CC BY
95УДК (619: 616.6):636.8
ДИАГНОСТИКА И ЛЕЧЕНИЕ ОСТРОГО ЦИСТИТА У КОШЕК
Сенчук И.В., кандидат ветеринарных наук, доцент;
Коваленко К.В., обучающийся Институт «Агротехнологическая академия» ФГАОУ ВО «Крымский федеральный университет имени В.И. Вернадского».
DIAGNOSIS AND TREATMENT OF ACUTE CYSTITIS IN CATS
Senchuk I.V., Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor; Kovalenko K.V., student; Institute «Agrotechnological academy» of the FSAEI HE «V.I. Vernadsky Crimean Federal University».
В статье приведены результаты клинической апробации препарата «Фуринайд» при комплексной терапии острого цистита у кошек. Установлено, что использование данного препарата ускоряет процесс выздоровления у животных, что подтверждается результатами лабораторного исследования мочи и мочевого осадка.
Ключевые слова: острый цистит, кошки, мочевина, креатинин, общий анализ мочи, мочевой осадок.
The article presents the results of clinical testing of the drug "Furinaid" in the complex therapy of acute cystitis in cats. It has been established that the use of this drug accelerates the recovery process in animals, which is confirmed by the results of laboratory tests of urine and urinary sediment.
Keywords: acute cystitis, cats, urea, creatinine, general urine analysis, urinary sediment.
Введение. Острый бактериальный цистит - воспалительное заболевание мочевого пузыря, вызванное негативным воздействием микрофлоры на слизистую мочевого пузыря. Данное заболевание редко встречается у молодых кошек, чаще оно наблюдается у взрослых и старых животных. По современным данным эта патология чаще регистрируется у самцов, чем у самок [1-3].
Как правило, причиной инфекционного процесса в мочевом пузыре служат бактерии кишечной или дистальной урогенитальной микрофлоры. Гематогенный путь возникновения инфекции встречается крайне редко [4-6].
В подавляющем большинстве случаев острый цистит вызывается монопатогеном, но в некоторых случаях причиной возникновения данной патологии служат два и более вида микробов. Самой распространённой бактерий, которую получается выделить из посевов мочи при проведении диагностики инфекционного цистита, является E.coli - от 39 до 59 %. Кроме этого, из посевов часто выделяются такие микроорганизмы как: Streptococcus (до 19 % случаев), Enterococcusfaecalis (до 27 % случаев) и Staphylococcusfelis (17-20 %). E. faecalis преимущественно выделяется из посевов, полученных от кошек с субклиническим течением заболевания (23 %)[7-9].
159
Самыми яркими клиническими признаками, указывающими на цистит у животного, являются: гематурия, поллакиурия, дизурия и мочеиспускания в неподходящих местах, что особенно заметно у кошек, приученных к лотку. Гематурия более характерна в конце мочеиспускания. При пальпации мочевого пузыряживотное ощущает беспокойство и боль [10,11].
Иногда отмечаются случаи бессимптомного течения заболевания. В таком случае патология выявляется случайно при выполнении общего анализа мочи [12,13].
Отмечается повышенный риск возникновения цистита у животных с сахарным диабетом [14].
Лечение острого цистита в обязательном порядке должно быть комплексным и направленным для коррекции всех звеньев патологического процесса, а не ограничиваться только противомикробными средствами [15-18].
Целью наших исследований являлась разработка методов диагностики и комплексного лечения острого бактериального цистита у кошек с применением препарата «Фуринайд».
Материал и методы исследований. Научная работа выполнялась на базе ветеринарной клиники «Крымский ветеринарный госпиталь» и лаборатории кафедры терапии и паразитологии факультета ветеринарной медицины Института «Агротехнологическая академия» ФГАОУ ВО «Крымский федеральный университет им. В.И. Вернадского».
Объектом исследования являлись кошки, больные острым бактериальным циститом.
Для достижения поставленной цели в период с 01 сентября 2019 года по 31 декабря 2020 года был проведён подбор кошек, больных острым циститом, которые поступили на приём в ветеринарную клинику. Изних были сформированы две группы - подопытная и контрольная, каждая из которых насчитывала по 5 животных.
