CC BY
56
Є
Чувствительность к антибиотикам микроорганизмов, выделенных из крови реанимационных больных многопрофильного стационара скорой помощи
Т. В.ЧЁРНЕНЬКАЯ, Л. А. БОРИСОВА, Т. Ю. ВОРОБЬЁВА, И. В. АЛЕКСАНДРОВА, Д. А. КОСОЛАПОВ
НИИ скорой помощи им. Н. В. Склифосовского, Москва
Antibiotic Susceptibility of Isolates from Blood of Patients in Intensive Care Units of Emergency Medical Service
T V. CHERNENKAYA L. A BORISOVA, T. YU. VOROBYEVA, I. V ALEKSANDROVA, D. A KOSOLAPOV N. V. Sklifosovsky Research Institute for Emergency Medical Service, Moscow
Проанализированы результаты микробиологического исследования 769 проб крови от 220 больных, находившихся на лечении в 4 реанимационных отделениях НИИ скорой помощи им. Н. В.Склифосовского за период январь 2009 г. — июнь 2010 г. В 323 (42%) пробах получен рост этиологически значимых микроорганизмов. Для анализа отобрано 253 штамма микроорганизмов. Грамположительные возбудители высевались из крови в 47% случаев, грамотрицательные — в 42%, грибы рода Candida — в 8% и анаэробные микроорганизмы — в 3%. Staphylococcus aureus выделяли в 24%, энтерококки — в 15%, неферментирующие грамотрицательные бактерии — в 25%, энтеробактерии — в 17% случаев. Получены различия в спектре возбудителей сепсиса в зависимости от контингента больных. Максимальная суммарная чувствительность грамположительных кокковых микроорганизмов была к ванкомицину и линезолиду, грамотрицательных
— к имипенему и меропенему.
Ключевые слова: ОРИТ, сепсис, возбудители, антибиотикорезистентность.
The microbiological tests of 769 blood samples from 220 patients, treated in 4 intensive care units of the N.V.Sklifosovsky Research Institute for Emergency Medical Service within a period from January 2009 to June 2010, were analysed. Etiologically
significant microorganisms were detected in 323 samples (42%). 253 isolates were used in the analysis. Grampositive and gram- M-'
negative pathogens were detected in 47 and 42% of the cases respectively. Candida and anaerobic organisms were isolated in 8 and 3% of the cases respectively. Staphylococcus aureus and enterococci were isolated in 24 and 15% of the cases respectively.
Nonfermenting gramnegative bacteria and enterobacteria were revealed in 25 and 17% of the cases respectively. Differences in the spectrum of the sepsis pathogens depending on the patients contingent were shown. The maximum summary susceptibility of the grampositive cocci was observed with respect to vancomycin and linezolid and that of the gramnegative bacteria was stated with respect to imipenem and meropenem.
Key words: ICU, sepsis, pathogens, antibiotic resistance.
В последние годы активно разрабатываются и внедряются в клиническую практику новые про-тивомикробные препараты. Несмотря на это, сепсис остается одной из самых актуальных проблем современной медицины в связи с наличием тенденции к росту заболеваемости и с высокой атрибутивной летальностью.
Частота развития сепсиса в последние годы у больных стационаров по данным различных авторов составляет от 11 до 44 случаев на 1000 госпитализированных [1, 2]. Среди пациентов реанимационных отделений частота развития сепсиса составляет 26,2—37 случаев на 100 поступивших в реанимационные отделения [3, 4].
© Коллектив авторов, 2011
Адрес для корреспонденции: 129010 Москва, Сухаревская пл., д. 3. НИИ Скорой помощи им. Н. В. Склифосовского
Смертность в ряду пациентов с сепсисом на 30% выше, чем среди других пациентов [4].
Решающим фактором для выживания пациентов с сепсисом является раннее назначение целенаправленной антибактериальной терапии. Общепринятый подход — это назначение антибиотиков резерва с широким спектром действия при появлении первых признаков сепсиса. Но в ряде случаев такая тактика является неэффективной. Это связано с тем, что в последние годы в крупных стационарах всё чаще появляются новые возбудители инфекционно-воспалительных заболеваний и отмечается значительный рост устойчивости к антибиотикам наиболее распространённых микроорганизмов.
