CC BY
17
обеспечить выживаемость животных, а также полноценное осуществление их непосредственного назначения — воспроизводительной функции.
Физиологические показатели баранов-производителей породы австралийский меринос
•Баран № 2.823/А31906, ПЗ Уадри; " Баран № 2.422/А31909, ПЗ Уадри.
К сожалению, не было возможности проследить гормональный статус животных до транспортировки и сразу после прибытия в хозяйство, т.к. условия карантина жестко регламентируют проведение любых мероприятий в это время. Тем не менее значительное содержание кортизола через 1 мес после завоза (таблица) говорит о том, что шоковая фаза стресса носила длительный изнуряющий характер. Известно, что изменение концентрации этого адаптационного гормона соответствует динамике развития и затухания стрессовой реакции.
В начале адаптационного периода у животных выявили лейкоцитоз, хотя фагоцитарная активность и фагоцитарный индекс лейкоцитов были низкими, что свидетельствует о сильном угнетении клеточного иммунитета. Через месяц после завоза баранов их лейкограммы отражали картину, характерную для стресс-реакции: понижение числа базофилов, эозинофилов, моноцитов, сдвиг нейтрофило-лимфоцитар-ного соотношения в пользу нейтрофилов, выраженное старение последних. Через 2 мес после начала адаптации у баранов началась мобилизация приспособительных механизмов иммунной системы. Еще через 2 мес количество лейкоцитов у животных снизилось до верхней границы нормы, а интенсивность фагоцитоза возросла до нормального уровня, что говорит о восстановлении защитной системы крови.
Анализ спермы привезенных австралийских мериносов показал, что она по многим параметрам уступает сперме баранов ставропольской породы из разных хозяйств края: по объему — на 10,9...19,7 %, по концентрации спермиев — на 6,1... 12,2 %, по их подвижност — на 2,5...4 %.
Подводя итоги, можем сказать, что, если судить по определявшимся физиологическим показателям, то процесс адаптации австралийских мериносов происходил тяжело и длительно (обычно стрессовая реакция у животных заканчивается уже через 8...24 дн после транспортировки).
Показатели Время после завоза, мес
1 2 4
* ** * ** * **
Гормональный профиль
Кортизол, 235,7 209,2 174,3 159,6 118,9 99,2
нмоль/л
Тестостерон, 11,5 10,9 15,2 18,4 15,6 15,75
нмоль/л
Иммунные показатели
Лейкоциты, 19,6 20,3 18,3 16,9 14,1 11,7
107л
Фагоцитарная 13,3 14,2 27,7 15,5 37,3 39,3
активность,%
Фагоцитарный 1,6 2,8 4,3 5,9 9,2 8,0
индекс
Качество спермы
Объем, _ _ 1,14 ± 1,07 ± 1,02 ± 1.34 ±
мл 0,09 0,07 0,05 0,09
Концентрация, ;—■ —с 4,06 + 3,31 ± 3,82 ± 3,3 ±
млрд/мл 0,08 0,08 0,09 0,05
Подвижность, — — 8,0 ± 8,28 ± 8,08 ± 8,28 ±
баллы 0,01 0,06 0,04 0,08
Динамика половых гормонов у зааненских коз с естественным и индуцированным эструсом
М.М. Айбазов, П.В. Трубникова, Н.Д.Меликов, СНИИЖК (г. Ставрополь)
Ключевые слова: биотехнология, гормоны, коза, половой цикл
Сокращения: ЛГ — лютеинизирующий гормон; ПГ — прогестерон; ФСГ — фолликулостимулирующий гормон; Э — эстрадиол
Биотехнологическими методами воспроизводства животных можно эффективно пользоваться только на основе знания механизмов регулирования репродуктивных функций, в т.ч. гормональных.
Основная цель проведенных исследований состояла в изучении флюктуации уровня половых гормонов (ПГ, Э, ФСГ и ЛГ) в сыворотке крови зааненских коз в период половой охоты.
В опыте использовали 10 половозрелых коз со спонтанным и индуцированным эструсом. У животных в течение 20 дн брали пробы крови из яремной вены. В них определяли содержание ПГ, Э, ФСГ и ЛГ методом иммуноферментного анализа на приборе «Униплан» с помощью стандартных наборов фирмы «Вектор-Бест» (Россия).
В группе животных, обработанных эстрофаном, характерные изменения уровня ПГ в крови проявились уже в первые 1...2 дня после введения препарата. Через 48 ч после его инъекции концентрация ПГ резко снижалась с 3,3 до 1 нг/мл. Она продолжала падать в течение последующих' 2 дн, достигнув 0,8...0,7 нг/мл. В последующие дни концентрация ПГ в крови начала быстро повышаться и к моменту 2-й инъекции эстрофана (11-й день) достигла 4,2 нг/мл. Колебания уровня ПГ в крови говорили о том, что эстрофан индуцировал регрессию имевшихся в яичниках желтых тел, вместо которых образовались новые желтые тела, обеспечившие быстрый подъем концентрации гормона (рис. 1).