Схема лечения кошек контрольной группы была следующей:
1. Синулокс 0,1 мл/кг, 1 раз в сутки, 7 дней подряд;
2. Мелоксивет - три дня подряд по следующей схеме: 0,2 мг/кг (0,1 мл/кг) при первой инъекции, 0,1 мг/кг (0,05 мл/кг) при второй и третьей инъекции.
3. Папаверин 1 мг/кг массы тела 2 раза в сутки 7 дней подряд.
Для лечения животных подопытной группы, кроме вышеперечисленных препаратов с сохранением доз и длительности применения, использовали препарат Фуринайд - 312 мг/гол/сутки, 14 дней подряд.
Животные обеих групп содержались на рационе Royal Canin Urinary.
Препарат Фуринайд представляет собой прозрачную светло-коричневую гелеобразную жидкость. Его действующее вещество - N-ацетилглюкозамин (12500 мг в 100 мл препарата), являющийся структурной единицей гликоза-мингликанов, принимающих участие в формировании защитной оболочки на слизистой оболочке мочевыводящих путей и мочевого пузыря. Способен уско-
160
рять процессы регенерации эпителия мочевого пузыря.
Отбор образцов крови проводился в начале, через трое и через семеро суток от начала лечения.
Общий анализ крови проводился с помощью ветеринарного гематологического анализатора Rayto Rt-7600s.
В крови определяли содержание общего белка, альбумина, мочевины, кре-атинина, ионов калия, натрия и хлора. Биохимический анализ крови осуществлялся с помощью анализатора FujirirmDRI-CHEM 4000^
Исследование мочи проводилось с помощью тест-полосок Урополиан-11.
Для дифференциальной диагностики бактериального цистита проводили изучение мочевого осадка с окраской с использованием набора реагентов «Ди-ахим-Уристейн». Моча отбиралась посредством цистоцентеза.
Для дополнительной верификации диагноза проводили ультразвуковое исследование при помощи УЗИ-сканера М^гау 26Уе1
Результаты и обсуждение. В начале лечения у кошек обеих групп отмечали угнетение, субфибрильную лихорадку, снижение аппетита, умеренное повышение частоты сердечных сокращений и дыхательных движений, поллакиурию. При пальпации мочевого пузыря у некоторых животных отмечали болезненность.
При общем анализе крови регистрировали лейкоцитоз и умеренную ней-трофилию при неизмененных других показателях.
При проведении УЗИ устанавливали хорошую визуализацию мочевого пузыря, форма - овоидная, расположение типичное, при умеренном наполнении жидкостью (60±5,2 мл), содержимое однородное, нормальной эхогенно-сти. Стенка мочевого пузыря диффузно утолщена (3,2±0,6 мм), особенно чётко утолщение визуализировалось в краниовентральном направлении. Как правило на дне визуализировали гиперэхогенный осадок, который предположительно образовался из-за протекающего воспалительного процесса. Объёмные новообразования и конкременты не просматривались.
Уже спустя три дня лечения в обеих группах наблюдалось выраженная тенденция к снижению количества лейкоцитов. К седьмому дню лечения число лейкоцитов находилось в пределах референсных значений, процентное соотношение нейтрофилов в лейкограмме также нормализовалось. Остальные показатели общего анализа крови также находились в пределах физиологической нормы в период лечения.
Данные по результатам биохимического анализа крови кошек при комплексной терапии цистита указаны в таблице 1.