Данные литературы о спектре возбудителей сепсиса и их чувствительности к антибиотикам имеют значительные региональные различия, за-
Є
висят от контингентов обследованных пациентов. В связи с этим для разработки эффективных схем антибактериальной терапии необходимо учитывать результаты локального микробиологического мониторинга возбудителей сепсиса.
Цель настоящей работы — изучить этиологическую структуру возбудителей сепсиса, выделенных из крови реанимационных больных и оценить их чувствительность к антибактериальным препаратам.
Материал и методы
Проведён анализ результатов микробиологического исследования 769 проб крови от 220 больных, находившихся на лечении в 4 реанимационных отделениях НИИ скорой помощи им. Н. В. Склифосовского, за 18 месячный период (январь 2009 г. — июнь 2010 г.), в том числе в реанимации острых эндотоксикозов (РОЭ) — 78 больных, послеоперационной хирургической реанимации (ПОХР) — 61 пациент, общей реанимации — 81 пациент. В РОЭ помощь оказывалась пациентам с полиорганной недостаточностью, развившейся вследствие тяжёлого панкреонекроза, цирроза печени, деструкции мягких тканей. В ПОХР проводилось лечение больных с медиастинитами, распространёнными перитонитами, открытой травмой груди и живота, неотложной сосудистой патологией. В общей реанимации находились пострадавшие с тяжёлой сочетанной травмой.
У всех пациентов, включённых в данное исследование, были признаки синдрома системной воспалительной реакции (ССВР, SIRS). SIRS связан с присутствием микробов и/или их токсинов в крови и характеризуется наличием двух и более из следующих симптомов:
— температура тела более 38°С или менее 36°С;
— лейкоцитоз (> 10х109/л) или лейкопения (< 4х109/л) или количество — палочкоядерных нейтрофилов более 10%;
— число сердечных сокращений более 90 ударов в минуту;
— число дыханий более 24 в минуту.
В данную работу включены результаты микробиологического исследования крови пациентов, у которых за время пребывания в реанимации проведено 2 и более посевов крови, от одного пациента исследовали от 2 до 18 проб крови (в среднем — 3,5).
Забор крови у пациентов проводили из периферической вены с соблюдением правил асептики. Для одного исследования одномоментно отбирали по 10 мл крови в два флакона:
— для аэробных бактерий — Bactec™
Plus Aaerobic/F Culture Vials;
— для анаэробных микроорганизмов
— Bactec™ Plus Anaerobic/F Culture Vials.
По показаниям, в случае подозрения на грибковый сепсис, одновременно с аэробными и анаэробными флаконами дополнительно производили отбор 10 мл крови во флакон Bactec™ Mycosis IC/F Culture Vials.
Полученные образцы доставляли в лабораторию и помещали в анализатор гемокультур Bactec 9050. Стандартный протокол культивирования флаконов в приборе — 7 суток для аэробных и анаэробных флаконов и 14 — для грибных. При отсутствии роста бактерий в течение 7 суток (для грибных флаконов —
14) выдавали отрицательный результат исследования.
При выявлении роста микроорганизмов проводили микроскопию мазка из содержимого флакона, окрашенного по Граму. Затем содержимое флакона высевали на плотные
Частота выделения микроорганизмов из крови реанимационных больных (n=253).
питательные среды (агар Шадлера, 5% кровяной агар, ман-нит-солевой агар, среды Эндо и Сабуро). Идентификацию микроорганизмов и определение их чувствительности к антибиотикам проводили с использованием автоматического микробиологического анализатора WalkAway 40.
Подтверждение продукции энтеробактериями бета-лак-тамаз расширенного спектра (БЛРС) проводили с помощью метода «двойных дисков» [5].
Однократное обнаружение коагулазонегативного стафилококка трактовали как контаминацию пробы крови при её сборе [6].
В случае выделения от больного в нескольких пробах крови одного и того же вида микроорганизма с одинаковой чувствительностью к антибиотикам, для последующего анализа учитывали только первый результат.
Нулевую гипотезу об отсутствии различий между спектром возбудителей в разных реанимационных отделениях проверяли с использованием критерия х2.
