CC BY
23
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ /
https://doi.org/10.29001/2073-8552-2019-34-2-129-137 УДК 616.13/14-089.844:60-7:57.089.67
БИОДЕГРАДИРУЕМЫЙ СОСУДИСТЫЙ ПРОТЕЗ, МОДИФИЦИРОВАННЫЙ RGD-ПЕПТИДАМИ: ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ
Е.О. Кривкина1*, В.Н. Сильников2, А.В. Миронов1, Е.А. Великанова1, Е.А. Сенокосова1, Т.В. Глушкова1, Т.Н. Акентьева1, Ю.А. Кудрявцева1, Л.В. Антонова1
1 Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний, 650002, Российская Федерация, Кемерово, Сосновый б-р, 6
2 Институт химической биологии и фундаментальной медицины, 630090, Российская Федерация, Новосибирск, пр. Ак. Лаврентьева, 8
Цель исследования: изучить эффективность модифицирования RGD-пептидами биодеградируемых сосудистых протезов малого диаметра в зависимости от вида линкера и конфигурации RGD.
Материал и методы. Изготовлены трубчатые каркасы диаметром 1,5 и 4,0 мм методом электроспининга из полигидрок-сибутирата/валерата (PHBV) и поликапролактона (PCL). Проведена модификация графтов PHBV/PCL RGD-пептидами. В экспериментах in vitro исследованы степень гемолиза эритроцитов и адгезия тромбоцитов и эндотелиальных клеток при контакте с модифицированной поверхностью. Изучены физико-механические свойства и структура поверхности графтов до и после модифицирования. Сосудистые протезы PHBV/PCL и PHBV/PCL/RGD имплантированы в брюшную аорту крыс сроком на 1 и 3 мес. Проведено изучение эксплантированных образцов с помощью конфокальной микроскопии и гистологических методов исследования.
Результаты. Результаты физико-механических испытаний показали статистически значимое снижение прочностных свойств PHBV/PCL/RGD графтов относительно немодифицированных аналогов. Обнаружено статистически значимое повышение уровня агрегации тромбоцитов на модифицированных графтах. Уровень адгезии эндотелиальных клеток на поверхности модифицированных матриксов был больше, чем на немодифицированных. Краткосрочная имплантация графтов на 1 и 3 мес. показала, что модифицированные графты обладали более высокой проходимостью и меньшей склонностью к кальцификации в сравнении с немодифицированными аналогами. Иммунофлуоресцентное исследование определило явное превосходство модифицированных сосудистых графтов в плане стимулирования формирования зрелого эндотелиального монослоя. Выявлено, что более длинный линкер 4,7,10-триокса-1,13-триде-кандиамин увеличивает биодоступность RGD-пептидов, а использование для модифицирования поверхности графтов RGDK и c[RGDFK] стимулирует раннюю эндотелизацию внутренней поверхности имплантатов и снижает склонность к кальцификации стенки протезов, что в совокупности повышает проходимость имплантированных протезов. Заключение. В ходе краткосрочной имплантации биодеградируемых сосудистых протезов, модифицированных RGD-пептидами, графты с RGDK и ^RGDFK], прикрепленными к поверхности протезов через линкер 4,7,10-триокса-1,13-тридекандиамин, показали лучшие результаты в плане адгезии и поддержания жизнеспособности эндотелиальных клеток in vitro и эндотелизации in vivo, обладали высокой проходимостью после имплантации в сосудистое русло мелких лабораторных животных и меньшей склонностью к кальцификации.
Ключевые слова: биодеградируемые сосудистые протезы, электроспиннинг, RGD-пептиды.
Конфликт интересов: авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Прозрачность финансовой никто из авторов не имеет финансовой заинтересованности в представленных материалах или деятельности: методах. Работа выполнена при поддержке комплексной программы фундаментальных научных
исследований СО РАН в рамках фундаментальной темы Научно-исследовательского института комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний № 0546-2015-0011 «Патогенетическое обоснование разработки имплантатов для сердечно-сосудистой хирургии на основе биосовместимых материалов, с реализацией пациент-ориентированного подхода с использованием математического моделирования, тканевой инженерии и геномных предикторов».
Для цитирования: Кривкина Е.О., Сильников В.Н., Миронов А.В., Великанова Е.А., Сенокосова Е.А., Глушкова Т.В.,
Акентьева Т.Н., Кудрявцева Ю.А., Антонова Л.В. Биодеградируемый сосудистый протез, модифицированный RGD-пептидами: экспериментальное исследование. Сибирский медицинский журнал. 2019;34(2):129-137. https://doi.org/10.29001/2073-8552-2019-34-2-129-137
BIODEGRADABLE VASCULAR GRAFT MODIFIED BY RGD-PEPTIDES: EXPERIMENTAL RESEARCH
Evgeniya O. Krivkina1*, Vladimir N. Silnikov2, Andrey V. Mironov1, Elena A. Velikanova1, Evgeniya A. Senokosova1, Tatyana V. Glushkova1, Tatyana N. Akentieva1, Yulia A. Kudryavtseva1, Larisa V. Antonova1
1 Research Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases, 6, Sosnoviy buvl., Kemerovo, 650002, Russian Federation
2 Institute of Chemical Biology and Fundamental Medicine, 8, Lavrentiev ave., Novosibirsk, 630090, Russian Federation
Research goals. To study the effectiveness of RGD-peptide modification of the small-diameter biodegradable vascular grafts depending on the type of a linker and RGD configuration.