161
Таблица 1. Биохимический анализ крови кошек во время лечения
цистита (М±т), (п=5)
Показатель Единица измерения Референсные значения Подопытная группа Контрольная группа
В начале лечения
Общий белок г/л 55-75 73,2 ± 2,42 72,3 ± 1,98
Мочевина ммоль/л 5,5-12,1 10,8 ± 2,20 11,1 ± 2,30
Креатинин мкмоль/л 40-180 108,3 ± 7,45 109,4 ± 8,15
Альбумин г/л 24-37 32,2 ± 0,48 31,8 ± 0,55
Калий ммоль/л 4,1-5,4 3,8 ± 0,11 3,9 ± 0,24
Натрий ммоль/л 143,0-152,0 139,7 ± 1,31 138,2 ± 1,13
Хлор ммоль/л 102,0-120,0 110,2 ± 1,09 112,1 ± 1,04
Через 3 дня после начала лечения
Общий белок г/л 55-75 72,1 ± 1,7 72,3 ± 1,55
Мочевина ммоль/л 5,5-12,1 9,9 ± 2,4 10,3 ± 2,2
Креатинин мкмоль/л 40-180 113,3 ± 7,98 114,2 ± 6,96
Альбумин г/л 24-37 31,8 ± 0,38 30,1 ± 0,61
Калий ммоль/л 4,1-5,4 4,09 ± 0,56 4,12 ± 0,61
Натрий ммоль/л 143,0-152,0 143,5 ± 1,84 142,8 ± 1,72
Хлор ммоль/л 102,0-120,0 112,2 ± 2,06 113,0 ± 3,08
Через 7 дней после начала лечения
Общий белок г/л 55-75 72,3 ± 1,22 73,1 ± 1,45
Мочевина ммоль/л 5,5-12,1 8,9 ± 1,10 9,0 ± 0,98
Креатинин мкмоль/л 40-180 113,0 ± 6,4 116,8 ± 8,1
Альбумин г/л 24-37 32,0 ± 0,30 31,3 ± 0,29
Калий ммоль/л 4,1-5,4 4,5 ± 0,41 4,4 ± 0,52
Натрий ммоль/л 143,0-152,0 145,4 ± 2,3 144,8 ± 2,1
Хлор ммоль/л 102,0-120,0 114,1 ± 1,71 114,5 ± 1,53
Из данных таблицы 1 следует, что в начале лечения у животных обеих групп не регистрировали изменений в показателях концентрации общего белка и альбуминов. Уровень мочевины и креатинина также не выходил за пределы нормативных значений. Наряду с этим отмечали понижение содержания ионов калия и натрия при сохраненном уровне ионов хлора.
Через три дня от начала лечения у животных обеих групп наблюдали ста-
162
билизацию содержания ионов калия и натрия - данные показатели находились на нижнем пределе физиологической нормы.
Через семь дней от начала лечения у животных обеих групп уровень ионов калия и натрия продолжал демонстрировать тенденцию к повышению: так уровень ионов калия возрос по сравнению с исходными показателями в подопытной группе на 13 %, концентрация ионов натрия увеличилась на 4,1 %; в контрольной группе данное увеличение составило 12,3 и 4,8 % соответственно.
Остальные параметры проявляли относительную стабильность.
Статистически достоверная разница между исследуемыми показателями отсутствовала на протяжении всего экспериментального периода.
Из литературных данных ясно, что постановка диагноза и контроль эффективности лечения острого цистита невозможен без исследования мочи, что было учтено при проведении наших исследований.
Данные исследования общего анализа мочи и мочевого осадка представлены в таблицах 2-3.