Результаты исследования
Из 769 проб крови рост микроорганизмов не обнаружен в 396 пробах (51,5%). В 50 пробах (6,5%) выделение коагулазонегативного стафилококка расценено как контаминация при сборе. В 323 пробах (42%) получен рост этиологически значимых микроорганизмов. После исключения повторных высевов от одного пациента, для дальнейшего анализа отобрано 253 штамма микроорганизмов.
Частота выделения микроорганизмов из крови реанимационных больных представлена на рисунке. Грамположительные возбудители высевались в 47% случаев, грамотрицательные — в 42%, грибы рода Candida — в 8% и анаэробные микроорганизмы — в 3% случаев. Из грамположитель-ных бактерий чаще всего выделяли золотистый стафилококк (24%). Энтерококки высевали в 15% случаев. Среди грамотрицательных патогенов преобладали представители неферментирующих грамотрицательных бактерий (НГОБ) — 25%. Энтеробактерии обнаружены в 17% случаев.
■е-
Є
Таблица 1. Частота выделения микроорганизмов из крови пациентов реанимационных отделений
Микроорганизмы Частота выделения, %
общая реанимация ПОХР РОЭ
Грамотрицательные, в т.ч. 49,2 31,6 44,6
Esherichia coli 6,2 G 3,6
Klebsiella pneumoniae 15,4* 5,3* 5,4*
Proteus sp. 1,5 1,3 3,6
Другие представители Enterobacteriacae 3,1 6,6 2,7
Acinetobacter sp. 20,0** 9,2** 1G,7**
Pseudomonas aeruginosa 1,5 5,3 8,G
Другие НГОБ 1,5 3,9 1G,7
Грамположительные, в т.ч. 40 53,9 46,4
Staphylococcus aureus 24,6 25 23,2
Staphylococcus sp. 3,1 5,3 5,4
Streptococcus sp. 3,1 3,9 1,8
Enterococcus sp. 9,2# 19,8# 16,G
Анаэробные микроорганизмы 4,6 2,6 1,8
Грибы рода Candida 6,2## 11,8## 7,1
Всего штаммов 65 76 112
Примечание. Различия между частотой встречаемости возбуд| ителей * - p<0,01; ** - p<0,0001; # - p<0,00001;
## - p<0,0002.
Таблица 2. Чувствительность к антибиотикам грамположительных микроорганизмов, выделенных из крови
больных реанимационных отделений (л=119)
Микроорганизмы Число штаммов Число чувствительных штаммов, %
оксациллин ампициллин ванкомицин линезолид
S.aureus 61 6,6 G 1GG 1GG
Staphylococcus sp. 12 16,7 G 1GG 1GG
Streptococcus sp. 7 1GG 1GG 1GG 1GG
Enterococcus sp. 39 нд 28,2 87,2 1GG
Всего 119 12,6 15,1 95,8 1GG
В табл. 1 представлен спектр патогенов и частота их выделения из крови больных, находившихся на лечении в разных реанимационных отделениях.
У пациентов общей реанимации из крови чаще выделяли грамотрицательные патогены (49,2%). У пациентов ПОХР и РОЭ преобладали грамположительные микроорганизмы — 53,9 и 46,4% соответственно.
Дрожжеподобные грибы рода Candida почти в два раза чаще высевали из крови пациентов ПОХР (11,8%) по сравнению с больными из общей реанимаций (6,2%). У больных РОЭ грибы рода Candida sp. выделяли из крови в 7,1% случаев.
Анаэробные бактерии в два раза чаще являлись причиной септического состояния у реанимационных больных с тяжёлой сочетанной травмой по сравнению с другими изученными контингентами пациентов.
Во всех группах пациентов S.aureus высевался из крови у одной четверти больных и он являлся самым частым возбудителем из грамположитель-ных микроорганизмов. На втором месте среди грамположительных патогенов был энтерококк. Причем значительно чаще энтерококки являлись причиной септического состояния у пациентов, находившихся в ПОХР и РОЭ, по сравнению с больными общей реанимации.
Среди грамотрицательных микроорганизмов также имеются различия в частоте высеваемости из крови у пациентов разных реанимационных отделений. Так, у больных общей реанимации Acinetobacter sp. выделялся в два раза чаще, а Klebsiella pneumoniae в три раза чаще, чем у пациентов ПОХР и РОЭ. Различия в частоте обнаружения других грамотрицательных бактерий были статистически не достоверны.