Material and Methods. Tubular scaffolds with a diameter of 1.5 and 4.0 mm were produced by electrospinning from polyhydroxybutyrate/valerate (PHBV) and polycaprolactone (PCL). The PHBV/PCL grafts were modified with RGD peptides. In vitro experiments showed the degree of erythrocyte hemolysis and adhesion of the platelets and endothelial cells when in contact with a modified surface. The physico-mechanical properties and the structure of graft surface were studied before and after modification. The PHBV/PCL and PHBV/PCL/RGD vascular grafts were implanted into the abdominal aorta of rats for the periods of 1 and 3 months. Explant samples were studied using confocal microscopy and histological methods. Results. The results of physical and mechanical tests showed a significant decrease in the strength properties of the PHBV/PCL/ RGD grafts relative to the unmodified analogs. A significant increase in platelet aggregation was found in the modified grafts. The level of adhesion of the endothelial cells on the modified surfaces was higher than that on the unmodified surfaces. Short-term implantation of the grafts for 1 and 3 months showed that the modified grafts had higher patency and a less tendency to calcification compared with the unmodified grafts. Immunofluorescence study demonstrated the significant superiority of the modified vascular grafts in terms of stimulating the formation of a mature endothelial monolayer. A longer linker of 4,7,10-trioxa-1,13-tridecane diamine was found to increase the bioavailability of RGD peptides; the use of RGDK and c[RGDFK] for surface modification of the grafts stimulated early endothelialization of the internal surface of the implants and reduced the prosthetic wall calcification tendency, which together increased the patency of the implanted grafts.
Conclusion. In short-term implantation of biodegradable vascular grafts modified with RGD peptides, the grafts with RGDK and c[RGDFK], attached to the surface of the prostheses through the 4,7,10-triox-1,13-tridecane diamine linker, showed the best results in terms of endothelial adhesion and maintenance of the viability of the endothelial cells in vitro and endothelialization in vivo; these grafts had high patency after implantation into the bloodstream of small laboratory animals and a less tendency to calcification.
Keywords: biodegradable vascular grafts, electrospinning, RGD-peptides.
Conflict of interest: the authors do not declare a conflict of interest.
Financial disclosure: no author has a financial or property interest in any material or method mentioned. This work was
supported by the comprehensive program of fundamental scientific research of the Siberian Branch of
the Russian Academy of Sciences within the framework of the fundamental research institute KPSSZ
No. 0546-2015-0011 "Pathogenetic rationale for the development of implants for cardiovascular
surgery based on biocompatible materials, with the implementation of a patient-oriented approach
using mathematical modeling, tissue engineering, and -genomic predictors".
For citation: Krivkina E.O., Silnikov V.N., Mironov A.V., Velikanova E.A., Senokosova E.A., Glushkova T.V., Akentieva T.N.,
Kudryavtseva Y.A., Antonova L.V. Biodegradable Vascular Graft Modified by RGD-Peptides: Experimental
Research. The Siberian Medical Journal. 2019;34(2):129-137. https://doi.org/10.29001/2073-8552-
2019-34-2-129-137
Введение
С каждым годом в мире возрастает распространенность сердечно-сосудистых заболеваний [1]. Отсутствие протезов для замещения артерий малого диаметра является одной из нерешенных проблем в кардиохирургии. Тканевая инженерия многообещающее направление медицины для изготовления протезов малого диаметра, объединяющее в себе подходы биоинженерии и клеточной биологии [2, 3]. С помощью данных подходов можно создать функционально активный биодеградируемый сосудистый протез малого диаметра, обладающий высокой проходимостью, атромбогенностью и биосовместимостью, способный со временем замещаться клетками и тканями пациента, формируя на своей основе новый сосуд. Раннее формирование полноценного эндотелиального монослоя на внутренней поверхности графта определяет долгосрочную проходимость сосудистого протеза. В последние годы разработан ряд стратегий для придания внутренней поверхности сосудистых графтов способности адгезировать на своей поверхности эндотелиальные клетки [4].
Одним из перспективных способов модифицирования полимерных каркасов для увеличения их биосовместимости является иммобилизация на поверхности каркасов RGD-пептидов [5]. Последовательность аргинин-глицин-аспарагиновая кислота (RGD) представляет собой сайт клеточной адгезии, присутствующий на многих белках экстрацеллюлярного матрикса [6] и является лигандом для интегринов рецепторов, ответственных за клеточную адгезию, миграцию, пролиферацию, дифферен-цировку и выживание [79].
Цель исследования: изучить эффективность модифицирования RGD-пептидами биодеградируемых сосудистых протезов малого диаметра в зависимости от вида линкера и конфигурации RGD.
Материал и методы
Сосудистые графты 0 1,5 и 4 мм изготавливали методом электроспининга на аппарате Nanon-01A (MECC CO) из смеси полигидроксибутирата/валерата (PHBV, Sigma Aldrich, США) и поликапролактона (PCL, Sigma Aldrich, США) в трихлорметане (МиниМед, Россия). Модифицирование RGD-пептидами проводили в несколько этапов.
Для модифицирования поверхности нетканых матриксов в качестве линкера использовали амины (Sigma Aldrich, США): гексаметилендиамин - (A1) или 4,7,10-Ыоха-1,13-тридеканди-амин - (A2), а также глутаровый альдегид, нингидрин, аскорбиновую кислоту.
