CC BY
36
5. Готовский, Д.Г. Использование термовозгонных шашек для санации животноводческих помещений / Д.Г. Готовский, А.А. Карташова // Ученые записки ВГАВМ. -Витебск, 2011. - Т. 47. - Вып. 2. - С. 268-271.
6. Готовский, Д.Г. Новый малотоксичный препарат для дезинфекции животноводческих помещений / Д.Г. Готовский // Актуальные проблемы интенсивного развития животноводства: сб. науч. тр. / БГСХА. - Горки, 2010. - Вып. 13. - Ч. 2. - С. 225-231.
7. Кривенок, Л.Л. Ветеринарно-санитарная оценка продуктов убоя бычков при санации помещений в присутствии животных дезинфицирующим препаратом «Кри-окс» / Л.Л. Кривенок // Эпизоотология. Иммунобиология. Фармакология. Санитария. -2012. - № 1. - С. 63-68.
8. Применение дезинфицирующего средства «Бест-хлор» для санации свиноводческих помещений / Т.Н. Каменская [и др.] // Эпизоотология. Иммунобиология. Фармакология. Санитария. - 2011. - № 1. - С. 59-62.
9. Сидоркин, В.А. Испытания дезинфицирующей активности препарата ГАН / В.А. Сидоркин, М.А. Улизко, О.А. Клищенко // Ветеринария. - 2008. - № 1. - С. 12-13.
10. Шакирова, И.В. Изучение токсичности Диксама на цыплятах / И.В. Шакиро-ва // Ветеринария. - 2007. - № 10. - С. 18-19.
УДК 619:576.895.131:636:612.015
ДИНАМИКА ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ И ГАЗОВОГО СОСТАВА КРОВИ У КРЫС, ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНО ИНВАЗИРОВАННЫХ ЯЙЦАМИ ASCARIS SUUM
И.М. РЯБИНКОВА, А.В. ПРИТЫЧЕНКО, И.П. КОШЕНОК УО «Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины» г. Витебск, Республика Беларусь, 210026
(Поступила в редакцию 17.01.2013)
Введение. В связи с повсеместной распространенностью аскариоза, полиморфизмом клинических проявлений, обусловливающим затруднения в диагностике, и недостатком данных о патогенетических механизмах развития болезни, вопросы эпизоотологии, прижизненной диагностики и терапии кишечных нематодозов свиней по-прежнему остаются актуальными для дальнейшего изучения.
Производство продуктов питания, особенно мяса, в разных странах мира всегда было и остается одним из приоритетных направлений развития сельского хозяйства. Мясная скороспелость свиней, короткий цикл воспроизводства стада, многоплодность свиноматок, высокая окупаемость корма и другие особенности разведения делают свиноводство наиболее выгодной отраслью сельского хозяйства.
Несмотря на достижения в области терапии и профилактики инвазионных болезней животных, распространение паразитозов свиней носит широкий характер. При концентрации в свиноводческих комплексах большого поголовья животных возрастает опасность быстрого распространения данных инвазий, встречающихся и в ассоциативной форме.
К числу часто регистрируемых среди свиней болезней относят ас-кариоз [7, 8].
Аскариоз свиней - хроническое гельминтозное заболевание, вызываемое нематодами Ascaris suum, молодые и половозрелые формы которых паразитируют в тонком кишечнике свиней, а личинки поражают внутренние органы (лимфузлы, легкие, печень), вызывая патологические изменения аллергического характера, эозинофильные инфильтраты в легких, бронхопневмонии, плевриты, нарушение дыхания.
Болезнь наносит большой экономический ущерб, который складывается из задержки роста и развития молодняка, нередко падежа, потери продуктивности у взрослых свиней. Наиболее восприимчивы поросята-сосуны и молодняк до 5-6-месячного возраста [11].
Аскариоз - это многофакторное заболевание, которое развивается как результат сложного взаимодействия между возбудителем, организмом животного и внешней средой.
Паразиты вызывают сенсибилизацию организма с последующим развитием аллергических реакций, механическое повреждение органов и тканей хозяина и нарушение их функций, различные воспалительные процессы, анемию. Они ухудшают всасывание пищевых веществ и витаминов, истощают иммунную систему, снижают резистентность организма. Отравляют его продуктами своей жизнедеятельности, отягощают течение других заболеваний, подготавливают почву для тяжелых инфекций и опухолевых процессов.