В табл. 2 представлена чувствительность к антибактериальным препаратам грамположительных микроорганизмов, выделенных из крови реанимационных больных. Большинство штаммов S.aureus и коагулазонегативных стафилококков были устойчивы к оксациллину — 93,4 и 83,3% соответственно и трактовались как резистентные ко всем беталак-тамным антибиотикам. Все штаммы стафилококков были чувствительны к ванкомицину и линезолиду.
Среди энтерококков чувствительными к ампициллину были только 28,2% штаммов. Из 39 штаммов энтерококков, выделенных из крови реанимационных больных, 5 были устойчивы к ванкомицину. К линезолиду были чувствительны все выделенные штаммы энтерококков.
Все стрептококки, выделенные из крови реанимационных больных, были чувствительны к беталактамным антибиотикам, ванкомицину и линезолиду. При анализе суммарной чувствитель-
Є
Таблица 3. Чувствительность к антибиотикам грамотрицательных микроорганизмов, выделенных из крови больных реанимационных отделений (л=106)
Микроорганизмы Число Число чувствительных штаммов, %
штаммов Цеф.3 CPR/S IPM MEM AN CIP
E.coli 8 0* 0* 100 100 12,5 0
Klebsiella sp. 20 0* 0* 100 100 15 5
Proteus sp. 6 0* 0* 100 100 0 0
Другие представители Enterobacteriacae 10 0* 0* 100 100 30 20
Acinetobacter sp. 32 0 93,75 25 40,6 6,25 6,25
P.aeruginosa 14 0 14,3 14,3 7,1 0 7,1
Другие НГОБ 16 0 56,25 62,5 62,5 6,25 6,25
Всего 106 0 38,7 60,4 64,2 9,4 6,6
Примечание. Цеф.3 - цефалоспорины III поколения (цефотаксим); CPR/S - цефоперазон/сульбактам; IPM - имипе-нем; MEM - меропенем; AN - амикацин; CIP - ципрофлоксацин. * - штаммы, продуцирующие бета-лактамазы расширенного спектра, оценивались как устойчивые к цефалоспоринам.
ности 119 грамположительных микроорганизмов, выделенных из крови реанимационных больныгх, выгавлено, что все штаммы быши чувствительны к линезолиду и 95,8% — к ванкомицину. Чувствительность к беталактамным антибиотикам не превышала 15%.
Чувствительность к антибиотикам грамотрицательных бактерий, выщеленныгх из крови реанимационных больныгх, представлена в табл. 3.
Все выделенные штаммы представителей семейства Enterobacteriacae (E.coli, Klebsiella sp., Proteus sp.) являлись продуцентами БЛРС и трактовались как устойчивые ко всем цефалоспоринам. Штаммов энтеробактерий, чувствительных к цефоперазону/сульбактаму, обнаружено не было. Один из 8 штаммов E.coli и 3 из 20 штаммов Klebsiella sp. были умеренно резистентны к этой комбинации антибиотиков. Чувствительность данныгх микроорганизмов к карбапенемам (ими-пенему и меропенему) составила 100%. Единичные штаммы энтеробактерий были чувствительны к аминогликозидам и фторхинолонам.
Неферментирующие грамотрицательные бактерии (Acinetobacter sp., P.aeruginosa и другие) отличались высокой устойчивостью к антибиотикам.
Менее половины штаммов Acinetobacter sp., выделенных из крови реанимационных больных, были чувствительны к карбапенемам. Так, к меропенему были чувствительны 40,6%, а к имипе-нему только 25% штаммов Acinetobacter sp. Хорошая чувствительность Acinetobacter sp. отмечена только к цефоперазону/сульбактаму. Из 32 выделенных штаммов устойчивыми к цефоперазону/сульбактаму быши только 2 штамма.
Из 14 штаммов P.aeruginosa чувствительными к цефоперазону/сульбактаму и имипенему были только 2, а к меропенему и ципрофлоксацину — 1 штамм.
Среди представителей других НГОБ чувствительными к цефоперазону/сульбактаму были 56,2%, а к карбапенемам — 62,5% штаммов.
