CC BY
123
АМПЛИФИКАЦИЯ ГЕНА BCR-ABL У ПАЦИЕНТОВ С ХРОНИЧЕСКИМ МИЕЛОИДНЫМ ЛЕЙКОЗОМ, РЕФРАКТЕРНЫХ К ИМАТИНИБУ
С.И. Куцев, С.В. Морданов
Ростовский государственный медицинский университет, Ростов-на-Дону
Контакты: Сергей Иванович Куцев [email protected]
У больных хроническим миелоидным лейкозом (ХМЛ), получающих терапию иматинибом, с высокой частотой достигается полный цитогенетический ответ. Тем не менее у некоторых пациентов наблюдается первичная или приобретенная резистентность к иматинибу. В данной работе исследовано значение амплификации гена BCR-ABL в развитии первичной резистентности к иматинибу у пациентов с ХМЛ. Амплификация гена BCR-ABL выявлена у 18% больных ХМЛ, рефрактерных к иматинибу. Показано достоверное снижение вероятности достижения полного цитогенетического ответа у пациентов с амплификацией гена BCR-ABL.
Ключевые слова: хронический миелоидный лейкоз, рефрактерность к иматинибу, амплификация гена BCR-ABL
BCR-ABL GENE AMPLIFICATION IN PATIENTS WITH CHRONIC MYELOID LEUKEMIA AND IMATINIB RESISTANCE
S.I. Kutzev, S.V. Mordanov
Rostov state medical university, Rostov-on-Don
The treatment of Ph-positive chronic myeloid leukemia (CML) has achieved significant progress with the tyrosine kinase inhibitor (TKI) imatinib. Complete cytogenetic remission is a standard for patients treated in chronic phase. Nevertheless, primary and acquired resistance has been observed in few CML patients. Imatinib resistance in patients is related to heterogeneous mechanisms. The role of the BCR-ABL-related mechanism of imatinib resistance —BCR-ABL gene ampliphication in primary resistant cases was studied. The BCR-ABL gene ampliphication was established in 18% refractory to imatinib patients. Decreasing probability of complete cytogenetic response was revealed in these cases.
Key words: chronic myeloid leukemia, imatinib resistance, BCR-ABL gene ampliphication
Введение
В клинических исследованиях иматиниба (иматиниба мезилат, БТІ571) была показана высокая эффективность этого препарата в терапии хронического миелолейкоза (ХМЛ). Так, через 5 лет от начала терапии гливеком полный гематологический ответ был получен у 98% больных ХМЛ, большой цитогенетический ответ (БЦГО) — у 92% и полный цитогенетический ответ (ПЦГО) — у 87% пациентов; 5-летняя выживаемость без прогрессии заболевания составила 93% [1].
Несмотря на хорошие результаты, существует проблема резистентности к иматинибу. Первичная резистентность (или рефрактерность) определяется как отсутствие гематологического ответа через 3 мес, малого цитогенетического ответа (РИ-хромосома выявляется в 35—65% клеток костного мозга) — через 6 мес, БЦГО (РИ-хромосома определяется менее чем в 35% клеток костного мозга) — через 12 мес, ПЦГО (РИ-хромосома в клетках костного мозга не выявляется) — через 18 мес
терапии. Вторичная, или приобретенная, резистентность — это потеря гематологического, цитогенетического или молекулярного ответа либо прогрессия заболевания до фазы акселерации или бластного криза [2].
В основе развития резистентности к иматинибу лежат несколько механизмов, которые подразделяют на BCR-ABL-зависимые и BCR-ABL-незави-симые [3]. К BCR-ABL-зависимым механизмам относят мутации и амплификацию гена BCR-ABL. BCR-ABL-независимые механизмы включают в себя «клональную эволюцию» (появление дополнительных хромосомных аберраций в РИ-позитивных лейкозных клетках), активацию BCR-ABL-незави-симых путей, например, членов семейства Бгс-ки-наз, избыточное связывание иматиниба с сывороточным а-1-кислым гликопротеином, дисбаланс между клеточными белками — переносчиками препарата.
Данные литературы о роли амплификации гена BCR-ABL в развитии резистентности к има-тинибу довольно ограничены. Впервые в экспе-
ОНКОГЕМАТОЛОГИЯ 3 ’2 0 0 9
ОНКОГЕМАТОЛОГИЯ 3 ’2 0 0 9
риментах in vitro было показано, что гиперэкспрессия BCR-ABL-транскрипта, в основе которой лежит амплификация гена BCR-ABL, является одним из механизмов резистентности к иматинибу [4-6].