В патогенезе и клиническом проявлении аскариоза выделяют две фазы: раннюю - миграционную и позднюю - кишечную. В основе патогенеза ранней фазы болезни лежат сенсибилизация продуктами метаболизма личиночных стадий аскарид и травматизация тканей во время их миграции [1].
Как известно, кровь составляет внутреннюю среду организма, которая обеспечивает жизнедеятельность клеток, являясь посредником между ними и внешней средой. Поэтому по морфологическим и биохимическим изменениям крови можно судить о тех или иных патологических процессах, происходящих в организме. При кишечных гель-минтозах свиней со стороны гематологических показателей отмечается снижение резервной щелочности крови, изменение концентрации гемоглобина, эритроцитов, наступает эозинофилия, падает резистентность эритроцитов и комплиментарная активность сыворотки крови [2, 5, 6].
Анемия - это патологическое состояние, при котором уменьшено содержание гемоглобина в крови, чаще при одновременном снижении количества эритроцитов, что может быть вследствие абсолютного уменьшения числа эритроцитов или в силу их функциональной недостаточности в результате пониженного содержания в них гемоглобина. Как известно, продукты обмена гельминтов оказывают токсическое воздействие на печень, нервную систему и кроветворение. Среди заболеваний кроветворных органов наиболее частым является анемия.
В клинической практике распространена следующая классификация анемий: 1) анемии, обусловленные острой кровопотерей; 2) анемии вследствие нарушения продукции эритроцитов (апластические,
295
железодефицитные, мегалобластные, сидеробластные, анемии хронических заболеваний); 3) анемии вследствие повышенного разрушения эритроцитов (гемолитические). В настоящее время существует классификация анемий по данным автоматического анализа крови с учетом эритроцитарных индексов.
В настоящее время для проведения исследований крови в клинико-диагностических лабораториях Республики Беларусь используется значительное количество различных гематологических и газовых анализаторов.
Гематологические анализаторы позволяют не только автоматизировать процесс подсчета клеток крови, улучшить качество и точность измерений, но и получить дополнительные, высокоинформативные характеристики клеток крови. Наряду с привычными параметрами ручных методик (уровень гемоглобина, количество эритроцитов, тромбоцитов, лейкоцитов) автоматическими методами можно получить такие важные индексы, как MCV (средний объем эритроцита), MCH (среднее содержание гемоглобина в эритроците), MCHC (средняя концентрация гемоглобина в эритроците) [10].
Любая анемия приводит к снижению дыхательной функции крови и развитию кислородного голодания тканей. Гипоксия - типовой патологический процесс, возникающий при недостаточном снабжении тканей кислородом или при нарушении его утилизации в ходе биологического окисления. Синонимами понятия «гипоксия» являются: «кислородное голодание» и «кислородная недостаточность». Гипоксия является составной частью патогенеза (или патогенетическим фактором) очень многих заболеваний [3, 4, 9].
Для количественной оценки состояния кислородного режима используют ряд показателей: парциальное давление кислорода артериальной крови (РО2), парциальное давление углекислого газа артериальной крови (РСО2), насыщение (сатурация) гемоглобина кислородом артериальной крови (02SAT), концентрация бикарбонатов (НС03). Исследование газового состава артериальной крови - незаменимый метод диагностики метаболических нарушений.
Цель работы - изучить изменения гематологических показателей и газового состава крови у лабораторных крыс, экспериментально инва-зированных яйцами Ascaris suum.
Материал и методика исследований. Работа выполнена в Научно-исследовательском институте прикладной ветеринарной медицины и биотехнологии (государственная аккредитация № BY/112 02.1.0.0870) УО «Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины» в отделе клинической биохимии и иммунопатологии. Исследование проводили на лабораторных животных - крысах. Для этого было сформировано две группы (опытная и контрольная) по 10 животных в каждой. Животных опытной группы заражали внутрижелудочно в дозе 20 инвазионных яиц Ascaris suum на 1 г массы тела. Животные второй группы служили контролем.
296
Для определения динамики изменения исследуемых параметров крыс опытной и контрольной групп декапитировали на 30-й день.
Гематологическое исследование крови проводили при помощи автоматического гематологического анализатора «Abacus junior vet» (Австрия).