Максимальная суммарная чувствительность грамотрицательных бактерий быша к карбапене-
мам (имипенему — 60,4%, меропенему — 64,2% штаммов). К цефоперазону/сульбактаму в целом были чувствительны только 38,7% грамотрица-тельных бактерий, выделенных из крови реанимационных больных. К амикацину и ципрофлок-сацину были чувствительны менее 10% штаммов.
Обсуждение результатов
В настоящее время по данным литературы отмечаются значительные различия в частоте грам-положительного, грамотрицательного и грибкового сепсиса у пациентов крупных стационаров. В ряде многоцентровых исследований частота выделения грамположительных возбудителей из крови септических больных составила 53—65% [7—9]. По данным других авторов, ведущими возбудителями сепсиса являются грамотрицательлные бактерии [10,11]. Грибковый сепсис диагностируется в 4—9,5% случаев [7—9, 11]. Различия в частоте встречаемости патогенов связаны с контингентом обследованных пациентов и зависят от локализации первичного очага инфекции.
В нашем исследовании при анализе общей структуры возбудителей сепсиса у реанимационных пациентов преобладали грамположительные микроорганизмы (47%). Грамотрицательные выделяли в 42% случаев, грибы — в 8%, анаэробные бактерии — в 3%. S.aureus был выделен из крови реанимационных больных почти в четверти случаев, причем у всех категорий обследованных пациентов. При анализе спектра других возбудителей сепсиса у пациентов нескольких реанимационных отделений, а соответственно с разными первичными очагами инфекции, выявлены некоторые различия.
Так, обращает на себя внимание, что у больных с тяжёлой сочетанной травмой, находившихся на лечении в общей реанимации, чаще, чем у пациентов других ОРИТ, высевали из крови грамотрица-тельные патогены, преимущественно за счёт увеличения доли Acinetobacter sp. и Klebsiella sp. Как было показано в работе Jung и соавт. [12], факторами риска бактериемии, вызванной Acinetobacter sp., являются длительная ИВЛ, трахеостомия, инфек-
Є
ции респираторного тракта. Полученные нами данные подтверждают результатні этого исследования, так как пациенты с тяжёлой сочетанной травмой длительно находятся на ИВЛ и у них часто развиваются инфекции респираторного тракта.
Из крови пациентов ПОХР достоверно чаще выделяли энтерококки и грибы рода Candida. Вероятно, это может быть связано с транслокацией данных микроорганизмов из кишечника больных с повреждениями органов брюшной полости на фоне массивной антибактериальной терапии препаратами, не активными в отношении энтерококков и грибов.
Значительные трудности в лечении представляют случаи сепсиса, вызванные полирезистент-ными микроорганизмами. Так, смертность пациентов с сепсисом выше, если заболевание вызвано устойчивыми штаммами бактерий [13, 14]. Кроме того, в случае заболевания, вызванного полирези-стентной микрофлорой, общая стоимость лечения пациентов увеличивается в несколько раз за счёт большей длительности пребывания больного в реанимации, использования дорогостоящих антибиотиков и длительности их применения, увеличения числа диагностических и других лечебных процедур [15].
В последние годы отмечается устойчивая тенденция к увеличению числа штаммов бактерий, устойчивых к антибиотикам. Самые серьёзные жизнеугрожающие инфекции вызываются группой резистентных микроорганизмов, которых Американское общество по инфекционным болезням (IDSA) объединило в группу «ESKAPE»-патогены (от английского escape — ускользать, избегать, спасаться) [16]. Название связано с тем, что они эффективно «избегают» воздействия антибактериальных препаратов.
В группу «ESKAPE»-патогенов относят:
Enterococcus spp. (устойчивые к ванкомицину);
Staphylococcus spp. (MRSA);
Klebsiella pneumoniae (продуцируют БЛРС и карбапенемазы);
Acinetobacter baumannii (устойчивые к карба-пенемам);
Pseudomonas aeruginosa (панрезистентные);
Enterobacter spp. (мультирезистентные).
