CC BY
50
15. Лобза Л. Д. Строение и развитие эластического хряща надгортанника человека. // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1956. Т.33, вып.1. С.18-22.
16. Лусинян Н.А. Микроскопия и микрохирургия гортани и гортаноглотки: Дис... .д-ра мед.наук. М., 1997.
17. Магомедов Г.М. Степень окостенения хрящей гортани у долгожителей в рентгенографическом изображении. // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1967. Т. 53, вып.11. С. 72-75.
18. Николенко В.Н., Мареев О.В., Старостина С.В. Конституциональная ларингостереотопометрия в хирургическом лечении срединных стенозов гортани. Саратов, 2007. 143с.
19. Петренко В.М. Эмбриология человека. СПб.: ДЕАН, 2005. 126 с.
20. Пэттен Б.М. Эмбриология человека: Пер. с англ. М.: Медгиз, 1959.
21. Рудан А. С. Эмбриогенез хрящей гортани человека. // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1966. Т.51, вып.7. С. 24-29
22. Сергей О.И. Внеорганные лимфатические сосуды и регионарные лимфатические узлы гортани. // Памяти академика Д.А.Жданова. М., 1998. С. 91-92.
23. Слука Б.А Развитие иннервационных связей гортани // Проблемы органо- и ганглиопексии. Минск.: Белорусь, 1974. С.134-146.
24. Станек И. Эмбриология человека. Братислава: Веда, 1977
25. Фалин Л.И.Атлас по эмбриологии человека. М.: Медицина, 1976
26. Цветков Э.А. Пороки гортани и трахеи у детей. СПб. Сотис-Лань, 1999.
27. Шевчук И.В. Анатомия и топография желез гортани человека в постнатальном онтогенезе: Дис.. к.м.н., М., 1999.
28. Drews U. Color atlas of embryology.-Stuttgart, 1995
29. Hamilton W. Embryo logy.-4-th Ed.- Heffer, Cambridge, 1972. 552 p.
30. Hirano M., Kurita S., Histological structure of the vocal fold and its normal and pathological variations// In Kirchner JA (ed) Vocal fold histopathology.- San Diego.-1986 Hill Press. P.17-24.
31. Pirsig W. Larynxmissbildangen. // Ther. Unisch. 1980. Bd.37. P. 41-57.
32. Грачева М.С. К вопросу о мышцах гортани // Арх. анатомии, гистологии и эмбриологии. 1954. Т.31, вып.4. С. 50-56.
NTOGENESIS AND LARYNX DEVELOPMENT DEFECTS IN HUMANS E.D.LUTSAY, L.M. ZHELEZNOV
Orenburg State Medical Academy Anthroponomy Department
In this literature review the main data of the prenatal larynx ontogenesis is given. Also there are data of postnatal ontogenesis of the organ characterized by the size changes, cartilages, mucosa, muscles, vascular and lymphatic system, nerve apparatus. The analyses of modern classification of congenial developmental defects was conducted. Among them there are: tumors, organ, tissular, neurogenic defects and those connected with hereditary syndromes.
Key words: larynx, ontogenesis, developmental defects.
УДК 611.24: 591.461.4:615.849.19
АЛЬВЕОЛЯРНЫЕ МАКРОФАГИ: ИЗМЕНЕНИЕ ПОПУЛЯЦИОННОГО СОСТАВА ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ ВОЗДЕЙСТВИИ
Т. Л. ОГОРОДНИКОВА*
Исследована морфология альвеолярных макрофагов при действии низкоинтенсивного лазерного излученияи инфракрасного спектрального диапазона и эмоксипина. Анализ полученных данных позволил выявить изменения популяционного состава при экспериментальном воздействии в зависимости от дозы.
Ключевые слова: низкоинтенсивное лазерное излучение, макрофаг, эмоксипин.