Модифицирование поверхности PHBV/PCL графтов осуществляли RGD содержащими пептидами, синтезированными в ООО НаноТех-С (Россия): RGDK - P1; AhRGD - P2; циклический пептид c[RGDFK] - P3. Аминолиз графтов проводили в течение 60 мин для А1 и 30 мин для А2. Далее графты отмывали смесью изопропанол:вода 1:1, бидистиллированной водой, 0,1%-ым раствором тритон Х-100, бидистиллированной водой. После этого образцы обрабатывали 2%-ым раствором глутарового альдегида (Sigma Aldrich, США) в воде в течение 3 ч при 24 °С, отмывали бидистиллированной водой, помещали в раствор 0,2 мг/мл одного из пептидов (P1, P2 или P3) в 50 мМ карбонатном буфере (рН=8,5), содержащем 2,5 мМ цианоборгидрид натрия, выдерживали в течение 4 ч при 24 °С. После присоединения пептида графты отмывали 0,1%-ым раствором тритон Х-100 и затем бидистиллированной водой.
Качество проведенного модифицирования оценивали с помощью нингидринового теста и посредством определения ар-гинин-содержащего пептида [9, 10].
Таким образом, было получено 6 видов графтов с разной модификацией: A1P1, А1Р2, А1Р3, А2Р1, А2Р2, А2Р3.
Оценка физико-механических свойств
Изучение физико-механических свойств сосудистых графтов PHBV/PCL и PHBV/PCL/RGD проводили в условиях одноосного растяжения в соответствии с ГОСТ 270-75. В качестве контроля использовали нативную внутреннюю грудную артерию человека (a.mammaria). Испытания проведены на универсальной испытательной машине серии Z (Zwick/Roell, Германия).
Для анализа гемосовместимости полимерных каркасов была проведена оценка гемолиза эритроцитов, адгезии и агрегации тромбоцитов, адгезии и жизнеспособности колониефор-мирующих эндотелиальных клеток.
Оценка гемолиза эритроцитов
Для изучения степени гемолиза эритроцитов использовали свежую донорскую кровь, добавляя в нее цитрат натрия. Образцы помещались в бюксы с физиологическим раствором, которые ставили в термостат при 37 °С. Для положительного и отрицательного контроля применяли физиологический раствор и дистиллированную воду. После инкубации в бюксы добавляли цитратную кровь и снова помещали в термостат при 37 °С. После инкубации производили отбор растворов из бюксов в соответствующие пробирки с последующим центрифугированием с целью осаждения эритроцитов. Оптическую плотность полученных растворов измеряли на спектрофотометре GENESYS 6 (Thermo SCIENTIFIC, США).
Степень гемолиза Н (%) определяли по следующей формуле:
'"' ' : " ,
D -D
¡к ле
где Dt - оптическая плотность пробы, инкубируемой с исследуемым материалом; D - оптическая плотность положительно-
1 ' ne
го контроля; D - оптическая плотность пробы после 100%-го гемолиза.
За полное отсутствие гемолиза принимали среднее значение показателя оптической плотности при измерении физиологического раствора с кровью (положительный контроль), которое было равно 0. За 100%-й гемолиз принимали среднее значение оптической плотности прибора при измерении дистиллированной воды с кровью (отрицательный контроль).
Оценка агрегации тромбоцитов
Исследование агрегации тромбоцитов после контакта с исследуемым материалом проводили согласно стандарту ISO 10993.4. Для этого использовали свежую донорскую кровь, в которую добавляли цитрат натрия. С целью получения обогащенной тромбоцитами плазмы (ОТП) проводили центрифугирование крови. Бедную тромбоцитами плазму (БТП) получали при помощи повторного центрифугирования ОТП. БТП использовали для калибровки прибора. В качестве положительного контроля использовали интактную ОТП. Измерения осуществляли в спонтанном режиме без индукторов агрегации. Для восстановления уровня ионов Са+2 в цитратной крови применяли раствор Са^2 с молекулярной массой 0,025 М, после чего производили измерения. Соотношение пробы и реагента составило 250 мкл ОТП + 25 мкл Сай.,. Время контакта исследуемых образцов с ОТП составило 3 мин [1113]. Измерение максимума агрегации тромбоцитов крови
проводили с помощью полуавтоматического 4-канального анализатора агрегации тромбоцитов АРАСТ 4004 (LABiTec, Германия).
Оценка адгезии и жизнеспособности колониеформирующих эндотелиальных клеток
Для культивирования на поверхности биодеградируемых нетканых матриксов использованы колониеформирующие эндотелиальные клетки человека (КФЭК), полученные по оригинальному протоколу [14].
Образцы стерильных матриксов PHBV/PCL и PHBV/PCL/RGD фиксировали на дно стерильных 24-луночных культуральных планшетов внутренней поверхностью вверх. На образцы матриксов вносили по 2,5х105 клеток и культивировали в течение 3 суток. Смену среды проводили ежедневно.
Абсолютное количество клеток на 1 мм2 поверхности, относительное содержание живых и погибших клеток на матриксах оценивали с помощью флуоресцентной микроскопии на инвертированном микроскопе Axio Observer Z1 (Carl Zeiss, Германия), предварительно окрашивая клетки на матриксах ядерными красителями этидиумом бромидом (Sigma Aldrich, США; оранжевое окрашивание ядер погибших клеток) и Hoechst 33342 (Sigma Aldrich, США; синее окрашивание ядер всех адгезированных клеток). Относительное количество мертвых клеток высчитывали по формуле: абс. кол-во мертвых клеток 100% / абс. кол-во всех адгезированных клеток. Относительное количество живых клеток определяли путем вычитания доли мертвых клеток из 100% адгезированных клеток.
Изучение адгезии тромбоцитов к поверхности матриксов методом сканирующей электронной микроскопии (СЭМ)
Метод оценки степени адгезии тромбоцитов крови к поверхности исследуемых материалов основан на визуальной оценке степени трансформации адгезированных тромбоцитов, а также их количественной оценке [15].
