CC BY
59
УДК 612351.61:616.36-005.036.11
DOI: 10.21626/vestnik/2019-1/12
ЭФФЕКТИВНОСТЬ БЕЛКОВ АЛЛОГЕННЫХ ГЕПАТОЦИТОВ В КОРРЕКЦИИ ИММУНОМЕТАБОЛИЧЕСКИХ НАРУШЕНИЙ ПРИ ОСТРОМ ИШЕМИЧЕСКОМ ПОРАЖЕНИИ ПЕЧЕНИ
© Литвинова Е.С., Конопля А.И., Дудка В. Т.
Курский государственный медицинский университет (КГМУ)
Россия, 305041, Курская область, г. Курск, ул. К. Маркса, д. 3
Цель исследования - определить эффективность культуральной жидкости аллогенных гепатоцитов и выделенных из них белков при коррекции иммунных и метаболических нарушений остро возникшего ишемического поражения печени.
Материалы и методы. Исследование выполнено на 105 половозрелых и здоровых крысах линии Вистар. Острое ишемическое поражение печени (ОИПП) вызывали пережатием гепатодуоденальной связки в течение 20 минут. Выделенные от новорожденных животных аллогенные гепатоциты использовали для приготовления культуральной жидкости, из которой получали белки. Культуральную жидкость аллогенных гепатоцитов (КЖАГ) и их белки вводили с началом моделирования острой ишемии печени пятикратно (с интервалов в 24 часа) внутри-брюшинно крысам с ОИПП по расчету 5 мг/кг белка.
Результаты. Острая ишемия печени вызывает развитие биохимических синдромов поражения печени (цитолиза, внутри- и внепеченочного холестаза, токсического поражения, недостаточности синтетических процессов), активирует процессы перекисного окисления липидов, нарушает внутриэритроцитарный метаболизм, вызывает развитие оксидантного стресса, супрессию формирования адаптивного и врожденного иммунитета. Введение животным с ОИПП КЖАГ, неразделенных белков КЖАГ или белков КЖАГ с молекулярной массой (ММ) менее 130 кДа нормализует или корригирует изученные биохимические и иммунологические параметры. Белки КЖАГ с ММ больше 130 кДа такими эффектами не обладают.
Заключение. При анализе корригирующей активности КЖАГ или белков КЖАГ при остро возникшем ише-мическом поражении печени на динамику биохимических маркеров, формирование клеточного и гуморального иммунитета, внутриэритроцитарный метаболизм, изменение метаболической и функциональной активности нейтрофилов периферической крови, активирование свободно-радикального окисления, установлена следующая последовательность (по степени увеличения эффективности): отсутствие корригирующего эффекта у белков КЖАГ с ММ более 130 кД, наличие нормализующей и корригирующей активности: КЖАГ - неразделенные белки КЖАГ - белки КЖАГ менее 130 кД.
Ключевые слова: иммунометаболические нарушения; белки культуральной жидкости аллогенных гепатоци-тов; остря ишемия печени.
Литвинова Екатерина Сергеевна - канд. мед. наук, доцент кафедры патологической анатомии, КГМУ, г. Курск. E-mail: kat roma@mail.ru (автор, ответственный за переписку)
Конопля Александр Иванович - д-р. мед. наук, профессор, заслуженный деятель науки РФ, зав. кафедрой биологической химии, КГМУ, г. Курск. ORCID iD: 0000-0003-4748-8405. E-mail: konoplya51@mail.ru
Дудка Виктор Тарасович - канд. мед. наук, доцент, зав. кафедрой патологической анатомии, КГМУ, г. Курск. E-mail: dudkaviktor@rambler.ru
В настоящее время проблема диагностики и терапии острых и хронических заболеваний печени продолжает оставаться актуальной в связи со сложностью дифференциальной диагностики и оптимального выбора эффективных патогенетических способов лечения на фоне продолжающегося роста количества пациентов с данной патологией [1, 13, 20, 26].
В клинической практике для бескровных манипуляций на печени нередко используется пережатие печеночно-дуоденальной связки. Однако возникающая при этом ишемия ткани может быть причиной резких нарушений функции печени. Увеличение сроков острой ишемии более чем на 15 минут приводит не только к деструктивным процессам в ткани пе-
чени, но и оказывает отрицательное влияние на весь организм в целом [3, 21, 22, 25].
В условиях ишемии печени в первую очередь усиливаются свободно-радикальные процессы и обусловленное ими перекисное окисление липидов (ПОЛ) клеточных мембран. Ускорение образования гидроперекисных радикалов приводит к нарушению структуры клеточных мембран и повышению их проницаемости, что усиливает выход в сосудистое русло компонентов цитоплазмы, клеточных органелл и продуктов нарушенного метаболизма клеток, способных непосредственно изменять функциональную активность иммунокомпетентных клеток. В целом иммунометаболические нарушения, возникающие при гипоксии печени, и механизмы
их развития остаются все еще малоизученными [8, 10, 14, 19].
Отсутствие эффективных средств и способов коррекции нарушений иммунного и метаболического статусов и развивающихся морфологических изменений в ткани печени при ее поражениях определяет целесообразность исследования в эксперименте использования культуральной жидкости аллогенных гепатоцитов (КЖАГ) как отдельно, так и в сочетании с фармакологическими препаратами (антиокси-дантами и мембранопротекторами) [5].
Цель исследования - изучить эффективность применения культуральной жидкости аллоген-ных гепатоцитов и выделенных из нее белков в коррекции метаболических и иммунных нарушений при остром ишемическом поражении печени.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Эксперименты проведены на 105 здоровых половозрелых крысах Вистар массой 150-200 г. Все исследования выполнялись в одно и то же время суток с 8 до 12 ч, содержание и выведение животных из эксперимента проводили с соблюдением принципов, изложенных в Конвенции по защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и других целей (г. Страсбург, Франция, 1986), и согласно правилам лабораторной практики РФ (приказ МЗ РФ № 267 от 19.06.2003 г.).
Острое ишемическое поражение печени (ОИПП) вызывали оперативным методом под внутрибрюшинным гексеналовым наркозом путем пережатия гепатодуоденальной связки в течение 20 минут. Верификация развития структурных изменений в ткани печени производилась гистологическими методами.