По многочисленным данным микробиологических исследований, среди Enterococcus faecalis доля штаммов, устойчивых к ванкомицину, составляет 2—3%, а среди Enterococcus faecium — достигает 60%. [7, 17]. В России первый штамм энтерококка, резистентного к ванкомицину, был выделен из крови гематологического больного в 2002 году [11]. А за период с 2004 по 2007 гг. количество таких штаммов составило 129 [18]. В нашей работе из 39 штаммов энтерококков, выделенных из крови реанимационных больных, 5 (12,8%) были устойчивы к ванкомицину.
Для лечения инфекций, вызванных энтерококками, как правило, применяется ванкомицин. Однако, в связи с появлением и распространением штаммов энтерококков, устойчивых к ванкомицину, препаратом выбора для лечения пациентов с сепсисом в отделениях реанимации необходимо рекомендовать линезолид.
Первые метициллинорезистентные стафилококки (MRS) были выделены в США в 1968 году. К началу 1990-х гг. до 25% штаммов S.aureus, выделенных от пациентов стационаров, были устойчивы к метициллину. По данным NNIS, у пациентов ОРИТ доля инфекций, вызванных MRSA, составляла в 1999 г. — 50%, а в 2003 г. — 59,5%
[19]. В России, по данным многоцентрового исследования, проведенного А. В. Дехничем и со-авт. в 2000—2001 гг., встречаемость MRSA у пациентов отделений реанимации составляла 54,8%
[20]. В нашем исследовании более 80% коагулазо-негативных стафилококков и более 90% S.aureus были метициллиноустойчивыми.
MRS-штаммы являются устойчивыми к большинству антибактериальных препаратов. Активными препаратами для лечения тяжёлых инфекций, вызванных стафилококками, остаются только ванкомицин и линезолид.
В нашем исследовании из крови реанимационных больных были выделены 44 штамма различных видов энтеробактерий. Все они являлись продуцентами БЛРС и, соответственно, устойчивыми к цефалоспоринам. Кроме того, отмечена высокая резистентность энтеробактерий к небеталактам-ным антибиотикам (амикацину и ципрофлоксаци-ну). Среди выделенных микроорганизмов мы не обнаружили штаммов, чувствительных к цефопе-разону/сульбактаму. По данным М. В. Эдельштей-на и соавт. [21], в России доля штаммов энтеробактерий, чувствительных к этой комбинации антибиотиков сократилась с 90% в 1997—1998 гг. до 70,3% в 2003 г. Связано это со стремительным распространением СТХ-М типа бета-лактамаз в стационарах. Вероятно, и штаммы энтеробактерий, выделенные нами из крови пациентов реанимационных отделений, являются продуцентами СТХ-М типа бета-лактамаз расширенного спектра.
Препаратами выбора для лечения сепсиса, вызванного энтеробактериями, остаются карба-пенемы (имипенем и меропенем).
В международных исследованиях по мониторингу антибиотикорезистентности микроорганизмов обнаружены штаммы энтеробактерий, устойчивые к карбапенемам. Поэтому имеется опасность распространения таких возбудителей и в российских стационарах. Для предотвращения распространения резистентных штаммов необходимо строгое соблюдение санитарно-противоэпидемического режима и проведение политики рациональной антибактериальной терапии.
e
Представители НГОБ отличаются частым развитием устойчивости ко всем классам антибиотиков, включая карбапенемы. Из 14 штаммов P.aeruginosa, выделенных нами из крови реанимационных больных, только один был чувствителен к меропенему и два — к имипенему. Остальные штаммы были устойчивы ко всем протестированным антибиотикам.
Случаи сепсиса, вызванные такими возбудителями, представляют значительные трудности в лечении. Это связано с тем, что, как правило, устойчивые к карбапенемам штаммы являются панрезистентными. Лечение пациентов в таких случаях проводится комбинациями нескольких препаратов в максимальных терапевтических дозах. При этом смертность пациентов с синегнойным сепсисом в несколько раз выше, чем среди пациентов с сепсисом другой этиологии. В исследовании F. A. Orrett [22] смертность детей от сепсиса в целом составила 15,1%. В группе пациентов, у которых сепсис был вызван P.aeruginosa, смертность составила 39,4%.