Образцы полимерных графтов размером 0,5 см2 инкубировали в обогащенной тромбоцитами плазме, полученной из свежей цитратной донорской крови посредством центрифугирования. После инкубирования образцы промывали фосфат-но-солевым буферным раствором (PBS, pH-7,4) для удаления неадсорбированных компонентов плазмы. Далее образцы фиксировали в 2%-ом растворе глутарового альдегида, промывали PBS и обезвоживали в серии спиртов с восходящей концентрацией от 30 до 100% (30, 50, 70, 80 и 100%). После обезвоживания образцы досушивали при комнатной температуре. Далее образцы монтировали на специальные столики с помощью углеродного скотча, после чего на их поверхности формировали токопроводящее золото-палладиевое покрытие при помощи вакуумной установки Emitech SC 7640 (Quorum Technologies, Англия). Оценку степени адгезии тромбоцитов осуществляли с помощью сканирующего электронного микроскопа S-3400N (Hitachi, Япония) при увеличении х2000. Адгезивную способность поверхности материалов оценивали по индексу деформации тромбоцитов, который рассчитывали по формуле:
Индекс деформации = (Количество типа I х 1 + количество типа II х 2 + количество типа III х 3 + количество типа IV х 4 + количество типа V х 5) / общее количество тромбоцитов.
Изучение адгезии эндотелиальных клеток к поверхности матриксов методом СЭМ
Пробоподготовка клеточно-заселенных образцов графтов включала фиксацию образцов в 1%-ом растворе глутарового
альдегида (Sigma Aldrich, США) с последующей постфиксацией в растворе 1%-го тетраоксида осмия (Serva Electrophoresis, Германия). Далее осуществляли дегидратацию образцов в спиртах восходящей концентрации от 50 до 90%. После процесса досушивания в термостате при температуре 37 °С образцы монтировали на специальные столики и методом ионного распыления формировали на их поверхности токопроводящее (золо-то-палладиевое) покрытие толщиной до 30 нм, используя вакуумный пост Emitech SC 7640 (Quorum Technologies, Англия). Исследование поверхности образцов проводили на сканирующем электронном микроскопе S-3400N (Hitachi, Япония).
Оценка проходимости сосудистых графтов, имплантированных в брюшную аорту крыс
Для выявления наиболее действенного сочетания амина и RGD-содержащего пептида, использованных для модифицирования полимерных графтов, сосудистые протезы PHBV/PCL 0 1,5 мм, немодифицированные и модифицированные различными RGD-пептидами, имплантировали в брюшную часть аорты самцов крыс популяции Wistar массой тела 400-450 г сроком на 1 и 3 мес. Опыты проводили с соблюдением принципов гуманного обращения с животными, регламентированных требованиями Европейской конвенции (Страсбург, 1986). Крыс содержали при свободном доступе к пище и воде на рационе питания. Введение животных в наркоз осуществляли 3%-ым изофлураном, операцию проводили при ингаляционном наркозе 1,5%-ым изофлураном. Сосудистые протезы PHBV/PCL (n=12) и PHBV/PCL/RGD [(A1P1 (n=12); A1P2 (n=12); A1P3 (n=12); A2P1 (n=12); A2P2 (n=12); A2P3 (n=12)] диаметром 1,5 мм и длиной 10 мм имплантировали в брюшную часть аорты по принципу «конец в конец». Для наложения анастомозов использовали нить Prolene 8-0. Для ушивания мягких тканей передней брюшной стенки применяли Лавсан 4/0.
По истечении срока имплантации проведено гистологическое исследование срезов эксплантированных сосудистых протезов с прилежащими участками аорты. Окрашивание срезов осуществляли гематоксилином и эозином (BioVitrum, Россия), по Ван-Гизону (BioVitrum, Россия), орсеином (BioVitrum, Россия), ализариновым красным С (ЛенРеактив, Россия) и ядерным флуоресцентным красителем Dapi (Sigma, США).
Иммунофлуоресцентное исследование графтов проводили методом сканирующей лазерной микроскопии на микроскопе LSM 700 (Carl Zeiss, Германия) с предварительной окраской специфическими флуоресцентными антителами на CD 34, CD 31, vWF, collagen I и IV типа.
Результаты и обсуждение
Результаты физико-механических испытаний показали статистически значимое снижение прочностных свойств графтов после модификации RGD вне зависимости от вида использованного линкера и пептида (табл. 1). Снижение прочностных свойств относительно немодифицированных аналогов наблюдали как по силе, так и по напряжению. Прочность сосудистых графтов с A1 снижалась в среднем в 4,1 раза относительно не-модифицированных аналогов и в 2,6 раза - относительно прочности a.mammaria (p<0,05). Прочность графтов с A2 снизилась в 3,2 раза относительно немодифицированных аналогов и в 2 раза - относительно прочности a.mammaria (p<0,05). Сила, приложенная к образцу до начала его разрушения, снизилась в графтах с A1 в среднем в 3,2 раза, с A2 - в среднем в 2,4 раза относительно немодифицированных аналогов, но статистически значимо не отличалась от значений a.mammaria. В графтах
с A2 сила, приложенная к образцу до начала разрушения, была в 2,4 раза ниже, чем в немодифицированных аналогах (p<0,05), но статистически значимо не отличалась от a.mammaria.
Степень гемолиза эритроцитов после контакта с модифицированными и немодифицированными графтами во всех группах не превышала 2%, что свидетельствует о высокой гемо-совместимости материала.