Гепатоциты выделяли от аллогенных животных через 5-6 дней после рождения. После забора печени производили ее измельчение в среде 199, клетки из ткани печени извлекали выдавливанием с использованием стеклянного гомогенизатора. Жизнеспособность клеток определяли в тесте с красителем - трипановым синим, при этом клеточные суспензии, содержащие менее 90% жизнеспособных клеток, не использовали. В течение всех манипуляций с клеточной взвесью температура использованной среды 199 составляла 36-37° С [5].
Культуральную жидкость аллогенных гепа-тоцитов (КЖАГ) получали культивировировани-
7
ем в среде 199 5х10 клеток на 3 мл среды в течение 6 ч.
Для получения белков: из 50-100 мл КЖАГ их осаждали равным объемом 10% трихлоруксусной кислоты, образовавшийся осадок отделяли цен-
трифугированием в течение 20 мин при 1500 g, разводили в 0,9% растворе хлорида натрия и диализовали в двух сменах фосфатно-солевого буфера рН 7,2-7,4 в течение 18 часов. После определения концентрации белка и доведения его 0,9% раствором хлорида натрия до 5 мг/мл полученный раствор фильтровали через стерилиза-ционные мембраны 0,2 мкм, расфасовывали в стерильные флаконы по 2 мл и высушивали на установке лиофильной сушки «VIRTIS».
Полученные КЖГА и выделенные из нее белки вводили крысам сразу после моделирования ишемии печени внутрибрюшинно пятикратно (с 24-часовым интервалом) из расчета 5 мг/кг массы тела [5].
Забор крови у экспериментальных животных осуществлялся под наркозом путем внут-рисердечной пункции. Эритроциты и плазму получали из гепаринизированной крови путем центрифугирования. Для оценки функционального состояния гепатоцитов в плазме крови определяли тимоловую пробу (ТП), активность аспартат- и аланинаминотрансфераз (АСТ, АЛТ), щелочной фосфатазы (ЩФ), гаммаглутамин-транспептидазы (ГГТ), содержание билирубина (БР), фибриногена (ФГ), протромбиновый индекс
(пти).
Интенсивность процессов ПОЛ оценивали по содержанию в плазме крови и эритроцитах ацилгидроперекисей (АГП) и малонового диаль-дегида (МДА). Для оценки состояния антиокси-дантной системы определяли методом прямого/конкурентного твердофазного иммунофер-ментного анализа (ИФА) активность суперок-сиддисмутазы (СОД), каталазы и общую антиокислительную активность (ОАА). Уровень стабильных метаболитов оксида азота (CMON) выявляли с применением набора для твердофазного ИФА.
Развитие гуморального иммунного ответа (ГИО) на эритроциты барана (ЭБ) оценивали на пятые сутки после иммунизации по содержанию в селезенке антителообразующих клеток (АОК). Гиперчувствительность замедленного типа (ГЗТ) индуцировали внутрибрюшинным введением ЭБ (сенсибилизирующая доза). Через 4 суток в подушечку стопы правой лапки вводили разрешающую дозу ЭБ. О выраженности ГЗТ судили по разнице масс (РМ) регионарного и контрлатерального лимфатических узлов и по разнице количества в них кариоцитов (РК) [18].
Выделение нейтрофилов из полученной крови проводили на градиенте плотности фи-колл-урографина (р=1,078). Фагоцитарная активность нейтрофилов периферической крови оценивалась по фагоцитарному показателю, фагоцитарному числу и индексу активности фагоцитоза (ФП, ФЧ, ИАФ), а кислородзависимую - по
НСТ-тестам: спонтанному (НСТ-сп.) и стимулированному опсонизированным и неопсонизи-рованным зимозаном (НСТ-ст. о/з, НСТ-ст. н/з), коэффициентам опсонизации, активации на оп-сонизированный и неопсонизированный зимо-зан (КО, КАо, КАн) [6].
Для морфологического подтверждения развития моделируемых патологических изменений и комплексной оценки эффективности коррекции нарушений проведено гистологическое исследование печени. Кусочки органа фиксировали в 10% нейтральном формалине на 0,1 М фосфатном буфере рН=7,2 и заливали в парафин. Парафиновые срезы толщиной 7-10 мкм окрашивали гематоксилином и эозином. Микроскопическое исследование гистологических препаратов проводили с использованием медико-биологического микроскопа Nikon Eclipse CiS со штатной цифровой камерой производства «Nikon Corporation», Япония при разных увеличениях объектива (х4, х10, х20, х40).
С помощью пакета компьютерных программ Microsoft Excel 2010 полученный цифровой материал подвергали статистической обработке с вычислением средних величин (M), ошибки средней арифметической (m). Существенность различий оценивали по U-критерию. Статистически значимыми считали различия с p<0,05.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
У животных с ОИПП морфологически по сравнению с контролем (интактными животными) в печени развивались дегенеративные изменения в виде крупнокапельной жировой дистрофии гепатоцитов, захватывающие обширные участки ткани по распространенности близки к диффузному характеру поражения. Границы гепатоцитов нечеткие, балочная структура строения долек нарушена, нередко встречались мелкоочаговые некрозы гепатоцитов с развитием слабо выраженной нейтрофильно-макрофагаль-ной воспалительной инфильтрации (рис. 1, 2).
Функциональные нарушения при ОИПП характеризовались развитием следующих биохимических синдромов [15]: цитолиза (увеличение активности ACT и АЛТ), внутри- и внепеченоч-ного холестаза (повышение активности ЩФ, ГГТ и концентрации БР), токсического поражения гепатоцитов (увеличение содержания БР, активности АЛТ, ACT, ЩФ, ГГТ, коэффициент ГГТ/АСТ меньше 1, коэффициент де Ритиса больше 1), недостаточности синтетических процессов (снижение ПТИ и ФБ) и воспалительного (повышение ТП) (таблица 1).
Рис. 1. Гистологическая картина ткани печени у интактного животного. Окраска гематоксилин-эозин. Ув. х80.
Fig. 1. Histological picture of liver tissue in an intact animal. Staining with hematoxylin-eosin, x80.
Рис. 2. Дегенеративные изменения ткани печени у животного с ОИПП. Окраска гематоксилин-эозин. Ув. х400.
Fig. 2. Degenerative changes in liver tissue of an animal with AIDH. Staining with hematoxylin-eosin, х400.
Рис. 3. Гистологическая картина ткани печени у животного с ОИПП, получавшего белки КЖАГ менее 130 кД. Окраска гематоксилин-эозин. Ув. х200.