M.E. Gorre и соавт. [7] методом флуоресцентной гибридизации in situ (FISH) впервые показали in vivo амплификацию гена BCR-ABL у 3 из 9 пациентов, резистентных к иматинибу (33,3%).
A. Hochhaus также обнаружил множественные копии гена BCR-ABL методом FISH у 2 (28,6%) из 7 обследованных больных ХМЛ с первичной резистентностью и не выявил их ни у одного из 25 пациентов с рецидивом ХМЛ [8].
Цель исследования — изучение роли BCRABL-зависимого механизма резистентности, а именно — амплификации гена BCR-ABL — в развитии рефрактерности к иматинибу.
Материалы и методы
Проведено обследование 298 пациентов с диагнозом ХМЛ, подтвержденным цитогенетическим (обнаружение транслокации t(9;22)(q34;q11.2) в клетках костного мозга) и/или молекулярно-цитогенетическим (обнаружение слитного гена BCR-ABL в клетках костного мозга) методом. Все включенные в исследование больные ХМЛ получали иматиниб в дозе 400, 600 или 800 мг/сут в течение >6 мес в соответствии с рекомендациями Европейского общества по лечению лейкозов (ELN) [2]. Обязательным условием включения больных ХМЛ в исследование являлось наличие информированного согласия пациентов на анонимное использование результатов проведенного обследования в научных целях.
Медиана возраста на момент постановки диагноза составила 46,6 года (минимальный возраст — 12,9, максимальный — 77,4 года). Соотношение мужчины/женщины — 137/161. В исследование включались пациенты, начавшие терапию иматинибом как в хронической фазе (n=215; 72,1%), так и в фазе акселерации (n=83; 27,9%). Медиана длительности терапии иматинибом составила 24 (от 6 до 84) мес.
С целью цитогенетической диагностики и мониторинга эффективности терапии исследовали стернальный пун-ктат костного мозга. Всего было выполнено 1190 диагностических и мониторинговых исследований у 298 пациентов. Культивирование клеток костного мозга проводилось по об-
Результаты FISH-исследований костного мозга больных ХМЛ с амплификацией гена BCR-ABL
№ Ф.И. Результат FISH-анализа
1 Щ.Л. nuc ish (ABL1x3),(BCRx3),(ABL1conBCRx2)[161/200]/ (ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[10/200]/(ABL1x8-12), (BCRx9-12), (ABL1conBCRx9-12) [3/200] /(ABL1,BCR)x2[26/200]
2 Х.К. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[111/200]/(ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[71/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[18/200]
3 Т.З. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[87/200]/ (ABL1x2),
(BCRx2), (ABL1conBCRx1)[62/200]/ (ABL1x5-6), (BCRx5-6), (ABL1conBCRx4)[6/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[45/200]
4 С.О. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[106/140]/ (ABL1x2),
(BCRx2), (ABL1conBCRx1)[14/140]/ (ABLx4), (BCRx4), (ABL1conBCRx3)[4/140]/ (ABL1x2), (BCRx2)[76/140]
5 Р.Л. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[140/200]/ (ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[44/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[16/200]
6 П.А. nuc ish (ABL1x4), (BCRx4), (ABL1conBCRx3)[144/200]/ (ABL1x3),
(BCRx3), (ABL1conBCRx2)[46/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[10/200]
7 П.Л. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[47/200]/ (ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[6/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[147/200]
8 К.С. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[169/200]/ (ABL1x4-5),
(BCRx4-5), (ABL1conBCRx3-4)[6/200]/(ABL1x2),(BCRx2) [25/200]
9 К.В. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[132/200]/ (ABL1x2),
(BCRx2), (ABL1conBCRx1)[35/200]/ (ABL1x4), (BCRx4), (ABL1conBCRx3) [15/200]/ (ABL1x3), (BCRx2), ABL1conBCRx1)[14/200]/(ABL1x2), (BCRx2)[4/200]
10 Б.С. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[28/200]/ (ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[8/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[164/200]
11 Б.О. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[169/200]/ (ABL1x4-5),
(BCRx4-5), (ABL1conBCRx3-4)[11/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[20/200]
12 Б.А. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[136/200]/ (ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[41/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[23/200]
13 М.М. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[102/200]/ (ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[65/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[33/200]
14 Л.Г. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[26/200]/ (ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[23/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[151/200]
15 Д.Л. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[47/200]/ (ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[6/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[147/200]
16 Г.Л. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[154/200]/ (ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[16/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[30/200]
17 С.Р. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[120/200]/ (ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[6/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[74/200]
18 К.В. nuc ish (ABL1x3), (BCRx3), (ABL1conBCRx2)[154/200]/ (ABL1x4),
(BCRx4), (ABL1conBCRx3)[26/200]/ (ABL1x2), (BCRx2)[20/200]
щепринятой методике. Цитогенетические препараты окрашивались GTG-дифференциальным методом. У каждого пациента проанализировано не менее 20 метафазных пластинок клеток костного мозга.