Вне зависимости от линкера между графтами с различной конфигурацией RGD статистически значимых различий по степени гемолиза не установлено.
Жесткость полимерных графтов, выраженная через модуль Юнга, не менялась после проведенного модифицирования и была почти в 9 раз выше, чем у a.mammaria (табл. 1).
При проведении СЭМ поверхности нетканых матриксов после контакта с тромбоцитами выявлено, что вне зависимости от конфигурации RGD на поверхности графтов A1 определяли наибольшее количество тромбоцитов относительно остальных исследуемых образцов. Активация тромбоцитов после контакта с поверхностью графтов, модифицированных RGD, превалировала на нетканых матриксах А1Р1, А1Р2, А1Р3 (табл. 2).
Таблица 2. Индекс деформации тромбоцитов и процентное распределение типов тромбоцитов
Table 2. Platelet deformation index and percentage distribution of platelet types
Вид графта Соотношение типов тромбоцитов, % Индекс деформации
I II III IV V М (25-75%)
PHBV/PCL 0 15.4 73.1 9.6 1.9 2,7 (1,0-3,0)
А1Р1 5.6 36.1 25 30.6 2.8 2,5 (2,0-3,0)
А1Р2 1.5 11.4 50 31.4 5.7 3,31 (3,0-3,7)*
А1Р3 0 10.8 43.1 30.7 15.4 3,7 (3,4-4,5)*
А2Р1 3.1 31.3 28.1 15.6 21.9 2,6 (1,0-3,7)
А2Р2 0 65.5 24.2 3.4 6.9 1,3 (0,0-2,2)
А2Р3 4.8 28.6 40.5 7.1 19.0 2,9 (2,5-4,0)
Примечание: * p<0,05 относительно значений немодифицированного PHBV/PCL графта. Note:* p<0,05 relative to the values of unmodified PHBV/PCL graft.
Таблица 1. Физико-механические свойства полимерных графтов
Table 1. Physico-mechanical properties of polymer grafts
Вид образца n Предел прочности, MPa М (25-75%) min-max Сила, приложенная к образцу до начала разрушения, Н М (25-75%) min-max Относительное удлинение, % М (25-75%) min-max Емод, MPa М "(25-75%) min-max
A.mammaria 6 2,48 (1,36-3,25) 1,07-6,52 0,92 (0,59-1,72) 0,39-2,82 29,72 (23,51-39,62) 22,0-50,88 2,42 (1,87-3,19) 1,53-3,34
PHBV/PCL 6 3,85 (2,88-4,54) 2,38-4,62 3,05 (2,59-3,34) 2,30-3,69 * 102,7 (79,37-106,3) 74,92-119,23 * 21,8 (19,2-25,2) 18,2-27,5 *
А1Р1 6 1,29 (0,65-1,42) 0,51-1,58* 1,49 (0,67-1,59) 0,53-1,74* 127,39 (31,5-135,52) 17,23-182,52 21,4 (10,2-24,8) 8,46-25,3 *
А1Р2 6 0,81 (0,77-1,1) 0,68-1,2* * 0,69 (0,67-1,15) 0,61-1,21* 83,76 (81,2-132,8) 31,47-154,3 * 11,8 (11,1-17,5) 9,64-18,3* *
А1Р3 6 0,72 (0,45-0,89) 0,3-1,0* * 0,64 (0,42-0,9) 0,28-0,97* 84,0 (17,26-99,83) 9,19-148,9 8,11 (6,86-12,4) 5,05-12,7* *
А2Р1 6 1,2 (1,14-1,22) 1,1-1,56* 1,33 (1,29-1,49) 1,16-1,68* 65,73 (65,03-121,46) 27,53-155,63 * 22,1 (21,5-24,6) 20,7-24,9 *
А2Р2 6 1,21 (1,21-1,23) 1,14-1,26* 1,26 (1,25-1,27) 1,24-1,39* 109,93 (93,28-127,23) 86,47-132,54 * 22,9 (21,1-23,1) 21,0-23,3 *
А2Р3 6 1,18 (1,03-1,6) 1,02-1,79 * * 1,26 (1,13-1,74) 1,11-1,76* 136,74 (84,43-181,15) 76,32-198,09 * 19,4 (18,6-24,5) 17,9-27,6 *
Примечание: * р<0,05 относительно PHBV/PCL; # р <0,05 относительно a.mammaria. Note:* р<0,05 relative to PHBV / PCL; # p<0.05 relative to a.mammaria.
Спустя трое суток культивирования на поверхности образцов А2Р3 эндотелиальных клеток было в 6 раз больше, чем на других матриксах. Доля погибших клеток на немодифициро-ванных матриксах составила 76,5%, на модифицированных RGD она варьировала от 0 до 8,9%. При этом на поверхности RGD модифицированных матриксов жизнеспособными оставались
90%, тогда как на поверхности немодифицированных аналогов не более 20% клеток.
Сканирующая электронная микроскопия образцов после культивирования с эндотелиальными клетками показала, что вне зависимости от вида линкера (А1 или А2) модификация Р3 имела более выраженный эффект в плане клеточной адгезии (рис. 1).