Fig.3 Histological picture of liver tissue in an animal with AIDH who received CFAH proteins. Staining with hematoxylin-eosin, х200.
Таблица 1
Table 1
Белки аллогенных гепатоцитов и их влияние на функциональную активность при остром ишемическом поражении печени (М±т) Allogeneic hepatocyte proteins and their effect on functional activity in acute ischemic liver damage (M±m)
Показатели Indicators Единицы измерения Unit of measure 1 2 3 4 5 6
Контрольная группа Control group Острая ишемия печени и введение: Acute liver ischemia and injection of:
— КЖАГ CFAH Белки КЖАГ CFAH proteins Белки КЖАГ с MM менее 130 кДа CFAH proteins with MM less 130 kDa Белки КЖАГ с MM более 130 кДа CFAH proteins with MM more 130 kDa
АЛТ АШ Е/л U/L 20.3±2.1 *1 49.5±4.0 1 *1 2 30.7±2.3 1,2 *1,2 29.0±1.8 1,2 *1 2 27.4±2.5 1,2 *1 3-5 51.2±5.1 1,35
ПТИ PTI % 61.3±3.3 37.8±1.3 1 *2 58.7±2.3 2 *2 60.3±2.9 2 *2 62.4±4.1 2 *1 3-5 40.2±1.8 1,35
ACT АSТ Е/л U/L 27.4±3.2 *1 56.8±3.7 1 *1 2 41.2±2 1,2 *1,2 39.5±2.8 1,2 *1 2 38.1±2.4 1,2 *1 3-5 57.4±4.5 1,3 5
ГГТ GGT Е/л U/L 4.7±0.8 *1 14.0±0.8 1 *1 2 9.3±1.9 1,2 *1,2 8.2±1.4 1,2 *1 2 7.9±1.7 1,2 *1 3-5 12.9±1.8 1,35
ЩФ ALP Е/л U/L 235±10.4 *1 1136.3±95.6 1 *1,2 382.5±12.3 1,2 *1,2 401.3±15.2 1,2 *1 2 391.3±11.8 1,2 *1 3-5 987.9±85.6 1,3 5
Коэффициент де Ритиса (АЛТ /АСТ) AST/ALT ratio 1.32±0.03 *1 1.15±0.03 1 *2 1.34±0.02 2 *2 1.36±0.04 2 *2 1.4±0.07 2 *1 3-5 1.12±0.04 1,35
ТП TT Ед. S-H S-H unit 2.4±0.1 *1 2 3.7±0.08 1,2 *1,2 2.7±0.1 1,2 *1,2 2.83±0.12 1,2 *1 2 2.61±0.11 1,2 *1 3-5 3.9±0.2 '
ГГТ/АСТ GGT/AST 0.17±0.02 *1 0.25±0.03 1 *1 0.23±0.01 1 0.20±0.02 0.21±0.03 *1 0.22±0.03 1
ФГ FG г/л g/L 3.9±0.04 2.2±0.02 *1,2 3.5±0.08 1,2 *2 3.8±0.11 2 *2 4 3.9±0.07 2,4 *1 3-5 2.5±0.4 1,3 5
БР BR мкмоль/л ^mol/L 4.9±0.9 *1 19.6±1.3 1 *1,2 7.1±0.4 1,2 *1,2 6.9±0.4 1,2 *1 2 6.7±0.3 1,2 *1 3-5 18.4±1.7 1,35
Примечание: на этой и всех следующих таблицах звездочкой (*) определены достоверные отличия средних арифметических (р=0,05); цифры рядом со звездочкой поясняют, по отношению к показателям какой из групп даны эти различия. КЖАГ - культуральная жидкость аллогенных гепатоцитов; ММ - молекулярная масса; АЛТ - аланинаминотрансфераза; АСТ - аспартатаминотрансфераза; ГГТ - гамма-глютамилтранспептидаза; ЩФ - щелочная фосфатаза; ПТИ - протромбиновый индекс; БР - билирубин; ТП - тимоловая проба; ФГ - фибриноген.
Note: on this and all the following tables significant differences of arithmetic averages (p = 0.05) were noted in an asterisk (*); numbers next to an asterisk (*) explain in relation to the indicators of which group these differences are given. CFAH - culture fluid of allogeneic hepatocytes; MM - molecular mass; AST - aspartate aminotransferase; ALT - alanine aminotransferase; ALP - alkaline phosphatase; GGT - gamma-glutamyltranspeptidase; BR - bilirubin; PTI - prothrombin index; FG - fibrinogen; TT - thymol test.
У животных, получавших белки КЖАГ с молекулярной массой (ММ) больше 130 кДа, коррекции и (или) нормализации нарушений биохимических параметров функциональной активности гепатоцитов, вызванных острой ишемией печени, не наблюдалось.
Введение животным с ОИПП КЖАГ нормализовало ПТИ и соотношение АСТ/АЛТ не влияло на коэффициент ГГТ/АСТ, а остальные исследованные параметры функционально-
метаболической активности гепатоцитов приближало к значениям контрольной группы, но не до их уровня. Применение цельных (не разделенных на фракции) белков КЖАГ или белков КЖАГ с ММ менее 130 кДа оказалось более эффективным, поскольку, по сравнению с КЖАГ, дополнительно нормализует уровень ФГ и коэффициент ГГТ/АСТ (таблица 1). При морфологическом исследовании печени у животных с ОИПП, получавших белки КЖАГ с ММ менее
гиалиново-капельной дистрофии, некроз отдельных клеток (рис. 3).
Установлено, что у животных с ОИПП на системном (плазма крови) и локальном (эритроциты) уровне наблюдается активация ПОЛ (увеличение содержания МДА и АГП), развитие ок-сидантного стресса (снижение ОАА, активности СОД и каталазы), снижение в плазме крови концентрации стабильных метаболитов оксида азота (таблица 3).