Были проведены исследования крови по следующим показателям: количество эритроцитов (обозначение на анализаторе RBS - red blood cells) подсчитывается в млн. или х1012/л, гемоглобин - основной компонент эритроцитов (HGB на анализаторе - hemoglobin) в г/л, средний объем эритроцита (MCV на анализаторе - mean corpuscular volume), среднее содержание гемоглобина в эритроците (МСН на анализаторе -mean corpuscular hemoglobin), средняя концентрация гемоглобина в эритроците (МСНС на анализаторе - mean corpuscular haemoglobin concentration), гематокрит (НТС на анализаторе - hematocrit), лейкоциты (WDC по анализатору) подсчитываются в х109/л.
Показатели газового состава и кислотно-основного состояния крови оценивали с помощью анализатора «Gastat-602i». Анализировали следующие показатели: рН, парциальное давление углекислого газа (РС02, мм рт. ст.), концентрацию бикарбоната (НСО3, ммоль/л), парциальное давление кислорода (РО2, мм рт. ст.), насыщение гемоглобина кислородом (S02, %).
Результаты исследований и их обсуждение. Полученные в ходе эксперимента данные позволяют судить о развитии признаков анемии и гипоксии у крыс в период миграции личинок Ascaris suum.
Из приведенных в табл. 1 данных видно, что у крыс, инвазирован-ных яйцами Ascaris suum, отмечалось достоверное увеличение количества эритроцитов на 38,56 % (Р<0,001), среднего объема эритроцитов -на 1,72 % (Р>0,05) и гематокрита - на 1,41 % (Р>0,05).
Таблица 1. Гематологические показатели крови опытных и контрольных крыс
Показатели крови Группы
контрольная опытная
Эритроциты (RBC), 1012/л 7,13±0,76 9,88±1,29***
Гемоглобин (HGB), г/л 163,3±8,40 153,84±22,09*
Гематокрит (HCT), % 41,39±4,86 58,36±7,78
MCV, фл 58,00±1,12 59,00±1,30
MCH, пг 23,04±3,59 15,03±1,66
MCHC, г/л 397,55±64,21 255,25±32,15***
Лейкоциты (WBC), 109/л 5,66±0,66 6,77±0,97**
*Р<0,05; **Р<0,01; ***Р<0,001.
Изменение исследуемых показателей характерно для развития реактивного эритроцитоза, обусловленного гипоксией. Снижение значения средней концентрации гемоглобина в эритроцитах (МСНС) у экспериментальных животных указывает на нарушение синтеза гемоглобина. В течение периода наблюдения у опытных крыс значение МСНС снизилось на 35,79 % (Р>0,05), уровень гемоглобина - на 5,79 % (Р<0,05), среднее содержание гемоглобина в эритроцитах (МСН) - на
34,76 % (Р>0,05) по сравнению с контрольной группой. Следовательно, можно утверждать, что аскариоз в стадии миграции личинок Ascaris suum проявляется не только признаками гипоксии, но и гипохром-ной анемии.
Возникновение кислородной недостаточности организма подтверждалось результатами исследования газового состава крови подопытных животных (табл. 2).
Таблица 2. Показатели газового состава крови опытных и контрольных крыс
Показатели крови Группы
контрольная опытная
РС02 (парциальное давление С02 ), мм рт. ст. 44,47±5,76 45,2±3,33
Р02 (парциальное давление 02), мм рт. ст. 29,28±1,95 31,37±1,73*
НС03 (концентрация бикарбоната), ммоль/л 38,08±52,88 22,61±1,28
02SAT (сатурация 02 ), % 93,23±2,05 83,81±3,19*
*Р<0,05.
Увеличение парциального давления углекислого газа на 1,64 % (Р>0,05) и парциального давления кислорода на 7,13 % (Р<0,05) является компенсаторной реакцией организма при метаболических сдвигах. Уменьшение концентрации бикарбоната на 40,62 % (Р>0,05) указывает на развитие метаболического ацидоза, обусловленного увеличением количества неорганических кислот, что, в свою очередь, вызывает дефицит оснований. Снижение на 10,10 % (Р>0,05) степени насыщения (сатурация) гемоглобина крови кислородом также является признаком гипоксии.
Заключение. Таким образом, у экспериментально зараженных крыс яйцами Ascaris suum в период развития личиночной стадии отмечается возникновение и развитие признаков метаболического ацидоза, гипоксии и анемии организма хозяина.
ЛИТЕРАТУРА
1. Акбаев, М.Ш. Патогенез при желудочно-кишечных гельминтозах животных / М.Ш. Акбаев // Матер. науч. сессии Россельхозакадемии. - М., 1999. - Т. 2. - С. 56-59.