А1Р1 А2Р1 Д-1Р2 А2Р2
Рис. 1. СЭМ: адгезия колониеформирующих эндотелиальных клеток после 3 суток культивирования на поверхности немодифицированных и модифицированных RGD-пептидами нетканых матриксов
Fig. 1. SEM: adhesion of colony-forming endothelial cells after 3 days of cultivation on the surface of unmodified and modified RGD-peptides non-woven matrices
По результатам гистологического и иммунофлуоресцент-ного исследований эксплантированных сосудистых протезов выявлено, что спустя 1 мес. имплантации два из шести граф-тов РНВ^Р^ оказались с обтурирующим тромбом (33,3%). В оставшихся 66,7% проходимых графтов клеточность стенки умеренная. Кальций не обнаружен. Спустя 3 мес. имплантации процент проходимых немодифицированных графтов по-прежнему составлял 66,7%. При этом в половине проходимых графтов определены отложения кальция под неоинтимой (табл. 3).
По результатам гистологического исследования эксплантированных графтов установлено, что графты А2Р1 и А2Р3 были проходимы в 100% случаев как через 1 мес., так и через 3 мес. имплантации. При этом графты А2Р1 и А2Р3 демонстрировали 100%-ю проходимость, качественную эндотелизацию, клеточность стенки и меньшую склонность к кальцификации.
Иммунофлуоресцентное исследование определило явное превосходство сосудистых графтов с длинным линкером А2 в плане стимулирования формирования зрелого эндотелия и отложения коллагена IV типа (рис. 2).
Рис. 2. Количественный анализ изображений конфокальной микроскопии эксплантированных образцов сосудистых графтов, окрашенных на CD31, CD34, внутриклеточный и субэндотелиальный фактор фон Виллебранда vWF, коллаген IV типа
Fig. 2. Quantitative analysis of images of confocal microscopy of explanted vascular grafts samples stained with CD31, CD34, intracellular and subendothelial von Willebrand factor vWF, type IV collagen
Таблица 3. Наличие/отсутствие кальция в стенке графтов на разных сроках имплантации, %
Table 3. The presence/absence of calcium in the wall of grafts at different periods of implantation, %
Графт 1 мес. 3 мес.
PHBV/PCL 0/100 50/50
A1P1 33,3/66,7 33,3/66,7
A1P2 33,3/66,7 50/50
A1P3 0/100 50/50
A2P1 0/100 33,3/66,7
A2P2 50/50 50/50
A2P3 0/100 33,3/66,7
Выводы
Таким образом, биодеградируемые сосудистые протезы PHBV/PCL/RGD по прочности и силе, приложенной к образцу до начала разрушения, больше соответствовали a.mammaria, чем их немодифицированные аналоги. Более длинный линкер 4,7,10-триокса-1,13-тридекандиамин значимо увеличил биодоступность RGD-пептидов. Сосудистые протезы с вариантами модифицирования A2P1 и A2P3 демонстрировали лучшие результаты в плане адгезии и поддержания жизнеспособности эндотелиальных клеток in vitro, обладали высокой проходимостью после имплантации в сосудистое русло мелких лабораторных животных и качественной эндотелизацией внутренней поверхности, меньшей склонностью к кальцифи-кации.
Полученные результаты определяют пригодность модифицирования пептидами RGDK или c[RGDFK] поверхности биоде-градируемых сосудистых протезов малого диаметра.
Литература
1. Бокерия Л.А., Милевская Е.Б., Кудзоева З.Ф., Прянишников В.В. Сердечно-сосудистая хирургия - 2017. Болезни и врожденные аномалии системы кровообращения. М.: НМИЦССХ им. А.Н. Бакулева МЗ РФ; 2018:252.
2. Taggart D.P. Current status of arterial grafts for coronary artery bypass grafting. Annals of Cardiothoracic Surgery. 2013;2(4):427-430. DOI: 10.3978/j.issn.2225-319X.2013.07.21.
3. Fisher M.B., Mauck R.L. Tissue engineering and regenerative medicine: recent innovations and the transition to translation. Tissue Engineering Part B Reviews. 2013;19(1):1-13. DOI: 10.1089/ten.TEB.2012.0723.
4. Ren X., Feng Y., Guo J., Wang H., Li Q., Yang J., et al. Surface modification and endothelialization of biomaterials as potential scaffolds for vascular tissue engineering applications. Chemical Society Reviews. 2015;44(15):5680-5742. DOI: 10.1039/c4cs00483c.
5. Wang F., Li Y., Shen Y., Wang A., Wang S., Xie T. The functions and applications of RGD in tumor therapy and tissue engineering. International Journal of Molecular Sciences. 2013;14(7):13447-13462. DOI: 10.3390/ijms140713447.
6. Aye S.S., Li R., Boyd-Moss M., Long B., Pavuluri S., Bruggeman K., et al. Scaffolds formed via the non-equilibrium supramolecular assembly of the synergistic ECM peptides RGD and PHSRN demonstrate improved cell attachment in 3D. Polymers. 2018;10(7):690. DOI: 10.3390/ polym10070690.
7. Harburger D.S., Calderwood D.A. Integrin signaling at a glance. J. Cell Sci. 2009;122(2):159-163. DOI: 10.1242/jcs.018093.
8. Liu H., Li X., Niu X., Zhou G., Li P., Fan Y. Improved hemocompatibility and endothelialization of vascular grafts by covalent immobilization of
sulfated silk fibroin on poly (lactic-co-glycolic acid) scaffolds. Biomacro-molecules. 2011;12(8):2914-2924. DOI: 10.1021/bm200479f.
9. Gabriel M., van Nieuw Amerongen G.P., van Hinsbergh V.W., Ameron-gen A.V., Zentner A. Direct grafting of RGD-motif-containing peptide-on the surface of polycaprolactone films. J. Biomater. Sci. Polym. Ed. 2006;17(5):567—577.