Таблица 2
Table 2
Белки аллогенных гепатоцитов и их влияние на метаболические параметры
эритроцитов и плазмы крови при остром ишемическом поражении печени (М±т)
The effect of allogeneic hepatocyte proteins on metabolic parameters of blood plasma and erythrocytes in acute ischemic liver damage (M±m)
Показатели Indicators Единицы измерения Unit of measure 1 2 | 3 | 4 | 5 | 6
Контрольная группа Control group Острая ишемия печени и введение: Acute liver ischemia and injection of:
— КЖАГ CFAH Белки КЖАГ CFAH proteins Белки КЖАГ с MM менее 130 кДа CFAH proteins with MM less 130 kDa Белки КЖАГ с MM более 130 кДа CFAH proteins with MM more 130 kDa
Плазма крови Blood plasma
ОАА ТАА % 42.8±2.1 *1 32.7±2.3 1 *2 44.7±3.1 2 *2 47.1±5.2 2 *2 44.±4.1 2 *1 3 4 5 34.7±1.9 1,3,4,5
СОД SOD усл. ед./мл U.U./ml 12.0±0.7 *1 6.1±1 1 *2 13.9±1.1 2 *2 14.5±1.2 2 *2 15.1±2.2 2 *1 3 4 5 5.9±0.8
МДА MDA мкмоль/л ^mol /L 2.6±1 *1 8.3±0.9 1 *2 2.3±0.11 2 *2 2.4±0.1 2 *2 2.46±0.08 2 *1 345 7.8±0.7 1,3,4,5
АГП AHP усл. ед. C.U. 0.82±0.08 *1 2.6±0.1 1 *2 0.81±0.02 2 *2 0.79±0.03 2 *2 0.8±0.02 2 *1 3 4 5 2.4±0.14 1,3,4,5
CMon SMon мкмоль/л ^mol /L 7.1±0.3 *1 3.8±0.07 1 *1 2 6.2±0.2 1,2 *1 2 6.0±0.1 1,2 *1 2 6.4±0.22 1,2 *1 3 4 5 4.1±0.32
Каталаза Kat мкат/л mkat/L 13.4±1 *1 8.2±1 1 *2 13.7±1.5 2 *2 14.8±2.7 2 *2 15.6±2.9 2 *1 345 8.6±0.7
Эритроциты Red blood cells
ОАА ТАА % 45.6±3.0 *1 37.5±2.8 1 *2 46.1±3.5 2 *2 49.1±4.8 2 *2 50.5±5.1 2 *1 3 4 5 38.1±1.4 1,3,4,5
СОД SOD усл. ед./мл C.U./ml 22.1±1.3 *1 10.4±0.8 1 *2 21.3±1.7 2 *2 24.6±2.3 2 *2 23.8±1.7 2 *1 3 4 5 12.5±2.2
АГП АНР усл. ед. C.U. 0.11±0.02 *1 1.04±0.04 1 *1 2 0.35±0.04 1,2 *1 2 0.4±0.02 1,2 *1 2 0.38±0.03 1,2 *1 3 4 5 0.98±0.05
МДА МDА мкмоль/л ^mol /L 0.28±0.03 *1 3.8±0.12 1 *1 2 0.54±0.12 1,2 *1 2 0.6±0.05 1,2 *1 2 0.71±0.04 1,2 *1 3 4 5 3.5±0.2
СЕГ SCE 10*' г/эр 1012 g/RBC 3.1±0.1 *1 1.4±0.03 1 *2 3.04±0.1 2 *2 2.94±0.08 2 *2 3.2±0.2 2 *1 3 4 5 1.5±0.1 1,3,4,5
СЕЭ ESC % 51.7±1.8 *1 24.2±1.1 1 *2 53.7±4.1 2 *2 48.4±3.9 2 *2 47.5±4.8 2 *1 3 45 26.7±2.5 1,3,45
Каталаза Kat мкат/л mkat/L 12.4±1.1 *1 8.1±0.3 1 *1 2 17.7±1.9 1,2 *1 2 18.4±1.3 1,2 *1 2 19.7±2.5 1,2 *1 3 4 5 7.8±0.9
Примечание: МДА - малоновый диальдегид; АГП - ацилгидроперекиси; ОАА - общая антиокислительная активность; СОД - супероксиддисмутаза; CMON - стабильные метаболиты оксида азота; СЭЭ - сорбционная емкость эритроцитов; СЕГ - сорбционная емкость гликокаликса.
Note: MDA - malondialdehyde; AHP - acylhydroperoxides; TAA - total antioxidant activity; SOD - superoxide dismutase; SMON - stable metabolites of nitric oxide; ESC - erythrocyte sorption capacity; SCE - sorption capacity glycocalyx.
130 кД, в портальных трактах наблюдались неравномерное полнокровие сосудов и явления отека, в перипортальных отделах ткань печени без дегенеративных изменений: гепатоциты с гомогенной цитоплазмой и четкими границами образуют упорядоченно направленные и хорошо контурирующиеся печеночные балки. В области центролобулярных отделов долек балочное строение печеночной ткани нечеткое, в цитоплазме гепатоцитов наблюдались явления
Таблица 3
Table 3
Влияние белков аллогенных гепатоцитов на формирование адаптивного иммунного ответа и метаболическую и функциональную активность нейтрофилов периферической крови при остром ишемическом поражении печени (М±т)
The effect of allogeneic hepatocyte proteins on the formation of an adaptive immune response and the functional and metabolic activity of
peripheral blood neutrophils in acute ischemic liver damage (M±m)
Показатели Indicators Единицы измерения Unit of measure 1 2 3 4 5 6
Контрольная группа Control group Острая ишемия печени и введение: Acute liver ischemia and injection of:
— КЖАГ CFAH Белки КЖАГ CFAH proteins Белки КЖАГ с MM менее 130 кДа CFAH proteins with MM less 130 kDa Белки КЖАГ с MM более 130 кДа CFAH proteins with MM more 130 kDa
rao u r3T Humoral immune response and delayed type hypersensitivity
РМ MD мг mg 3.1±0.07 *1 2.0 ±0.04 1 *2 3.15+0.05 2 *2 3.2±0.08 2 *2 3.14±0.05 2 *1 3 4 5 2.1±0.07
РК KD 10° кариоцитов 106 kariocytes 1.8±0.08 0.9±0.02 1 *2 1.93±0.1 2 *2 1.84±0.07 2 *2 1.77±0.06 2 *1,3,4,5 0.82±0.05
АОК APC тыс/орган t./organ 19.7±1.4 *1 8.4±0.9 1 *1 2 14.2±1.2 1,2 *1 2 15.1±1.8 1 *1 2 13.7±2.1 1 *1,3,4,5 7.8±0.5
Метаболическая и функциональная активность нейтрофилов периферической крови Metabolic and functional activity of peripheral blood neutrophils
ИАФ PAI — 1.54±0.1 *1 0.7±0.04 1 *2 1.66±0.08 2 *2 1.73±0.12 2 *2 1.8±0.2 2 *1,3,4,5 0.75±0.03 1,3,4,5