Распространение устойчивости к карбапенемам среди P.aeruginosa, по данным международных исследований, составляет от 3,4 до 47,9% [23, 24]. В отделениях ОРИТ многопрофильных стационаров России в 1997—1999 гг. нечувствительными к меропенему были 3% штаммов P.aeruginosa. В 2002—2004 гг. нечувствительными к имипенему и меропенему являлись уже 39 и 41,4% штаммов [25]. Такой скачок резистентности вероятно обусловлен интенсивным применением данных препаратов для терапии пациентов в ОРИТ. Полной перекрестной резистентностью к карбапенемам в 2002—2004 гг. обладали 4,5%
ЛИТЕРАТУРА
1. Esteban A., Frutos-Vivar F., Ferguson N. D. et al. Sepsis incidence and outcome: contrasting the intensive care unit with the hospital ward. Crit Care Med 2007; 35: 1284—1289
2. Sundararajan V., Macisaac C. M., Presnieill J. J. et al. Epidemiology of sepsis in Victoria, Australia. Ibid 2005; 33: 71—80.
3. Vincent J. L, Sakr Y., Sprung C. L. et al. Sepsis in European intensive care units: results of the SOAP study. Ibid 2006; 34: 344—353.
4. Angus D. C, Linde-Zwirble W. T., Lidicker J. et al. Epidemiology of severe sepsis in the United States: analysis of incidence, outcome, and associated costs of care. Ibid 2001; 29: 1303—1310.
5. National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performance Standards for Antimicrobial Disk Susceptibility Tests. 2003; Approved standard M2-A8: 23: 1: 61—74.
6. Tokars J. I. Predictive value of blood cultures positive for coagulase-negative staphylococci: implications for patient care and health care quality assurance. Clin Infect Dis 2004; 39: 334—341.
7. Wisplinghoff H, Bischoff T., Tallent S. M. et al. Nosocomial bloodstream infections in US hospitals: analysis of 24179 cases from a prospective nationwide surveillance study. Clin Infect Dis 2004; 39: 3: 309—317.
8. Lyytikainen O, Lumio J., Sarkkinen H. et al. Nosocomial bloodstream infections in Finnish hospitals during 1999-2000. Clin Infect Dis 2002; 35 (2): e14—9.
9. Mitt P., Adamson V., Loivukene K. et al. Epidemiology of nosocomial bloodstream infections in Estonia. J Hosp Infect 2009; 71: 4: 365—370.
штаммов P.aeruginosa за счёт продукции металло-бета-лактамаз. Кроме того, эти штаммы проявляли ассоциированную резистентность ко всем антимикробным препаратам, кроме полимиксина.
Повсеместно увеличивается доля Acinetobacter sp. в структуре возбудителей сепсиса и других госпитальных инфекций [12, 25, 26]. Все чаще выделяются штаммы, устойчивые к карбапенемам и другим противомикробным препаратам [26, 27]. По результатам многоцентровых исследований, проведённых в ОРИТ многопрофильных стационаров России с 1997—1999 гг. до 2002—2004 гг. резистентность Acinetobacter sp. к ципрофлоксацину возросла более чем в два раза, к амикацину — более чем в 7 раз. Отмечено появление штаммов, устойчивых к имипенему [25].
В нашем исследовании резистентными к карбапенемам были почти 60% штаммов Acinetobacter sp. Из всех имеющихся антибиотиков клинически значимой активностью против Acinetobacter sp. характеризовался только цефоперазон/сульбак-там. Из 32 выделенных штаммов 2 обладали промежуточной резистентностью к этой комбинации антибиотиков и 30 были чувствительны.
Таким образом, устойчивость возбудителей сепсиса к антибиотикам является серьезной проблемой при лечении пациентов в ОРИТ.
Вероятно, количество возбудителей, устойчивых ко всем имеющимся противомикробным препаратам, будет возрастать в геометрической прогрессии в течение ближайших лет. В связи с этим необходимо проведение постоянного микробиологического мониторинга, осуществление инфекционного контроля и совершенствование политики применения антибиотиков в ОРИТ.
10. Chazan B., Raz R., Teitler N. et al. Epidemiology and susceptibility to antimicrobials in community, hospital and long-term care facility bacteriemia in Northern Israel: a 6-year surveillance. IMAJ 2009; 11: 592—597.
11. Клясова Г. А., Сперанская Л. Л.,Миронова А. В. и соавт. Возбудители сепсиса у иммунокомпрометированных больных: структура и проблемы антибиотикорезистентности (результаты многоцентрового исследования). Гематология и трансфузиология 2007; 52: 1: 11—18.