Клетки системы мононуклеарных фагоцитов (СМФ) являются полипотентными клетками, которые по способности изме-
* Амурская государственная медицинская академия, 675000, г. Благовещенск, ул. Горького, 95, тел. (4162) 52-53-56, e-mail: irina6336@mail. ru
нять свои функциональные показатели уступают только стволовым клеткам [1]. Система мононуклеарных фагоцитов является центральной, объединяющей различные типы клеток, участвующих в защитных реакциях организма, имеющих общие особенности морфологии, метаболизма и функций и являющихся весьма гетерогенной популяцией. После выхода моноцитов в ткани с последующей дифференцировкой в макрофаги происходит формирование клеток, различных по морфологии, поверхностному фенотипу и функциональной активности, что обусловлено средой обитания [1]. Но и в тканях под влиянием разнообразных стимулов - цитокинов, гормонов, либо веществ экзогенной природы в результате активации, примирования или деактивации происходит изменение функционального состояния макрофагов [6]. Среди клеток (СМФ) особую группу составляют альвеолярные макрофаги - многофункциональные клетки, роль которых как иммунопротекторов и иммуномодуляторов сочетается с выраженной секреторной активностью. Изучение морфологии клеточных элементов, их функциональной активности и количественного соотношения имеет важное значение для определения уровня местного иммунитета и реактивности организма. Существует представление, что внешние воздействия достаточной силы переводят систему мононуклеарных фагоцитов в особые режимы функционирования и эти эффекты воспроизводятся как «in vivo» так и «in vitro». Однако до настоящего времени, неизвестно, каким образом реагируют органоспецифические пулы макрофагов на воздействие стимулов, активирующих весь организм. Неизвестно, в какой степени различаются реакции макрофагов на целенаправленные воздействия, при которых происходит прямое стимулирование системы мононуклеарных фагоцитов. Неоднородность макрофагов лежит в основе их взаимодействия, как между собой, так и с другими популяциями клеток, а благодаря секреции ими биологически активных веществ макрофаги являются важным звеном в поддержании гомеостаза в организме в норме, а также при воспалительных, иммунных и репаративных процессах [5].Таким образом, не вызывает сомнений то, что популяция мононуклеарных фагоцитов морфологически и функционально неоднородна, однако вопрос о гетерогенности моно-нуклеарных фагоцитах далек от окончательного разрешения.
Проблема гетерогенности макрофагов осложняется еще больше, если принять во внимание, что они различаются по физическим и функционально - биохимическим признакам, будучи получены из разных органов и тканей, но и внутри единой популяции. Мы использовали низко интенсивное лазерное излучение (НИЛИ) в инфракрасном диапазоне как фактор, под влиянием которого происходит активация ядерного аппарата клетки, системы ДНК - РНК - белок, активация биосинтетических окислительно-восстановительных процессов и основных ферментативных систем [3] и как результат изменения популяционного состава альвеолярных макрофагов.
Цель исследования — изучить изменения популяционного состава альвеолярных макрофагов при действии инфракрасного лазерного излучения и эмоксипина.
Материалы и методы исследования. В эксперименте использовали беспородных крыс - самцов, которых усыпляли 1% раствором калипсола. Бронхоальвеолярный смыв (БАС) получали по методу [7]. Бронхоальвеолярную жидкость вносили в микрокамеры по 0,2 мл [4] и центрифугировали в центрифуге ОПН - 3 с горизонтальной приставкой к ротору при 800 оборотах в течение 5 минут [2], для получения монослоя клеток. После осаждения клеток, чтобы отделить от макрофагов другие клеточные элементы, их промывали средой 199. Затем на макрофаги воздействовали лазерным излучением с длиной волны - 0,85 нм и интенсивностью 0,2 Дж/см2 и 1 Дж/см2 , добавляли в среду эмокси-пин, после чего инкубировали в питательной среде 199 с добавлением 10% сыворотки крупного рогатого скота в течение трех часов при 370 С. По окончании инкубации клетки фиксировали в парах формалина, окрашивали по Романовскому - Гимза и проводили морфометрические измерения.
Результаты и их обсуждение. Показателем гетерогенности макрофагов является формирование популяций крупных, средних и малых клеток. В норме среди популяции макрофагов преобладали макрофаги средних размеров, что было подтверждено морфометрическими данными - 84%, площадь которых была от
33,36% до 66,72% мкм2, 12% макрофагов - малые макрофаги с площадью от 10,3 до 33,36 мкм2 и только 4% приходилось на крупные клетки с площадью от 66,72 до 83,81 мкм2.