Таблица 2. Результаты общего анализа мочи кошек при лечении цистита (М±m), (п=5)
Показатель Единица измерения Подопытная группа Контрольная группа
В начале лечения
Плотность, г/см3 1,054±0,002 1,052 ± 0,003
Кислотность рН 6,5 ± 0,25 6,7 ± 0,28
Цвет визуально жёлтый жёлтый
Прозрачность визуально мутная мутная
Белок г/л 0,99 ± 0,05 0,92 ± 0,03
Глюкоза ммоль/л 0 0
Кетоновые тела ммоль/л 0 0
Уробилиноген ммоль/л 0,6 ± 0,44 0,8 ± 0,65
Биллирубин отсутствует отсутствует
Гемоглобин отсутствует отсутствует
Через 3 дня после начала лечения
Плотность, г/см3 1,040 ± 0,003 1,050 ± 0,006
Кислотность рН 6,5 ± 0,1 6,7 ± 0,3
Цвет визуально жёлтый жёлтый
Прозрачность визуально прозрачная мутная
Белок г/л 0,79 ± 0,03 0,87 ± 0,07
163
Продолжение таблицы 2
Глюкоза ммоль/л 0 0
Кетоновые тела ммоль/л 0 0
Уробилиноген ммоль/л 0,2 ± 0,11 0,4 ± 0,13
Биллирубин отсутствует отсутствует
Гемоглобин отсутствует отсутствует
Через 7 дней после начала лечения
Плотность, г/см3 1,035 ± 0,005 1,038 ± 0,002
Кислотность рН 6,5 ± 0,1 6,5 ± 0,1
Цвет визуально жёлтый жёлтый
Прозрачность визуально прозрачная прозрачная
Белок г/л 0,39 ± 0,2 0,49 ± 0,11
Глюкоза ммоль/л 0 0
Кетоновые тела ммоль/л 0 0
Уробилиноген ммоль/л 0 0,1 ± 0,14
Биллирубин отсутствует отсутствует
Гемоглобин отсутствует отсутствует
Через 14 дней после начала лечения
Плотность, г/см3 1,033 ± 0,002 1,037 ± 0,003
Кислотность рН 6,4 ± 0,2 6,6 ± 0,1
Цвет визуально жёлтый жёлтый
Прозрачность визуально прозрачная прозрачная
Белок г/л 0,31 ± 0,02 0,38 ± 0,01
Глюкоза ммоль/л 0 0
Кетоновые тела ммоль/л 0 0
Уробилиноген ммоль/л 0 0
Биллирубин отсутствует отсутствует
Гемоглобин отсутствует отсутствует
Из таблицы 2 видно, что в начале лечения у больных животных отмечали повышение плотности мочи, умеренную протеинурию, незначительное повышение показателя рН на фоне значительной мутности образцов.
В процессе лечения у кошек обеих групп происходили положительные изменения в моче (стабилизация плотности и значения рН, уменьшение степени
164
протеинурии), однаков подопытной группе данные изменения были более выражены.
Таблица 3. Результаты микроскопии осадка мочи кошек при лечении
цистита (М±т), (п=5)
Показатель Единица измерения Референсные значения Подопытная группа Контрольная группа
Перед началом лечения
Эпителий (плоский) в п/з 0-2 3,4 ± 0,3 3,2 ± 0,4
Эритроциты в п/з 0-5 6,4 ± 0,6 6,1 ± 0,5
Лейкоциты в п/з 0-5 16,1 ± 0,3 15,4 ± 0,5
Цилиндры в п/з 0-1 отсутствует отсутствует
Бактерии в п/з отсутствует Кокки ++ Кокки ++
Слизь визуально отсутствует + +
Неорганический осадок визуально отсутствует Струвиты + Струвиты +
Через 3 дня после начала лечения
Эпителий (плоский) в п/з 0-2 1,6 ± 0,2 2,2 ± 0,1
Эритроциты в п/з 0-5 3,4 ± 1,4 4,2 ± 0,6
Лейкоциты в п/з 0-5 10,2 ± 0,9 13,8 ± 1,2
Цилиндры в п/з 0-1 отсутствует отсутствует
Бактерии в п/з отсутствует Кокки + Кокки +
Слизь визуально отсутствует отсутствует +
Неорганический осадок визуально отсутствует Струвиты + Струвиты +
Через 7 дней после начала лечения
Эпителий (плоский) в п/з 0-2 0 1,6 ± 1
Эритроциты в п/з 0-5 0 1,1 ± 0,1
Лейкоциты в п/з 0-5 1,4 ± 0,2 5,2 ± 0,1
Цилиндры в п/з 0-1 отсутствует отсутствует
Бактерии в п/з отсутствует отсутствует отсутствует
Слизь визуально отсутствует отсутствует отсутствует
Неорганический осадок визуально отсутствует отсутствует Струвиты+
165
Продолжение таблицы 3
Через 14 дней после начала лечения
Эпителий (плоский) в п/з 0-2 0 0,8 ± 0,1
Эритроциты в п/з 0-5 0 0
Лейкоциты в п/з 0-5 0 0,8 ± 0,2
Цилиндры в п/з 0-1 отсутствует отсутствует
Бактерии в п/з отсутствует отсутствует отсутствует
Слизь визуально отсутствует отсутствует отсутствует
Неорганический осадок визуально отсутствует отсутствует отсутствует
Из приведенных в таблице 3 данных следует, что у кошек при цистите отмечали существенные отклонения в составе осадка мочи. Так у больных животных обнаруживали повышенное количество эритроцитов и лейкоцитов на фоне выявления кокковой микрофлоры, подтверждающей развитие цистита бактериальной этиологии.