ФП PI абс. abs. 61.7±3.6 *1 46.8±2.1 1 *2 65.0±2.6 2 *2 66.3±4.8 2 *2 63.7±3.5 2 *1,3,4,5 44.3±2.5 1,3,4,5
ФЧ PN абс. abs. 2.5±0.06 *1 1.5±0.05 1 *2 2.55±0.3 2 *2 2.61±0.3 2 *2 2.8±0.3 2 *1,3,4,5 1.7±0.16 1,3,4,5
КО OC — 1.4±0.08 1.02±0.03 1 *2 1.39±0.08 2 *1 3 1.16±0.04 1,3 *2 4 1.4±0.03 2,4 *1,3,4,5 1.07±0.02 1,3,4,5
НСТ-сп. NBT-sp. mOD 0.80±0.02 0.50±0.02 1 *2 0.76±0.1 2 *2 0.74±0.05 2 *2 0.8±0.05 2 *1,3,4,5 0.52±0.03
НСТ-ст. н/з NBT-ind n/z mOD 0.9±0.02 0.54±0.04 1 *2 1.01±0.03 2 *2 1.1±0.2 2 *2 0.94±0.07 2 *1,3,4,5 0.57±0.02 1,3,4,5
НСТ-ст. о/з NBT-ind о/z mOD 1.3±0.04 0.55±0.05 1 *2 1.4±0.07 2 *2 1.28±0.1 2 *2 1.33±0.09 2 *1,3,4,5 0.61±0.03 1,3,4,5
КАо ACo/z — 1.65±0.03 1.12±0.02 1 *1 2 1.84±0.09 1,2 *2 1.73±0.03 2 *2 1.7±0.05 2 *1,3,4,5 1.17±0.04 1,3,4,5
КАн ACn/z — 1.14±0.08 1.1±0.03 *1 2 1.33±0.04 1,2 *1,2 1.5±0.14 1,2 *3,4 1,18±0,06 3,4 **1,3,4,5 1.1±0.02 ' ' '
Примечание: АОК - количество антителообразующих клеток; РМ - разница масс контралатерального и регионарного подколенных лимфатических узлов; РК - разница количества в них кариоцитов; ФП - фагоцитарный показатель; ФЧ - фагоцитарное число; ИАФ - индекс активности фагоцитоза; НСТ-тест - реакция восстановления нитросинего тетразолия: спонтанная (НСТ-сп.) и стимулированная опсонизированным и неопсонизированным зимозаном (НСТ-ст. о/з, НСТ-ст. н/з); КО, КАн, КАо - коэффициенты опсонизации, активации на опсонизированный и неопсонизированный зимозан.
Note: AFC - is the number of antibody-producing cells; MD - the difference in mass of regional and contralateral popliteal lymph nodes; KD - the difference in the number of karyocytes in them; PI - is a phagocytic index; PN - phagocytic number; PAI - phagocytosis activity index; NBT-test - is the reduction reaction of nitroblue tetrazolium: spontaneous (NBT-sp.) and stimulated by opsonized and non-opsonized zymosan (NBT-ind. o/z, NBT-ind. n/z); OC, ACo/z, ACn/z - coefficients of opsonization, activation for opsonized and non-opsonized zymosan.
Введение белков КЖАГ с ММ более 130 кДа не влияло на активацию ПОЛ, развитие окси-дантного стресса на общем (плазма крови) и локальном (эритроциты) уровне, обусловленные острой ишемией печени. Введение КЖАГ, неразделенных белков КЖАГ или белков КЖАГ с ММ менее 130 кДа нормализует параметры ан-тиоксидантной защиты на системном и локальном уровне (исключением стала активность ка-талазы в эритроцитах - коррекция) и приближает к контролю, но не до их значений, содержание СМ^ в плазме и маркеры ПОЛ в эритроцитах (таблица 2).
Острая ишемия печени приводит к супрессии развития гуморального и клеточного иммунного ответа на ЭБ и снижению фагоцитарной и кислород-зависимой метаболической активности циркулирующих нейтрофилов (за исключением КАн - без изменения) (таблица 3).
Введение белков КЖАГ с ММ больше 130 кДа не влияло на изменения параметров адаптивного и врожденного иммунитета, вызванные острой ишемией ткани печени. Использование КЖАГ, неразделенных белков КЖАГ или белков КЖАГ с ММ менее 130 кДа корригирует формирование ГИО (АОК), нормализует показатели ГЗТ (РМ и РК), фагоцитарной (ФП, ФЧ и ИАФ) и кислород-зависимой метаболической (НСТ-сп., НСТ-ст. н/з и о/з) активности полиморфно-ядерных лейкоцитов периферической крови. В отличие от КЖАГ, введение которой повышает показатели функционального резерва нейтро-филов (КАн и КАо) с достоверным превышением контрольных значений, белки КЖАГ (без разделения и с ММ менее 130 кД) корригируют или нормализуют эти параметры полиморфно-ядерных лейкоцитов. Введение белков КЖАГ не разделенных на фракции снижает дополнительные функциональные возможности нейтро-филов (КО) в отношении метаболической активности, а КЖАГ и белки с ММ менее 130 кДа их нормализуют (таблица 3).
Таким образом, в условиях ОИПП при анализе корригирующей активности КЖАГ и белков КЖАГ на динамику биохимических маркеров острой ишемии печени, формирование гуморального и клеточного иммунитета, нарушения функциональной и метаболической активности нейтрофилов периферической крови, внутриэритроцитарного метаболизма, активацию свободно-радикального окисления, по степени возрастания эффективности установлена следующая последовательность: КЖАГ; неразделенные белки КЖАГ; белки КЖАГ с ММ менее 130 кДа. Применение белков КЖАГ с ММ более 130 кДа не оказывало корригирующего эффекта.
В литературе имеется большое количество экспериментальных и клинических работ, по-
священных коррекции нарушений функции печени, есть исследования по оксидантным, иммунным и эритроцитарным нарушениям и их коррекции при патологии печени [1, 24, 26].