10. Lin H.B., Cooper S.L. Synthesis and Cell-Adhesion Properties of Poly-urethanes Containing Covalently Grafted RGD-Peptides. Advanced Biomaterials in Biomedical Engineering and Drug Delivery Systems. 1996:198-202.
11. Parniak M.A., Lange G., Viswanatha T. Quantitative determination of monosubstituted guanidines: a comparative study of different procedures. J. Biochem. Biophys. Methods. 1983;7(4):267-276.
12. Arimura S., Kawahara K., Biswas K.K., Abeyama K., Tabata M., Shimoda T., et al. Hydroxyapatite formed on/in agarose gel induces activation of blood coagulation and platelets aggregation. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials. 2007;81(2):456-461.
13. Jung F., Braune S., Lendlein A. Haemocompatibility testing of biomaterials using human platelets. Clin. Hemorheol. Microcirc. 2013;53(12):97-115. DOI: 10.3233/CH-2012-1579.
14. Matveeva V., Khanova M., Sardin E., Antonova L., Barbarash O. Endo-vascular interventions permit isolation of endothelial colony-forming cells from peripheral blood. International Journal of Molecular Sciences. 2018;19(11):34-53. DOI: 10.3390/ijms19113453.
15. Shen X., Su F., Dong J., Fan Z., Duan Y., Li S. In vitro biocompatibility evaluation of bioresorbable copolymers prepared from L-lactide, 1, 3-trimethylene carbonate and glycolide for cardiovascular applications. Journal of Biomaterials Science, Polymer Edition. 2015;26(8):497-514. DOI: 10.1080/09205063.2015.1030992.
References
1. Bokeria L.A., Milevskaya E.B., Kudzoeva Z.F., Pryanishnikov V.V. Cardiovascular Surgery 2017. Diseases and congenital malformations of the circulatory system. Moscow: NIMISSH named after A.N. Bakulev Ministry of Health of the Russian Federation; 2018:252 (In Russ.).
2. Taggart D.P. Current status of arterial grafts for coronary artery bypass grafting. Annals of Cardiothoracic Surgery. 2013;2(4):427430. DOI: 10.3978/j.issn.2225-319X.2013.07.21.
3. Fisher M.B., Mauck R.L. Tissue engineering and regenerative medicine: recent innovations and the transition to translation. Tissue Engineering Part B Reviews. 2013;19(1):1-13. DOI: 10.1089/ten. TEB.2012.0723.
4. Ren X., Feng Y., Guo J., Wang H., Li Q., Yang J., et al. Surface modification and endothelialization of biomaterials as potential scaffolds for vascular tissue engineering applications. Chemical Society Reviews. 2015;44(15):5680—5742. DOI: 10.1039/c4cs00483c.
5. Wang F., Li Y., Shen Y., Wang A., Wang S., Xie T. The functions and applications of RGD in tumor therapy and tissue engineering. International Journal of Molecular Sciences. 2013;14(7):13447-13462. DOI: 10.3390/ijms140713447.
6. Aye S.S., Li R., Boyd-Moss M., Long B., Pavuluri S., Bruggeman K., et al. Scaffolds formed via the non-equilibrium supramolecular assembly of the synergistic ECM peptides RGD and PHSRN demonstrate improved cell attachment in 3D. Polymers. 2018;10(7):690. DOI: 10.3390/ polym10070690.
7. Harburger D.S., Calderwood D.A. Integrin signaling at a glance. J. Cell Sci. 2009;122(2):159-163. DOI: 10.1242/jcs.018093.
8. Liu H., Li X., Niu X., Zhou G., Li P., Fan Y. Improved hemocompatibility and endothelialization of vascular grafts by covalent immobilization of sulfated silk fibroin on poly (lactic-co-glycolic acid) scaffolds. Biomacro-molecules. 2011;12(8):2914-2924. DOI: 10.1021/bm200479f.
9. Gabriel M., van Nieuw Amerongen G.P., van Hinsbergh V.W., Ameron-gen A.V., Zentner A. Direct grafting of RGD-motif-containing peptide-
on the surface of polycaprolactone films. J. Biomater. Sci. Polym. Ed. 2006;17(5):567—577.
10. Lin H.B., Cooper S.L. Synthesis and Cell-Adhesion Properties of Polyure-thanes Containing Covalently Grafted RGD-Peptides. Advanced Biomaterials in Biomedical Engineering and Drug Delivery Systems. 1996:198-202.
11. Parniak M.A., Lange G., Viswanatha T. Quantitative determination of monosubstituted guanidines: a comparative study of different procedures. J. Biochem. Biophys. Methods. 1983;7(4):267-276.
12. Arimura S., Kawahara K., Biswas K.K., Abeyama K., Tabata M., Shimoda T., et al. Hydroxyapatite formed on/in agarose gel induces activation of blood coagulation and platelets aggregation. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials. 2007;81(2):456-461.
13. Jung F., Braune S., Lendlein A. Haemocompatibility testing of biomaterials using human platelets. Clin. Hemorheol. Microcirc. 2013;53(1 2):97-115. DOI: 10.3233/CH-2012-1579.
14. Matveeva V., Khanova M., Sardin E., Antonova L., Barbarash O. Endo-vascular interventions permit isolation of endothelial colony-forming cells from peripheral blood. International Journal of Molecular Sciences. 2018;19(11):34-53. DOI: 10.3390/ijms19113453.
15. Shen X., Su F., Dong J., Fan Z., Duan Y., Li S. In vitro biocompatibility evaluation of bioresorbable copolymers prepared from L-lactide, 1, 3-trimethylene carbonate and glycolide for cardiovascular applications. Journal of Biomaterials Science, Polymer Edition. 2015;26(8):497-514. DOI: 10.1080/09205063.2015.1030992.