В процессе наших научных изысканий было установлено, что у животных обеих групп наблюдалась нормализация состава осадка мочи. Особенно показательной была динамика уменьшения количества обнаруженных эритроцитов и лейкоцитов с степенью выявления кокковой микрофлоры. У кошек, дополнительно получавших препарат Фуринайд, нормализация исследуемых параметров мочевого осадка происходила быстрее, что является убедительным свидетельством его положительного влияния на состояние мочевого пузыря.
Выводы:
1. Характерными клиническими симптомами острого цистита у кошек являются: беспокойство животного, поллакиурия, странгурия.
2. При лабораторном исследовании крови при остром цистите выявляли-нейтрофильный лейкоцитоз, гипокалиемию игипонатриемию.
3. При проведении общего анализа мочи выявляли: помутнение мочи, увеличение плотности, протеинурию и белка. В осадке мочи при остром цистите устанавливали увеличение в поле зрения числа эпителиальных клеток, наличие эритроцитов, лейкоцитов, неорганического осадка, бактериальной(кокко-вой) микрофлоры.
4. При проведении эхографии выявляли увеличения толщины стенки мочевого пузыря и наличия в нем гиперэхогенного осадка.
5. Включение препарата «Фуринайд» в схему комплексного лечения острого цистита способствует ускорению процессов регенерации слизистой оболочки мочевого пузыря.
166
Список использованных источников:
1. Голенкова, А.А. Острый цистит кошек: клинический случай / А.А. Голенкова, Л.Д. Михайлова, И.А. Летников // Научные исследования молодых учёных. - Пенза: "Наука и просвяще-ние", 2020. - С. 200-203.
2. Жуков В.М. Органопатоло-гия мочеполовой системы котов / В.М. Жуков // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. - 2019. - № 8 (178). - С. 157-159.
3. Щербакова Л.А. Оценка степени распространения острого и хронического цистита у кошек в условиях промышленного города / Л.А. Щербакова, Н.Г. Курочкина // Молодежь и Наука. - 2017. - №1. - С. 58
4. Bartges J.W. Bacterial urinary tract infections - simple and complicated / J.W. Bartges // VetMed. - 2005. -Vol. 100. - P. 224-232.
5. Litster A. Feline bacterial urinary tract infections: an update on an evolving clinical problem / A. Lister, M. Thompson, S. Moss [et al.] // Vet Journal. - 2011. - Vol. 187. - P. 18-22.
6. Gerber B. Idiopathic cystitis and urinary tract infection / B. Gerber // 3rd Feline Medicine Symposium. - 2011. -P. 15-19.
7. Морозова Н.В. Биопрофиль микроорганизмов, выделенных из мочи кошек при патологии мочевыде-лительной системы / Н.В. Морозова, М.В. Сычева, В.И. Сорокин // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2020. -№ 3 (51). - С. 142-145.
8. Dorsch R. Feline urinary tract pathogens: prevalence of bacterial species and antimicrobial resistance over
References:
1. Golenkova A.A. Acute cat cystitis: a clinical case / A.A. Golenkova, L.D. Mikhailova, I.A. Letnikov // Scientific research of young scientists.- Penza: "Science and Enlightenment", 2020. -P. 200-203.
2. Zhukov V.M. Organopathology of the genitourinary system of cats / V.M. Zhukov // Bulletin of the Altai State Agrarian University. - 2019. -№ 8 (178). - P. 157-159.
3. Shcherbakova L.A. Assessment of the degree of spread of acute and chronic cystitis in cats in the conditions of an industrial city / L.A. Shcherbakova, N.G. Kurochkina // Youth and Science. -2017. - №. 1. - p. 58
4. Bartges J.W. Bacterial urinary tract infections - simple and complicated / J.W. Bartges // Vet Med. - 2005. -Vol. 100. - P. 224-232.