2. Антонов, Б.И. Лабораторные исследования в ветеринарии: справочник / Б.И. Антонов. - М.: Наука, 1991. - 287 с.
3. Архипенко, Ю.В. Роль про- и антиоксидантных факторов при адаптации к различным видам гипоксии / Ю.В. Архипенко, Т.Г. Сазонтова // Кислород и свободные радикалы: тез. докл. Междунар. симп. - Гродно, 1996. - С. 7-8.
4. Асланова, И.Р. Некоторые эритроцитарные показатели у больных хронической гипоксией различного генеза / И.Р. Асланова // Клиническая медицина. - 1991. -Т. 69. - № 4. - С. 56-58.
5. Блинов, В.А. Основы клинической биохимии человека и животных / В.А. Блинов. - Саратов: Приволж. книж. изд-во, 1996. - 248 с.
6. Брезгинова, И.Т. Динамика гематологических и некоторых биохимических показателей крови у свиней при аскариозе / И.Т. Брезгинова // Сб. науч. тр. - Иваново, 1991. - Вып. 113. - С. 11-13.
7. Брезгинова, Т.И. Аскаридоз свиней в хозяйствах Центрального района Нечерноземья РФ: автореф. дис. ... канд. вет. наук: 03.00.19 / Т.И. Брезгинова // Иванов. с.-х. ин-т. - Иваново, 1995. - 21 с.
8. Горохов, В.В. Проблемы паразитарных болезней в современных условиях / В.В. Горохов // Ветеринария. - 1996. - № 7. - С. 7-8.
9. Корнеев, A.A. О механизме повреждающего действия гипоксии на дыхательную цепь и способах ее фармакологической коррекции / A.A. Корнеев, И.А. Комиссарова // Эксперим. и клинич. фармакол. - 1994. - № 1. - С. 45-47.
10. Миронова, И.И. Дифференциальная диагностика анемий с помощью гематологического анализатора / И.И. Миронова // Клиническая лабораторная диагностика. -1994. - № 3. - С. 5-11.
11. Никитин, И.Н. Экономическая эффективность ветеринарных мероприятий на свинокомплексах / И.Н. Никитин, Л.И. Иванов // Ветеринария. - 1990. - № 10. - С. 16-19.
УДК 619:616.98:579.873.21-07
ИЗУЧЕНИЕ СТАБИЛЬНОСТИ ТУБЕРКУЛИНА ОЧИЩЕННОГО ДЛЯ МЛЕКОПИТАЮЩИХ
А.Н. ПРИТЫЧЕНКО УО «Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины» г. Витебск, Республика Беларусь, 210026
(Поступила в редакцию 28.01.2013)
Введение. Проблема туберкулеза по-прежнему имеет приоритет, как в медицине, так и ветеринарии. Несмотря на большие успехи в борьбе с туберкулезом, эта болезнь остается, с одной стороны, самой изученной, с другой - загадочной болезнью 21 века. Это подтверждает статистика. Так, по данным ВОЗ, на нашей планете каждый третий житель инфицирован возбудителем туберкулеза, ежегодно от туберкулеза умирают сотни тысяч людей [1, 2, 5].
В ветеринарной медицине особое внимание уделяется туберкулезу крупного рогатого скота, что связано с биологическими свойствами возбудителя [4].
Одним из важнейших методов диагностики туберкулеза крупного рогатого скота является аллергическая диагностика с применением туберкулина очищенного для млекопитающих [3, 5, 6].
К концу 19 в. назрела необходимость принятия радикальных противотуберкулезных мер. В 1899 г. на VII Ветеринарном конгрессе разработаны рекомендации и поставлена одна из главных задач ветеринарной медицины - разрыв эпизоотической цепи за счет выявления и убоя больных животных, контроля туш, термической инактивации молока и мяса, охраны ферм и уничтожения резервуаров инфекции [13].
Нараставшая пандемия заставила проводить борьбу с туберкулезом крупного рогатого скота в национальных масштабах. В 1909 г. рекомендован переход от добровольности мероприятий к обязательной государственной борьбе с болезнью. Национальные программы были приняты в Голландии (1904), Австрии (1909), Германии (1912), Великобритании (1913), США (1917 г.) [8]. В них предусматривалось: выявление и убой животных с клиническими признаками болезни, компенсация убытков по убою животных, пастеризация молока от больных коров, создание национальных центров по борьбе с болезнью [12].