Информация о вкладе авторов
Кривкина Е.О. - изготовление биодеградируемых сосудистых графтов, гистологическое исследование эксплантированных образцов, описание полученных результатов, написание статьи.
Сильников В.Н. - модифицирование графтов RGD-пептидами, описание материалов и методов, описание результатов химической модификации графтов в статье.
Миронов А.В. - имплантация сосудистых графтов в аорту крыс, выведение животных из эксперимента, описание методов имплантации в статье.
Великанова Е.А. - проведение иммунофлуоресцентного исследования, статистический анализ полученных данных, описание результатов в статье.
Сенокосова Е.А. - проведение клеточного эксперимента, статистический анализ результатов клеточного эксперимента, описание результатов в статье.
Глушкова Т.В. - исследование образцов методом сканирующей электронной микроскопии, описание результатов в статье.
Акентьева Т.Н. - проведение экспериментов по оценке гемосо-вместимости матриксов до и после модифицирования, анализ полученных данных, описание результатов в статье.
Кудрявцева Ю.А. - оценка гемосовместимости графтов, статистический анализ полученных данных, описание результатов в статье, экспертиза корректности отображения материала в статье.
Антонова Л.В. - проведение клеточного эксперимента, статистический анализ полученных данных, разработка концепции и дизайна статьи, написание статьи, экспертиза корректности отображения материала в статье.
Сведения об авторах
Кривкина Евгения Олеговна*, младший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий отдела экспериментальной и клинической кардиологии, Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний. ORCID 0000-0002-2500-2147.
E-mail: [email protected].
Сильников Владимир Николаевич, д-р хим. наук, заведующий лабораторией органического синтеза, Институт химической биологии и фундаментальной медицины. ORCID 0000-0002-7100-8953.
E-mail: [email protected].
Миронов Андрей Владимирович, младший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий отдела экспериментальной и клинической кардиологии, Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний. ORCID 0000-00028846-5077.
E-mail: [email protected].
Великанова Елена Анатольевна, канд. биол. наук, научный сотрудник лаборатории клеточных технологий отдела экспериментальной и клинической кардиологии, Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний. ORCID 00000002-1079-1956.
E-mail: [email protected].
Сенокосова Евгения Андреевна, младший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий отдела экспериментальной и клинической кардиологии, Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний. ORCID 0000-0002-9430-937X.
E-mail: [email protected].
Глушкова Татьяна Владимировна, канд. биол. наук, научный сотрудник лаборатории новых биоматериалов отдела экспериментальной и клинической кардиологии, Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний. ORCID 0000-0002-4114-505X.
E-mail: [email protected].
Information about the authors
Evgeniya O. Krivkina*, Junior Research Scientist, Laboratory of Cell Technologies, Department of Experimental and Clinical Cardiology, Research Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases. ORCID 0000-00022500-2147.
E-mail: [email protected].
Vladimir N. Silnikov, Dr. Sci. (Chem.), Head of the Laboratory of Organic Synthesis, Institute of Chemical Biology and Fundamental Medicine. ORCID 0000-0002-7100-8953.
E-mail: [email protected].
Andrey V. Mironov, Junior Research Scientist, Laboratory of Cell Technologies, Department of Experimental and Clinical Cardiology, Research Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases. ORCID 0000-00028846-5077.
E-mail: [email protected].
Elena A. Velikanova, Cand. Sci. (Biol.), Research Scientist, Laboratory of Cell Technologies, Department of Experimental and Clinical Cardiology, Research Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases. ORCID 0000-0002-1079-1956.
E-mail: [email protected].
Evgeniya A. Senokosova, Junior Research Scientist, Laboratory of Cell Technologies, Department of Experimental and Clinical Cardiology, Research Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases. ORCID 0000-0002-9430-937X.
E-mail: [email protected].
Tatyana V. Glushkova, Cand. Sci. (Biol.), Research Scientist, Laboratory of New Biomaterials, Department of Experimental and Clinical Cardiology, Research Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases. ORCID 0000-0002-4114-505X.
E-mail: [email protected].
Tatyana N. Akentieva, Junior Research Scientist, Laboratory of New Biomaterials, Department of Experimental and Clinical Cardiology, Research
Акентьева Татьяна Николаевна, младший научный сотрудник лаборатории новых биоматериалов отдела экспериментальной и клинической кардиологии, Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний. ORCID 0000-0002-00339376.
E-mail: [email protected].
Кудрявцева Юлия Александровна, д-р биол. наук, заведующая отделом экспериментальной и клинической кардиологии, Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний. ORCID 0000-0002-6134-7468.
E-mail: [email protected].
Антонова Лариса Валерьевна, д-р мед. наук, заведующая лабораторией клеточных технологий отдела экспериментальной и клинической кардиологии, Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний. ORCID 0000-0002-88740788.
E-mail: [email protected].
Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases. ORCID 0000-00020033-9376.
E-mail: [email protected].
Yulia A. Kudryavtseva, Dr. Sci. (Biol.), Head of the Department of Experimental and Clinical Cardiology, Research Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases. ORCID 0000-0002-6134-7468.
E-mail: [email protected].
Larisa V. Antonova, Dr. Sci. (Med.), Head of the Laboratory of Cell Technologies, Department of Experimental and Clinical Cardiology, Research Institute for Complex Issues of Cardiovascular Diseases. ORCID 0000-00028874-0788.
E-mail: [email protected].
Поступила 08.05.2019 Received May 08, 2019