5. Litster A. Feline bacterial urinary tract infections: an update on an evolving clinical problem / A. Lister, M. Thompson, S. Moss [et al.] // Vet Journal. - 2011. - Vol. 187. - P. 18-22.
6. Gerber, B. Idiopathic cystitis and urinary tract infection / B. Gerber // 3rd Feline Medicine Symposium. - 2011. -P. 15-19.
7. Morozova N.V. Bioprofile of microorganisms isolated from the urine of cats in the pathology of the urinary system / N.V. Morozova, M.V. Sycheva, V.I. Sorokin // Bulletin of the Ulyanovsk State Agricultural Academy. - 2020. -№ 3 (51). - pp. 142-145.
8. Dorsch R. Feline urinary tract pathogens: prevalence of bacterial species and antimicrobial resistance over a 10-year period / R. Dorsch, C. Von
167
a 10-year period / R. Dorsch, C. Von Vopelius-Feldt, G. Wolf [et al.] // Vet Rec. - 2015. - Vol. 176. - P. 201.
9. Gunn-Moore D.A. Feline lower urinary tract disease / D.A. Gunn-Moore // J Feline Med Surg. - 2003. - Vol. 5. -P. 133-138.
10. Gerber B. Evaluation of clinical signs and causes of lower urinary tract disease in European cats / B. Gerber, F.S. Boretti, S. Kley [et al.] // Journal of Small Animal Practice. - 2005. -Vol. 46. - P. 571-577.
11. Lekcharoensuk C. Epidemio-logic study of risk factors for lower urinary tract diseases in cats / C. Lekcharoensuk, C.A. Osborne, J.P. Lulich // J. Am. Vet. Med. Assoc. -2001. - Vol. 218. - P. 1429-1435.
12. Осипова Ю.С. Физико-химические свойства мочи у кошек в норме и при заболеваниях мочевыде-лительной системы в условии региона Кавказские Минеральные воды / Ю.С. Осипова, А.Н. Квочко // Евразийский Союз Ученых. - 2015. -№ 12 (21). - С. 39-42.
13. Bailiff N.L. Evaluation of urine specific gravity and urine sediment as risk factors for urinary tract infections in cats // N.L. Bailiff, J.L. Westropp, R.W. Nelson [et al.] // Vet ClinPathol. -2008. - Vol. 37. - P. 317-322.
14. Kirsch M. Incidence of bacterial cystitis in diabetic dogs and cats at the time of diagnosis / M. Kirsch // Tierarztliche Praxis. - 1998. - Vol. 26 (1). - P. 32-36.
15. Бледнова А.В. Применение иммуномодуляторов при лечении цистита у кошек / А.В. Бледнова, А.И. Бледнов, С.Ю. Стебловская // Инновации в научно-техническом
Vopelius-Feldt, G. Wolf [et al.] // Vet Rec. - 2015. - Vol. 176. - P. 201.
9. Gunn-Moore D.A. Feline lower urinary tract disease / D.A. Gunn-Moore // J Feline Med Surg. - 2003. - Vol. 5. -P. 133-138.
10. Gerber B. Evaluation of clinical signs and causes of lower urinary tract disease in European cats / B. Gerber, F.S. Boretti, S. Kley [et al.] // Journal of Small Animal Practice. - 2005. Vol. 46. -P. 571-577.
11. Lekcharoensuk C. Epidemiologic study of risk factors for lower urinary tract diseases in cats / C. Lekcharoensuk, C.A. Osborne, J.P. Lulich // J. Am. Vet. Med. Assoc. -2001. - Vol. 218. - P. 1429-1435.
12. Osipova Y.S. Physico-chemical properties of urine in cats in normal and in diseases of the urinary system in the condition of the Caucasian Mineral Waters region / Y.S. Osipova, A.N. Kvochko // Eurasian Union of Scientists. - 2015. -№. 12 (21). - P. 39-42.
