 75,25±3,85
(НСТ) Гематокрит, % 30-45 31,95±1,74 34,4±1,90 32,75±1,02 33,85±2,11
(PLT) Тромбоциты, 109/л 150-400 252,5±8,33 287,5±10,3 347,25±9,6 324,5±11,34
СОЭ, мм/час 2,5-3,5 3,75±0,05 3,0±0,02 4,95±0,11 4,25±0,13
Примечание: в таблицах приведены наиболее значимые показатели: *P<0,05
2. Лейко грамма (X±Sx)
Измерено с Гамавитом Измерено без Гамавита
Параметр Норма, % в день дегель- через в день дегель- через
минтизации 10 дн. минтизации 10 дн.
Базофилы 0-1 0 0 0 0
Эозинофилы 2-8 13,25±0,56 7,25±0,29* 14,25±0,77 11,5±0,65
Нейтрофильная группа:
Миелоциты 0 0 0 0 0
Юные 0 0 0 0 0
Палочкоядерные 3-9 5,5 5,5 7,25 5,4
Сегментоядерные 40-68 43,25 44,75 46,0 51,5
Лимфоциты 36-51 35,9 39,25 33,25 31,25
Моноциты 1-5 1,4 2,0 1,5 2,5
3. Биохимическое исследование крови (X±Sx)
Измерено с Гамавитом Измерено без Гамавита
Параметр Норма в день дегель- через в день дегель- через
минтизации 10 дн. минтизации 10 дн.
Общий белок сыворотки крови, г/л 59-78 60,1±2,99 64,9±3,45 55,9±2,78 59,9±4,12
(АСТ) Аспартатаминотрансфераза, и/Ь 12-40 60,63±3,45 41,6±2,88* 61,6±5,01 54,1±3,89
(АЛТ) Аланинаминотрансфераза, и/Ь 28-76 101,18±5,46 69,15±3,13* 102,7±7,56 90,2 ±4,32
(ЩФ) Щелочная фосфатаза, и/Ь 0-62 60,75±4,56 55,37±2,98 72,35±4,33 71,1±4,65
Аммиак плазмы, ммоль, Ы/л 15-40 42,24±2,76 35,0±1,77 42,75±4,02 39,82±2,33
Железо, ммоль/л 20-30 16,75±0,7 21,68±1,65 15,8±1,02 16,44±0,65
муляции естественной резистентности организма многие ветеринарные специалисты используют Гамавит [4, 13, 14], который не только является детоксикантом [8, 9, 15], но и эффективно купирует анемию и восстанавливает гемопоэз при паразитарных инвазиях [5, 6, 10]. Действующими веществами препарата служат денатурированный экстракт плаценты и нуклеинат натрия, растворённые в питательной культуральной среде для выращивания клеток, содержащей комплекс аминокислот, витаминов и микроэлементов.
Мы показали, что включение Гамавита в схему терапии токсокароза у кошек способствует быстрому устранению эритропении, а также нормализации уровня гемоглобина и СОЭ. Кроме того, в группе кошек, получавших Гамавит, быстрее купировалась эозинофилия, характерный маркер глистных инвазий. При биохимическом анализе крови Гамавит способствовал нормализации уровня АСТ, АЛТ и ЩФ, а также содержания железа в сыворотке крови.
Вывод. Включение Гамавита в схему терапии токсокароза у кошек сокращает сроки реабилитации и способствует быстрой нормализации клинических и гемобиохимических показателей крови.
Литература
1. Пешков Р.А. Гельминтофауна собак и кошек в условиях г. Москвы // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями: материалы докладов научной конференции. Москва: 2007. С. 277-278.
2. Бене Ф. Выбор антигельминтных средств при гельминтозе у плотоядных. Ветеринар. 1999. № 5-6. С. 4-9.
3. Кузьмин А. А. Антгельминтики в ветеринарной медицине. М., Аквариум, 2001. 144 с.
4. Глотов Е.Э., Кораблева Т.Р. Применение препарата гамавит при дегельминтизации овец против кишечных стронгилят. Научные труды Южного филиала Национального университета биоресурсов и природопользования Украины. Серия: «Ветеринарные науки». 2011. № 139. С. 35—39.
5. Либерман Е.Л., Георгиу Х., Белименко В.В. Опыт применения гамавита при лечении кровепаразитарных болезней северных оленей. Российский ветеринарный журнал. СХЖ. 2014. № 4. С. 31-33.
6. Санин А.В., Сосновская О.Ю., Санина В.Ю., Кожевникова Т.Н., Васильев И.К., Наровлянский А.Н., Пронин А.В. Особенности применения иммуномодуляторов при паразитарных инвазиях. Ветеринария Кубани. 2010. № 2. С. 15-18.
7. Обрывин В.Н., Жоров Г.А., Рубченков П.Н. Влияние препаратов Гамавит и гала-вет на токсический иммунодефицит у белых крыс. Ветеринарная патология. 2008. № 3. С. 119-125.
8. Переслегина И.О., Дубровина Т.С., Клинцова Т.Ю., Агафонова А.Д., Зотова С.Н. Гамавит и фоспренил повышают эффективность терапии бытовых отравлений кошек. Ветеринария и кормление. 2018. № 1. С. 34-36.
9. Переслегина И.О., Дубровина Т.С., Клинцова Т.Ю., Зотова С.Н., Кожевникова Т.Н., Санин А.В. Клинические случаи хронического отравления кошек: опыт применения препарата Гамавит. Ветеринария Кубани. 2017. № 5. С. 23-26.
10. Санин А.В., Ожерелков С.В., Зварцев Р.В., Пронин А.В., Наровлянский А.Н. Снижение острой токсичности препарата имидосан под действием гамавита - возможные перспективы при лечении бабезиоза собак. Российский ветеринарный журнал. МДЖ. 2009. № 4. С. 56-60.
11. Ястреб В.Б., Шайтанов В.М. Кишечные паразитозы взрослых собак и кошек, содержащихся в приютах для бездомных животных. Российский паразитологический журнал. 2017. Т. 39. С. 9-13.
12. Липин А.В., Санин А.В., Зинченко Е.В. Ветеринарный справочник традиционных и нетрадиционных методов лечения кошек. М.: Центрполиграф, 2007. 580 с.
13. Санин А.В., Манько В.М. Неспецифический иммунитет. Гематология и трансфузиология, 1990. № 7. С. 30-34.
14. Санин А.В. Выбор антигельминтных средств и основы дегельминтизации. Ветеринарная клиника. 2003. № 12. С. 18-20.
15. Фидаров А.Т., Годизов П.Х. Детоксикантное действие препарата гамавит. В книге: Актуальные проблемы экологии и сохранения биоразнообразия России и сопредельных стран 2014. С. 235-241.