FISH хромосом с ДНК-зондом к слитному гену BCR-ABL проводилась при отсутствии метафаз-ных пластинок в стандартном цитогенетическом исследовании, а также в случае резистентности к терапии иматинибом для выявления амплификации гена BCR-ABL. Всего выполнено 172 FISH-анализа. В работе использован двухцветный ДНК-зонд 22q11.2 LSI BCR SpectruGreen/9q34 LSI ABL SpectrumOrange dual fusion DNA probe («Vysis», Abbott). FISH-анализ проводился согласно протоколу производителя на цитогенетических препаратах, содержащих как метафазные хромосомы, так и интерфазные ядра. В каждом случае ХМЛ проанализировано не менее 200 интерфазных ядер клеток костного мозга. Результаты FISH-исследований приведены в работе в соответствии с Международной цитогенетической номенклатурой 2009 г. [9].
Кариотипирование и FISH-исследования проводили с помощью микроскопа Аксиоплан-2-мот («Carl Zeiss») и программного обеспечения ikaros и isis («Metasystems»).
Статистическая обработка полученных данных осуществлялась с использованием пакета прикладных программ Statistica 6,0 и электронных таблиц Excel 2003. Расчеты выполнены в соответствии с рекомендациями О.Ю. Ребровой [10] по обработке численных результатов экспериментов в медицине.
Результаты и обсуждение
Медиана длительности терапии иматинибом в нашем исследовании составила 24 (от 6 до 84) мес. Из 298 обследованных пациентов с ХМЛ, получавших терапию иматинибом в течение >6 мес, оптимальный ответ, т.е.
БЦГО, достигнут у 197 (66,1%) больных. Из 263 пациентов, получавших терапию иматинибом на протяжении >12 мес, оптимальный ответ, т.е. ПЦГО, получен у 157 (59,7%) пациентов.
Из 197 больных ХМЛ, получавших терапию иматинибом в течение >18 мес, ПЦГО зафиксирован у 97 (49,2%). У остальных 100 больных ХМЛ (50,8%) после 18 мес терапии не было получено ПЦГО, что согласно критериям ELN [2] свидетельствует о реф-рактерности к проводимому лечению.
Рис. 1. Амплификация гена BCR-ABL в BCR-ABL-позитивной клетке костного мозга (последовательность ABL мечена красным цветом флуорохромом SpectrumOrange; последовательности BCR мечена зеленым цветом флуорохромом SpectrumGreen, желтые слитные сигналы гена BCR-ABL указаны стрелками). FISH хромосом с ДНК-зондом к слитному гену BCR-ABL. х1000
В результате проведенного исследования методом FISH с ДНК-зондом к слитному гену BCR-ABL его амплификация выявлена у 18 (18%) рефрактерных пациентов (см. таблицу).
При FISH-исследовании число клеток с амплификацией гена BCR-ABL у каждого пациента варьировало от 3 до 72% из 200 анализированных клеток костного мозга. Количество дополнительных копий гена BCR-ABL в каждой клетке с его амплификацией равнялось от 1 до 6 (рис. 1).
Также был проведен FISH-анализ с ДНК-зон-дом к гену BCR-ABL у 48 больных, достигших оптимального ответа на терапию иматинибом, и у 24 пациентов с впервые выявленным ХМЛ. Ни у одного из этих больных не обнаружено амплификации гена BCR-ABL.