12. Jung J. Y., Park M. S., Kim S. E. et al. Risk factors for multi-drug resistant Acinetobacter baumannii bacteriemia in patients with colonization in the intensive care unit. BMC Infect Dis 2010; 10: 228—239.
13. Superti S. V., Augusti G., Zavascki A. P. Risk factors for and mortality of extended-spectrum-beta-lactamase-producing Klebsiella pneumoniae and Escherichia coli nosocomial bloodstream infections. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 2009; 51: 211—216.
14. Lautenbach E., Synnestvedt M., Weiner M. G. et al. Imipenem resistance in Pseudomonas aeruginosa: emergence, epidemiology, and impact on clinical and economic outcomes. Infect Control Hosp Epidemiol. 2010; 31: 1: 47—53.
15. Rubio-Terres C., Garau J., Grau S., Martinez L. Cost of bacteriemia caused by meticillin-resistant vs.meticillin-susceptible Staphylococcus aureus in Spain. Clin Microbiol Infect 2010; 6: 722—728.
16. www idsociety.org/Content.aspx?id=12800 [электронный ресурс]
17. Reynolds R., Potz N., Colman M. et al. Antimicrobial susceptibility of the pathogens of bacteriemia in the UK and Ireland 2001—2002: the BSAC bacteriemia resistance surveillance programme. J Antimicrob Chemother 2004; 53: 6: 1018—1032.
e
18. Brilliantova A. N., Kiasova G. A., Mironova A. V. et al. Spread of van- 24. comycin-resistant Enterococcus faecium in two haematological centres
in Russia. Intern J Antimicrob Agents 2010, 35 (2): 177—181.
19. Фокин А. А., Галкин Д. В., Мищенко В. М. и соавт. Уроки эпидемиологических исследований нозокомиальных инфекций в России. 25. Клин микробиол антимикроб химиотер 2008, 10: 1: 4—14.
20. Дехнич А. В., Эдельштейн И. А., Нарезкина А. Д. и соавт. Эпидемиология антибиотикорезистентности нозокомиальных штаммов Staphylococcus aureus в России: результаты многоцентрового ис- 26. следования. Там же 2002, 4: 4: 325—336.
21. Эдельштейн М. В., Страчунский Л. С. Динамика распространённости и чувствительности БЛРС продуцирующих энтеробактерий
к различным антимикробным препаратам в ОРИТ России. Там 27. же 2005, 7: 4: 323—336.
22. Orrett F. A., Changoor E. Bacteriemia in children at a regional hospital in Trinidad. Int J Infect Dis 2007; 11: 2: 145-151.
23. Falagas M. E., Bakossi A., Pappas V. D. et al. Secular trends of blood isolates in patients from a rural area population hospitalized in a tertiary center in a small city in Greece. BMC Microbiol 2006; 6: 41.
Unal S., Garcia-Rodriguez J. A. Activity of meropenem and comparators against Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter spp. Isolated in the MYSTIC Program, 2GG2—2GG4. Diagn Microbiol Infect Dis 2GG5; 53: 4: 256—271.
PernedbKo Г. K., Pябкoвa E. Л., Kpe^uêo^a О. И. u coasm. Peзиcтeнт-ность к антибиотикам грамотрицательных возбудителей нозокомиальных инфекций в OPИT многопрофильных стационаров Poccnn, Клин микробиол антимикроб химиотер 2GG8; 1G: 2: 163—179.
Routsi C., Pratikaki M., Platsouka E. et al. Carbapenem-resistant versus carbapenem-susceptible Acinetobacter baumannii bacteriemia in a Greek intensive care unit: risk factors, clinical features and outcomes. Infection 2G1G; 38: 3: 173-18G.
Hujer K. M., Hujer A. M., Hulten E. A. et al. Analysis of antibiotic resistance genes in multidrug-resistant Acinetobacter sp. isolates from military and civilian patients treated at the Walter reed army medical center. Antimicrob Agents Chemoter 2006; 5G: 12: 4114—4123.
-Q-
3Ó
АНТИБИОТИКИ И ХИМИОТЕРАПИЯ, 2011, 5Ó; 5-Ó é—