Концентрация Э в сыворотке крови коз всех групп колебалась в пределах от 15 до 48 пг/мл. Более низкий уровень Э наблюдали при увеличении концентрации ПГ, и наоборот, он возрастал при снижении функции желтых тел.
ФСГ, формируясь в передней доле гипофиза, у коз при спонтанном эструсе поступает в кровь непрерывно. Однако его концентрация в крови на разных фазах (лютеиновой или фолликулярной) полового цикла имеет волнообразный характер. Концентрация ФСГ в сыворотке крови коз зааненской породы в начале спонтанного полового цикла равнялась 72,6 ±
Прогестерон, нг/мл
Эстрадиоп, пг/мп_
117,4
106,4
-И 80 ■160 -■140 ■120 ■100 -■80 ■60 -40 ■20 -0
146,8
161,5
165,2
20 Г
15 --
Рис. 2. Уровень половых гормонов у коз при спонтанном эструсе
2,2 нг/мл, на 5-й день эструса снижалась до 21,4 ± 0,8 нг/мл, затем наблюдали резкий ее подъем, и на 10-й день она достигала уровня 106,0 ± 0,5 нг/мл. На 15-й день эструса содержание ФСГ в крови было в пределах 80,5 ± 1,5 нг/мл (второй спад, рис. 2). На фолликулярной фазе цикла (18...19-й день) концентрация ФСГ в крови составила 150,5 ±1,9 нг/мл, что в 2 раза выше исходного уровня. Следовательно, с уменьшением количества ПГ в крови коз создаются оптимальные условия для предовуляторного выброса ФСГ и роста фолликулов.
Уровень ЛГ в крови коз во время эструса также менялся волнообразно. Если в начале цикла он составлял 20,5 ± 1,6 нг/мл, то на 5-й день эструса его концентрация снизилась почти в 3 раза (6,8 ± 0,9 нг/мл). На 10-й день цикла (конец лютеиновой фазы) уровень Л Г в крови достиг 29,6 ±1,5 нг/мл. На следующей стадии цикла (15-й день) произошел резкий спад концентрации ЛГ, но она оставалась вдвое более высокой, чем на 5-й день эструса, и составляла 15,5 ± 1,3 нг/мл.
Максимальное содержание ЛГ (34,5 ± 1,2 нг/мл, что в 1,7 раза выше чем в 1-й день) в крови коз установили в фолликулярную фазу цикла (18... 19-й день). Таким образом, у коз за-аненской породы при спонтанном эструсе трижды происходили выбросы ЛГ: в 1-й, на 10...11-й и на 18...19-й дни цикла.
В первые 1...2 дня после введения животным эстрофана наблюдали увеличение уровня ФСГ и ЛГ с 60,4 до 128,2 нг/мл и с 15,2 до 30,8 нг/мл соответственно. Такие изменения концентрации ФСГ и ЛГ были, по всей видимости, обусловлены развитием фолликулов и последующей овуляцией. Затем произошло снижение содержания в крови обоих гормонов более чем в 2 раза. К концу охоты перед овуляцией концентрация ФСГ и ЛГ в сыворотке достигла 57,7 и 12,4 нг/мл, а после овуляции — 18,5 и 5,0 нг/мл соответственно. Уровень ФСГ и ЛГ в последующие дни полового цикла не зависел от гормональной обработки и был таким же, как при спонтанном эструсе.
¿»<ш| dl
• Иммунизация молодых баранов конъюгатом гонадо-тропин-рилизинг гормона с дифтерийным или столбнячным токсином снижает образование тестостерона и фолликуло-стимулирующего гормона, что ведет к угнетению сперматогенеза. Этим способом можно получать баранов-пробников [Earl E.R. et al. Vaccine, 2006, 24, 16, 3172-3183].
• Сортировка спермиев баранов позволяет планировать пол приплода. При ее проведении с использованием свежей спермы получают более жизнеспособные и подвижные спермин, у них реже обнаруживают дефекты, чем при сортировке замороженной спермы [de Graaf S.P. et al. Reprod Fértil Dev, 2006, 18, 8, 867-874].
КАЛЕЙДОСКОП
• Добавление в размороженную сперму баранов 10 % бычьего сывороточного альбумина или 15 % желтка куриных яиц значительно повышает результативность искусственного осеменения [Fukui Y. et al. J Reprod Dev, 2007, в печати]. Применение с той же целью плазмы спермы оказалось неэффективным [Orneara С.М. et al. Theriogenology, 2007, 67, 7, 126 - 128].
• Для предотвращения пероксидации липидов мембран спермиев, отрицательно влияющей на их подвижность, жизнеспособность и оплодотворяющую способность, в сперму после размораживания добавляли трегалозу, таурин, цистеамин или гиалуронан. Эти добавки не оказали существенного влияния на качество спермы [Bucak M.N. et al. Theriogenology, 2007, 67, 5, 1060 - 1067].
«РВЖ. СХЖ» Специальный выпуск. Май - 2007
39