13. Bailiff N.L. Evaluation of urine specific gravity and urine sediment as risk factors for urinary tract infections in cats // N.L. Bailiff, J.L. Westropp, R.W. Nelson [et al.] // Vet ClinPathol. -2008. - Vol. 37. - P. 317-322.
14. Kirsch M. Incidence of bacterial cystitis in diabetic dogs and cats at the time of diagnosis / M. Kirsch // Tierarztliche Praxis. - 1998. - Vol. 26 (1). - P. 32-36.
15. Blednova A.V. The use of immunomodulators in the treatment of cystitis in cats / A.V Blednova, A.I. Blednov, S.Yu. Steblovskaya // Innovations in scientific and technical support of the agro-industrial complex of Russia. - Kursk: Kursk State Agricultural
168
обеспечении агропромышленного комплекса России. - Курск: Курская государственная сельскохозяйственная академия имени И.И. Иванова, 2020. - С. 307-312.
16. Соболев В.Е. Гликозаминогли-каны в комплексной терапии цистита различной этиологии / В.Е. Соболев, С.И. Жданов // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2010. - №4. - С. 168-169.
17. Lund H.S. Anti microbial susceptibility in bacterial isolates from Norwegian cats with lower urinary tract disease / H.S. Lund, G. Skogtun, H. Sorum [et al.] // J Feline Med Surg. -2015. - Vol. 17. - P. 507-515.
18. White J.D. Urinary tract infections in cats with chronic kidney disease / J.D. White, M. Stevenson, R. Malik [et al.] // J Feline Med Surg. -2013. - Vol. 15. - P. 459-465.
Academy named after I.I. Ivanov, 2020. -pp. 307-312.
16. Sobolev V.E. Glycosamino-glycans in the complex therapy of cystitis of various etiologies / V.E. Sobolev, S.I. Zhdanov // Issues of regulatory regulation in veterinary medicine. -2010. - №. 4. - P. 168-169.
17. Lund HS. Anti microbial susceptibility in bacterial isolates from Norwegian cats with lower urinary tract disease / H.S. Lund, G. Skogtun, H. Sorum [et al.] // J Feline Med Surg. -2015. - Vol. 17. - P. 507-515.
18. White J.D. Urinary tract infections in cats with chronic kidney disease / J.D. White, M. Stevenson, R. Malik [et al.] // J Feline Med Surg. - 2013. - Vol. 15. - P. 459-465.
Сведения об авторах:
Сенчук Иван Викторович- кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры терапии и паразитологии Института «Агротехнологическая академия» ФГАОУ ВО «КФУ имени В.И. Вернадского» e-mail: ivansenchuk_1981@ mail.ru, 295492, Россия, Республика Крым, г. Симферополь, п. Аграрное, Институт «Агротехнологиче-ская академия» ФГАОУ ВО «КФУ им. В.И.Вернадского».
Коваленко Ксения Васильевна -обучающаяся пятого курса факультета ветеринарной медицины Института «Агротехнологическая академия» ФГАОУ ВО «КФУ имени В.И. Вер-
Information about the authors:
Senchuk Ivan Viktorovich -Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor of the Department of Therapy and Parasitology of the Institute «Agrotechnological academy» of the FSAEI HE «V.I. Vernadsky Crimean Federal University», e-mail: ivansenchuk_1981@mail.ru, Institute "Agrotechnological academy" of the FSAEI HE "V.I. Vernadsky Crimean Federal University", Agrarnoye v., Simferopol, Republic of Crimea, 295492, Russia.
Kovalenko Ksenia Vasilevna -fifth-year student of the Faculty of Veterinary Medicine of the Institute
169
надского» e-mail: covalenko.xenia@ mail.ru, 295492, Республика Крым, г. Симферополь, п. Аграрное, Институт «Агротехнологическая академия» ФГАОУ ВО «КФУ им. В.И. Вернадского».
"Agrotechnological academy" of the FSAEI HE "V.I. Vernadsky Crimean Federal University", e-mail: covalenko.xenia@mail.ru, Institute "Agrotechnological academy" of the FSAEI HE "V.I. Vernadsky Crimean Federal University", Agrarnoye v., Simferopol, Republic of Crimea, 295492, Russia.
170