Однако проблема фармакологической терапии заболеваний печени далека от разрешения, а неудовлетворительные результаты лечения острых и хронических поражений печени, приводящих к развитию печеночной недостаточности, во многом связывают с отсутствием эффективной патогенетической терапии, в связи с чем перспективным направлением в лечении таких состояний является применение клеточных технологий [7, 24, 25], и в том числе - использование изолированных ксено- и аллогенных гепа-тоцитов. В настоящее время механизм действия гепатоцитов, применяемых для коррекции нарушений при гепатопатиях нельзя считать окончательно выясненным. Трудно представить, что лечебный эффект связан с органоза-мещающей функцией трансплантируемых клеток и, вероятно, он обусловлен гуморальными и молекулярными механизмами, отвечающими за активацию функциональной активности гепа-тоцитов реципиента и регенерацию, путем выработки регуляторных пептидов, среди которых ведущая роль принадлежит факторам роста [15, 21, 25].
Полученные нами результаты подтверждают вышеизложенное и мы считаем, что перспективным продолжением работы является очистка белков культуральной жидкости алло-генных гепатоцитов с выделением концентрированной активной субстанции белковой природы с дальнейшим созданием на этой основе препарата и его доклиническое испытание на экспериментальных моделях патологии печени.
КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ
Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.
ИСТОЧНИКИ ФИНАНСИРОВАНИЯ Авторы заявляют об отсутствии финансирования.
СООТВЕТСТВИЕ ПРИНЦИПАM ЭТИКИ
Исследование одобрено Региональным этическим комитетом. Протокол заседания РЭК № 9 от 9 ноября 2015 года.
ЛИТЕРАТУРА/REFERENCES
1. Антоненко ОЖ Токсические поражения печени: пути фармакологической коррекции. Медицинский совет. 2013; 6: 45-51 [Antonenko O.M. Toxic liver damage: ways of pharmacological correction Meditsinskiy sovet. 2013; 6: 45-51 (in Russ.)]
2. Галстян Г.М., Макарова П.М., Паровичникова Е.Н. Применение мультипотентных мезенхимальных стволовых клеток для лечения сепсиса. Анестезиология и реаниматология. 2015; 60(5): 59-65 [Gals-tyan Gennadiy M., Makarova P.M., Parovichniko-va E.N. Use of mesenchymal stromal stem cells for the treatment of sepsis. Anesteziologiya i reanima-tologiya. 2015; 60(5): 59-65 (in Russ.)]
3. Гараев Г.Ш., Гафарова Ж.Р., Джафарова Р.Э. Изменения состава белков в крови в период синдрома ишемии-реперфузии, моделированного нарушением кровотока в печени. Вестник российской военно-медицинской академии. 2018; 2 (62): 110-114 [Garayev G.Sh., Gafarova J.R., Jafarova R.E. Changes in the composition of proteins in the blood during the period of ischemia-reperfusion syndrome, modeled by a violation of blood flow in the liver. Vestnik rossiyskoy voyenno-meditsinskoy akademii. 2018; 2(62): 110-114 (in Russ.)]
4. Евсеева М.Н., Шептулина А.Ф., Рубцов Ю.П. Перспективы создания аутологичных гепатоцитов для лечения печеночной недостаточности. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2015; 25(6): 49-57 [Evseyeva M.N., Sheptulina A.F., Rubtsov Yu.P. Prospects of autologous hepatocytes for liver failure treatment. The Russian Journal of Gastroenterology, Hepatology, Colo-proctology. 2015; 25(6): 49-57 (in Russ.)]
5. Зинкин В.Ю., Годков М.А. Способ количественной оценки кислородзависимого метаболизма нейтрофильных гранулоцитов человека. Клиническая лабораторная диагностика. 2004; (8): 26-29 [Zinkin V. Yu., Godkov M.A. A method of quantitative evaluation of oxygen-dependent metabolism of human neutrophil granulocytes. Klinicheskaya la-boratornaya diagnostika. 2004; (8): 26-29 (in Russ.)]
6. Конопля А.И., Литвинова Е.С., Быстрова Н.А., Разумова М.С., Чуева Т.В. Иммунометаболиче-ские нарушения при экспериментальном остром токсическом поражении печени: коррекция ксе-ногенными и аллогенными гепатоцитами. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2016; 18(2): 91-98 [Konoplya A.I., Litvinova E.S., By-strova N.A., Razumova M.S., Chuyeva T.V. Immune and metabolic disturbances in experimental acute toxic hepatitis: correction by xenogenic and allogenic hepatocytes. Russian journal of transplantology and artificial organs. 2016; 18(2): 91-98 (in Russ.)]
7. Лепехова С.А., Апарцин К.А., Искра А.И. Роль фактора роста гепатоцитов в регенерации печени. Фундаментальные исследования. 2014;7-1: 187192 [Lepekhova S.A., Apartsin K.A., Iskra A.I. Role of hepatocyte growth factor in liver regeneration. Fun-damental'nyye issledovaniya. 2014; 7-1: 187-192 (in Russ.)]
8. Лямина Н.П., Карпова Э.С., Котельникова Е.В. Адаптация к гипоксии и ишемическое прекон-диционирование: от фундаментальных исследований к клинической практике. Клиническая медицина. 2014; 92(2): 23-29 [Lyamina N.P., Kar-pova E.S., Kotelnikova E.V. Adaptation to hypoxia and ischemic preconditioning: from basic research to
clinical. Klinicheskaya meditsina. 2014; 92(2): 23-29 (in Russ.)]
9. Mедведева С.Ю., Mухлынина Е.А., Булавинце-ва Т.С., Данилова И.Г. Участие фактора стволовой клетки в репаративной регенерации печени при ее токсическом повреждении. Медицинская иммунология. 2015; 17(S): 32 [Medvedeva S.Yu., Mukhlynina E.A., Bulavintseva T.S., Danilova I.G. Part of the factor of stem cells in reparative regeneration of the liver in its toxicity. Meditsinskaya immu-nologiya. 2015; 17(S): 32 (in Russ.)]
10. Николаев С.Б., Быстрова Н.А., Лазаренко В.А., Конопля А.И. Иммунометаболические нарушения в условиях гипоксии и их фармакологическая коррекция. Курск: Издательство ГОУ ВПО ^My Рос-здрава России, 2010. 226 c. [Nikolayev S.B., By-strova N.A., Lazarenko V.A., Konoplya A.I. Im-munometabolic disorders in hypoxia and their pharmacological correction. Kursk: Izdatel'stvo GOU VPO KGMU Roszdrava Rossii, 2010. 226 p. (in Russ.)]