Длина клеток варьировала от 3,94 до 13,94 мкм. Преобладали клетки со средней длиной 88% от всех макрофагов и размерами от 5,84 мкм до 11,68 мкм. Максимальную длину имели 10% клеток с размерами от 11,68 до 13,41 мкм и только 2% клеток имели минимальную длину от 3,94 до 5,84 мкм.
Показатели ширины распределились следующим образом: максимальную ширину от 7,39 до 9,31 мкм имели 24% клеток, минимальная ширина от 2,24 до 3,69 мкм была у14% клеток и 62% были макрофаги со средней шириной от 3,69 до 7,39 мкм.
Несмотря на то, что под световым микроскопом клетки выглядели округлыми, морфометрический анализ выявил, что только 6% макрофагов имели максимальную округлость. Основная масса клеток - 90% имела среднее значение округлости, а 4% имели минимальную округлость.
На действие лазерного излучения с длиной волны 0,85 нм и интенсивностью 0,2 Дж/см2 клетки отреагировали увеличением площади от 35,66 до 195,7 мкм2. Клеток с максимальной площадью от 124,9 до 195,7 мкм2 было 12%, 28% составляют клетки с минимальной площадью от 35,66 до 62,48 мкм 2 и 60% клетки со средним значением площади от 62,49 до 124,9 мкм.
Длина клеток изменялась от 7, 025 до 29,440 мкм. Клетки с максимальной длиной от 17,7 до 29,44 мкм составляют 12%, 18% - клетки с минимальной длиной от 7,03 до 8,85 мкм, и 70% приходится на клетки, имеющие среднюю длину от 8,85 до 17,7 мкм.
Ширина клеток изменялась от 3, 954 до 14,655 мкм, клетки с максимальной шириной от 9,84 до 14,65 мкм составляют 20%, почти столько же - 18% это клетки с минимальной шириной от 3,95 до 4,92 мкм и 72% - клетки со средним значением ширины от 3,18 до 6,36 мкм. Максимальная округлость была у 18% клеток, 8% приходилось на клетки со средней округлостью, основное количество клеток - 72%, были клетки средней округлости.
При действии на клетки инфракрасного лазера дозой 1 Дж/см2 площадь макрофагов изменялась в пределах от 18,9 до 125,24 мкм2. Почти половина клеток - 52% имели среднюю площадь от 43,21 до 86,42 мкм2, 28% приходится на клетки с максимальной площадью ядра от 86,42 до125,24 мкм2 и клетки с минимальной площадью от 18,9 до 43,21 мкм2 составляют 20%.
Длина клеток варьировала от 6,9 до 14,43 мкм, из них основная масса клеток - 94% имеют среднюю длину от 6,62 до 13,25 мкм, клетки с максимальной длиной от 13,25 до 14,43 мкм составляют 6%, клеток с минимальной длиной нет. Ширина клеток была в пределах от 2,65 до 11,67 мкм, 50% клеток обладают средней шириной от 4,25 до 8,51мкм, макрофаги с малой шириной от 2,64 до 4,25 мкм составляют 30%, и на клетки с максимальной шириной приходится 20%. Показатель округлости распределился следующим образом. Средняя округлость была у 86% клеток, минимальная у 6% и максимальная у 8% клеток.
В группе инфракрасный лазер 0,2 Дж/см2 и эмоксипин площадь макрофагов варьировала в пределах от 27,17 до 194,74 мкм2. На долю макрофагов, имеющих среднюю площадь от 68,65 до 137,3 мкм2 приходится 82% клеток, 12% - макрофаги с максимальной площадью от 137,3 до 194,74 мкм2 и 6% с минимальной от 27,17 до 68,65 мкм2. Длина клеток изменяется от 7,21 мкм до 21,08 мкм. Макрофаги с минимальной длиной от 7,21 мкм до 8,49 мкм составляют 6%, с максимальной от 16,99 мкм до 21,08 мкм -10%, 84% клеток имеют среднюю длину от 8,49 мкм до 16,99 мкм. Ширина клеток варьировала от 4,19 до 16,57 мкм. Показатели округлости распределились следующим образом: макрофаги максимальной округлости составляют 10%, минимальной всего 4% и 86% - клетки, средней округлости.