Рис. 2. Вероятность достижения ПЦГО на терапию иматинибом у больных ХМЛ в зависимости от наличия амплификации гена BCR-ABL (синяя кривая — без амплификации; черная кривая — с амплификацией)
ОНКОГЕМАТОЛОГИЯ 3 ’2 0 0 9
ОНКОГЕМАТОЛОГИЯ 3 ’2 0 0 9
В нашем исследовании, выполненном на довольно обширной когорте рефрактерных к имати-нибу пациентов с ХМЛ, амплификация гена BCR-ABL имела место в 18% случаев. С учетом влияния амплификации гена BCR-ABL на достижение цитогенетического ответа на фоне терапии имати-нибом следует отметить, что у некоторых рефрактерных пациентов с дополнительными копиями гена BCR-ABL сохраняется возможность достижения ПЦГО. Однако в нашем исследовании у больных с амплификацией гена BCR-ABL (я=18) вероятность достижения ПЦГО через 36 мес терапии иматинибом не превышает 20%, тогда как у пациентов без амплификации этого гена она достигает 70%. Анализ вероятности достижения ПЦГО в зависимости от наличия амплификации гена BCR-ABL показал ее достоверное (р=0,00034) снижение у больных ХМЛ с амплификацией гена BCR-ABL по сравнению с группой пациентов с ХМЛ без нее (рис. 2).
Таким образом, амплификация гена BCR-ABL является неблагоприятным прогностическим фактором для достижения цитогенетического ответа на фоне терапии иматинибом и предполагает изменение тактики терапии ХМЛ: повышение дозы има-тиниба или перевод на терапию ингибиторами ти-
розинкиназ второго поколения. В связи с этим следует отметить, что 1 из 18 пациентов, рефрактерных к иматинибу, имевший признаки амплификации гена BCR-ABL, был переведен на терапию ингибитором тирозинкиназ второго поколения — нилоти-нибом в дозе 800 мг/сут, через 12 мес лечения у него был достигнут ПЦГО.
Заключение
Обнаружение лейкозных клеток с амплификацией гена BCR-ABL на фоне терапии иматинибом является неблагоприятным прогностическим фактором для достижения цитогенетического ответа на проводимое лечение и предполагает изменение тактики терапии при ХМЛ. В настоящее время анализ амплификации гена BCR-ABL у пациентов, резистентных к терапии иматинибом и другими ингибиторами тирозинкиназ, не входит в алгоритм обязательного мониторинга терапии ХМЛ. FISH-анализ с ДНК-зондом к гену BCR-ABL проводится только в случае отсутствия митотически делящихся клеток костного мозга. Между тем FISH-анализ позволяет выявлять клоны опухолевых клеток с множественными копиями гена BCR-ABL и должен проводиться, по крайней мере, у пациентов с первичной резистентностью (рефрактерностью) к иматинибу.
Литература
1. Druker B.J., Guilhot F., O'Brien S.G. et al. Five-year follow-up of patients receiving imatinib for chronic myeloid leukemia. N Engl J Med 2006;355(23):2408—17.
2. Baccarani M., Saglio G., Goldman J. et al. Evolving concepts in the management of chronic myeloid leukemia: recommendations from an expert panel on behalf of the European Leukemia Net. Blood 2006;108(6):1809—20.
3. Kantarjian H., Talpaz M., Giles F. et al. New insights into the pathophysiology of chronic myeloid leukemia and imatinib resistance. Ann Intern Med 2006;145(12):913—23.
4. Le Coutre P., Tassi E., Varella-Garcia M.
et al. Induction of resistance to the Abelson inhibitor STI571 in human leukemic cells through gene amplification. Blood 2000;9:1758-66.
5. Mahon F.X., Deininger M.W., Schultheis B. et al. Selection and characterization of BCR-ABL positive cell lines with differential sensitivity to the tyrosine kinase inhibitor STI571: diverse mechanisms of resistance. Blood 2000;96: 1070-9.
6. Weisberg E., Griffin J.D. Mechanism of resistance to the ABL tyrosine kinase inhibitor STI571 in BCR/ABL-trans-formed hematopoietic cell lines. Blood 2000;95:3498-505.
7. Gorre M.E., Ellwood-Yen K., Chiosis G.
et al. BCR-ABL point mutants isolated from patients with imatinib mesylateresis-tant chronic myeloid leukemia remain sensitive to inhibitors of the BCR-ABL chaperone heat shock protein 90. Blood 2002;100:3041-4.
8. Hochhaus A. Cytogenetic and molecular mechanisms of resistance to imatinib. Semin Hematol 2003;40(Suppl 2):
69-79.
9. Shaffer L.G., Slovak M.L., Campbell L.J. An International system for human cytogenetic nomenclature (2009). Karger, 2009.
10. Реброва О.Ю. Статистический анализ медицинских данных. М.: Медиа Сфера, 2002.