11. Онищенко Н.А., Люндуп А.В., Газизов ИЖ, Де-ев Р.В., Шагидулин M^., Крашенинников M.E., Аврамов П.В. Двухфазная динамика воздействия мезенхимальных мультпатентных стромальных клеток (MMOT) костного мозга на печень при моделировании фиброзирующего гепатита. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2011; 13(3): 51-58 [Onishchenko N.A., Lyund-up A.V., Gazizov I.M., Deev R.V., Shagidulin M.Y., Krasheninnikov M.E., Avramov P.V. Two-phase dynamics of bone marrow multipotent mesenchymal stromal cells (MMSC) action on liver at modeling of fibrotic hepatitis. Russian journal of transplantology and artificial organs. 2011; 13(3): 51-58 (in Russ.)]
12. Разумова M.C., Литвинова Е.С., Быстрова Н.А., Локтионов А.Л. Функционально-метаболическая активность нейтрофилов периферической крови при использовании ксено-, аллогенных гепато-цитов, фибробластов и их культуральной жидкости при экспериментальном остром токсическом поражении печени. Системный анализ и управление в биомедицинских системах. 2015; 14(4): 714720 [Razumova M.S., Litvinova E.S., Bystrova N.A., Loktionov A.L. Functional and metabolic activity of neutrophils of the peripheric blood when using kseno-, allogenic hepatocytes, fibroblasts and their cultural liquids at the experimental acute toxic hepatitis. Sistemnyy analiz i upravleniye v biomed-itsinskikh sistemakh. 2015; 14(4): 714-720 (in Russ.)]
13. Салиенко А.А., Хубутия M.Ш., Чжао А.В., Джагра-ев К.Р., Андрейцева О.И., Журавель С.В., Сют-кин В.Е. Трансплантация печени как радикальный метод лечения конечных стадий заболеваний печени. Практическая медицина. 2010; 8(47): 13-19 [Khubutia M.Sh., Zhao A.V., Dzhagraev K.R., Andreytseva O.I., Zhuravel S.V., Salienko A.A., Syutkin B.E. Liver transplantation as a radical treatment for end-stage liver disease. Prakticheskaya meditsina. 2010; 8(47): 13-19 (in Russ.)]
14. Сухоруков В.П., Булдаков А.В, Mашковцев О.В. Сравнительное изучение морфологических изменений ткани печени под воздействием острой ишемии и введении в ишемизированную печень
различных лекарственных средств. Новые технологии, методы диагностики, лечения, профилактики. Вестник Санкт-Петербургской государственной медицинской академии им. И.И. Мечникова. 2009; 1(30): 78-81 [Sukhorukov V.P., Bulda-kov A.V, Mashkovtsev O.V. Comparative study of morphological changes in liver tissue under the influence of an acute ischemia and introduction of various medical agents into the ischemic liver. Vestnik Sankt-Peterburgskoy gosudarstvennoy meditsinskoy akademii im. I.I. Mechnikova. 2009; 1(30): 78-81 (in Russ.)]
15. Титов В.Т. Болезни печени. В кн.: Клиническая биохимия. Ткачук В.А., под ред. Mосква: ГОЭТАР-Mедиа. 2006. С. 361-371. [Titov V.T. Liver disease. In: Clinical biochemistry. Tkachuk V.A., editor. Moscow: GOETAR-Media, 2006. P. 361-371 (in Russ.)]
16. Умбаев Б.А., Аскарова Ш.Н., Шалахметова ТЖ, Цой А.К., Буланин Д.С. Внутрибрюшинная трансплантация аллогенных гепатоцитов крысам с индуцированным токсическим циррозом печени. Вестник КазНУ. Серия экологическая. 2014.; 1(2-40): 261-270 [Umbayev B.A., Askarova Sh.N., Sha-lakhmetova T.M., Tsoy A.K., Bulanin D.S. Intraperi-toneal transplantation of hepatocytes allogenic rats with induced toxic liver cirrhosis. Vestnik KazNU. Seriya ekologicheskaya. 2014.; 1(2-40): 261-270 (in Russ.)]
17. Уразметова M^., Хаджибаев Ф.А., Mирзаку-лов А.Г. Анализ показателей иммуногенеза при алло- и ксенотрансплантации эмбриональных гепатоцитов. Вестник экстренной медицины. 2018; 11(2): 57-63 [Urazmetova M.D., Khadzhibaev F.A., Mirzakulov A.G. The analysis of the indices of immunogenesis in ALLO - and xenotransplantation of embryonic hepatocytes. Vestnik ekstrennoy meditsiny. 2018; 11(2): 57-63 (in Russ.)]
18. Федовеева В.Н., Порядин Г.В., Ковальчук Л.В., Че-редеев А.Н., Коган В.Ю. Руководство по иммунологическим и аллергологическим методам в гигиенических исследованиях. Mосква: Промедэк, 1993. 319 с. [Fedoveyeva V.N., Poryadin G.V., Ko-val'chuk L.V., Cheredeyev A.N.; Kogan V.Yu. Guidance on immunological and allergic methods in hygienic studies. Moscow: Promedek, 1993. 319 p. (in Russ.)]
19. Ходосовский M.fr Коррекция окислительных повреждений при синдроме ишемии-реперфузии печени. Журнал Гродненского государственного медицинского университета. 2016; 4(56): 20-25 [Khodosovsky M.N. Correction of oxidative damages during hepatic ischemia-reperfusion syn-
drome. Zhurnal Grodnenskogo gosudarstvennogo med-itsinskogo universiteta. 201б; 4(5б): 20-25 (in Russ.)]
20. Шагидулин M^., Онищенко H.A., ^ашенни-ков M^. Трансплантация гепатоцитов как метод лечения печеночной недостаточности: экспериментальный и клинический опыт. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2010; 12(4): 5З-б0 [Shagidulin M.Y., Onishchenko N.A., Krasheninnikov M.E. Transplantation of hepatocytes as the method of treatment of liver failure: experimental and clinical experience. Russian journal of transplantology and artificial organs. 2010; 12(4): 5З-б0 (in Russ.)]
21. Donadon M., Molinari A.F., Corazzi F., Rocchi L., Zito P., Cimino M., Costa G., Raimondi F., Torzilli G. Pharmacological Modulation of Ischemic-Reperfusion Injury during Pringle Maneuver in Hepatic Surgery. A Prospective Randomized Pilot Study. World J Surg. 201б; 40(9):2202-2212.
DOI: 10.1007/S00268-016-3506-1.
22. Liu K.X., Kato Y., Matsumoto K. Characterization of the enhancing effect of protamine on the prolifera-tive activity of hepatocyte growth factor in rat hepatocytes. Pharm Res. 2009; 26(4):1012-1021. DOI: 10.1007/s11095-008-9810-1.
23. Li J., Li R.J., Lv G.Y., Liu H.Q. The mechanisms and strategies to protect from hepatic ischemia-reperfusion injury. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2015; 19(11): 2036-2047.
24. Manzini G., Kremer M., Houben P., Gondan M., Bech-stein W.O., Becker T., Berlakovich G.A., Friess H., Guba M., Hohenberger W., Ijzermans J.N.M., Jonas S., Kalff J.C., Klar E., Klempnauer J., Lerut J., Lippert H., Lorf T., Nadalin S., Nashan B., Otto G., Paul A., Pirenne J., Pratschke J., Ringers J., Rogiers X., Schilling M.K., Seehofer D., Senninger N., Settmacher U., Stippel Karlheinz Tscheliessnigg D.L., Ysebaert D., Binder H., Schemmer P. Reperfusion of liver graft during transplantation: techniques used in transplant centres within Eurotransplant and meta-analysis of the literature. Transpl Int. 2013; 26(5): 508-516. DOI: 10.1111/tri.12083.
25. Reiling J., Lockwood D.S.R., Simpson A.H., Campbell C.M., Bridle K., Santrampurwala N., Britton L.J., Crawford D.H.G., Dejong C.H.C., Fawcett J. Urea production during normothermic machine perfusion: Price of success? Liver Transpl. 2015; 21(5):700-703. DOI: 10.1002/lt.24094.
26. Suyavaran A. Preconditioning methods in the management of hepatic ischemia reperfusion- induced injury: Update on molecular and future perspectives. Hepatol Res. 2017 Jan; 47(1): 31-48. DOI: 10.1111/hepr.12706.
Поступила в редакцию 01.12.2018 Подписана в печать 21.03.2019
Для цитирования: Литвинова Е.С., Конопля А.И., Дудка В.Т. Эффективность белков аллогенных гепатоцитов в коррекции иммунометаболических нарушений при остром ишемическом поражении печени. Курский научно-практический вестник «Человек и его здоровье». 2019;(1):103-113. DOI: 10.21626^Шк/2019-1/12.
EFFECTIVENESS OF PROTEINS OF ALLOGENEIC HEPATOCYTES IN THE CORRECTION OF IMMUNOMETABOLIC DISORDERS IN ACUTE ISCHEMIC LIVER DAMAGE
© Litvinova E.S., Konoplya A.I., Dudka V. T.
Kursk State Medical University (KSMU)
3, K. Marx st., Kursk, Kursk region, 305041, Russian Federation
Objective. The aim of the study was to establish the effectiveness of the culture fluid of allogeneic hepatocytes (CFAH) and proteins isolated from them in correcting metabolic and immune disorders in acute ischemic liver damage.
Material and methods. The study has been conducted on 105 healthy mature Wistar rats. Acute ischemic liver damage (AILD) was induced by cross clamping of the hepatoduodenal ligament for 20 minutes. Isolated allogeneic hepatocytes from newborn animals were used to prepare a culture fluid from which proteins were isolated. The culture fluid of allogeneic hepatocytes (CFAH) and their proteins obtained were administered with the start of modeling acute liver ischemia five times (with a 24-hour interval) intraperitoneally to rats with AILD at the rate of 5 mg/kg.
Results. Acute liver ischemia causes the development of biochemical syndromes of the liver damage (cytolysis, intra-and extrahepatic cholestasis, toxic damage, insufficiency of synthetic processes) activates the processes of lipid peroxidation, disturbs intra-erythrocyte metabolism, and causes the development of oxidative stress and suppression of forming the adaptive and innate immunity. Introduction of CFAH, undivided CFAH proteins or CFAH proteins with molecular mass (MM) less than 130 kDa to animals with AILD normalizes or corrects the studied biochemical and immunological parameters. CFAH proteins with MM more than 130 kDa do not have such effects.
Conclusion. During the analysis of CFAH or CFAH proteins corrective activity on the dynamics of biochemical markers of AILD, formation of humoral and cellular immunity, impaired functional and metabolic activity of peripheral blood neutrophils, intraerythrocyte metabolism, activation of free radical oxidation, the following sequence has been established (according to increasing the effectiveness): the lack of this activity in CFAH proteins with MM more than 130 kDa; the presence of normalizing and correcting activity of: CFAH - CFAH undivided proteins - CFAH proteins less than 130 kDa. Keywords: immunometabolic disorders; culture proteins of allogeneic hepatocytes; acute liver ischemia.
Litvinova Ekaterina S. - PhD in Medicine, Associate Professor of Department of Pathological Anatomy, KSMU, Kursk, Russian Federation. E-mail: kat roma@mail.ru (correspondence author)
Konoplya Alexander I. - DM, Professor, Honored Scientist of the Russian Federation, Head of Department of Biological Chemistry, KSMU, Kursk, Russian Federation. ORCID iD: 0000-0003-4748-8405. E-mail: konoplya51@mail.ru
Dudka Victor T. - PhD in Medicine, Associate Professor, Head of Department of Pathological Anatomy, KSMU, Kursk, Russian Federation. E-mail: dudkaviktor@rambler.ru
CONFLICT OF INTEREST CONFORMITY WITH THE PRINCIPLES OF ETHICS
The authors declare the absence of obvious and potential The study was approved by the Ethical Committee under
conflicts of interest related to the publication of this article. Kursk state medical university (Protocol No. 9 of 09.11.2015).
SOURCE OF FINANCING The authors state that there is no funding for the study.
Received 01.12.2018 Accepted 21.03.2019
For citation: Litvinova E.S., Konoplya A.I., Dudka V.T. Effectiveness of proteins of allogeneic hepatocytes in the correction of immunometabolic disorders in acute ischemic liver damage. Kurskiy nauchno-prakticheskiy vestnik "Chelovek i ego zdorov'ye" = Kursk Scientific and Practical Bulletin "Man and His Health". 2019;(1):103-113. DOI: 10.21626/vestnik/2019-1/12.