При воздействии инфракрасного лазера 1 Дж/см2 и эмокси-пина площадь макрофагов данной группы варьировала в пределах от 14,4 до 175,65 мкм2. Средняя площадь макрофагов от 68,23 до 136,47 мкм2 была у 78% клеток, максимальная от 136,47 до 175,65 мкм2 у 10%, и 12% составляли клетки с минимальной площадью от 14,4 до 68,23 мкм2. Длина клеток изменялась от 4,67 до 22,26 мкм. Максимальная длина от 16,35 до 22,26 мкм была у 4% клеток, минимальная от 4,67 мкм до 6,18 мкм у 2%, 94% -макрофаги средней длины от 6,18 до 16,35 мкм. Ширина клеток была в пределах от 4,05 мкм до 12,98 мкм. На клетки с макси-
мальной шириной от 10,28 мкм до 12,98 мкм, как и на клетки с минимальной шириной от 4,05 до 5,14 мкм приходится по14%, макрофаги средней ширины от 5,14 до 10,28 мкм составляют 72%. Клетки максимальной округлости составляют только 6%, немногим больше клетки минимальной округлости и 86 % это клетки средней округлости.
Заключение. При воздействии НИЛИ с длиной волны 0,85 нм происходит рост абсолютных значений морфометрических показателей. На действие лазерного излучения с длиной волны 0,85 нм и интенсивностью 0,2 Дж/см2 клетки отреагировали увеличением площади макрофагов на 87,4%. Реакция макрофагов на лазерное излучения с интенсивностью 1 Дж/см2 проявилась увеличением площади на 29%. При воздействии НИЛИ с длиной волны 0,85 нм и эмоксипином происходит рост абсолютных значений морфометрических показателей, но при интенсивности 0,2 Дж/см2 отмечается рост площади макрофагов на 118%, а при воздействии НИЛИ с длиной волны 0,85 нм дозой 1 Дж/см2 и эмоксипином произошло увеличение площади макрофагов на 104,5% по сравнению с контролем. На действие экспериментальных факторов макрофаги отреагировали изменением популяционного состава - произошло увеличение популяции крупных клеток, что служит показателем активации метаболических процессов.
Литература
1. Зенков Н.К., Меньщикова Е.Б., Шкурупий В.А. // Успехи современной биологии . 2007. Т.127, № 3. С. 243-256.
2. Лебедев К.Ф., Понякина А.Д. // Иммунограмма в клинической практике. М.: Наука. 1990.
3. Полосухин В.В., Егунова СМ., Чувакин С.Г. // Морфогенетические эффекты применения лазерного излучения в лечении острого и хронического воспаления бронхов. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние. 1993.
4. Целуйко С.С., Зиновьев С.В., Огородникова Т.Л. // Бюллетень физиологии и патологии дыхания. 2001. Выпуск 9. С.15-16.
5. Старикова Э.А., Киселева Е.П., Фрейдлин И. С. // Успехи современной биологии. 2005. Т.125, № 5. С. 466-477.
6. Ma J., Chen T., Mandelin J., Ceponis A., Miller N. E., Huk-kanen M., Ma G.F., Konttinen Y. T. // Cell. Mol. Life Sci. 2003. Vol.60. P. 2334.
7. Myrvik Q.N., Leake E.S., Farris B. // J. Immunol. 1961. Vol. 86, № 2. P. 128-132.
ALVEOLAR MACROPHAGES: THE CHANGE OF POPULATIONS AT EXPERIMENTAL INFLUENCE
T.L. OGORODNIKOVA Amur State Medical Academy
The morphology of alveolar macrophages is studied while the action of low intensive laser infrared radiating of spectral range and emoxipine. The analysis of the received data allows revealing population structure changes at experimental influence depending on a dose.
Key words: low intensive laser radiation, a macrophage, emoxipine.
УДК 611.1:612.014.426
АНАЛИЗ ВЗАИМОСВЯЗЕЙ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ ПАРАМЕТРОВ МИОКАРДА СОБАК И ГЕЛИОМЕТЕОРОЛОГИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ В ПЕРИОД МАГНИТНОЙ БУРИ
И.Г. СТЕЛЬНИКОВА, В.В. ЩЕРБАКОВА*
Рассмотрено влияние метеорологических факторов: атмосферного
давления, влажности воздуха и температуры воздуха (среднесуточных и в момент обследования животных).
Ключевые слова: геомагнитная буря, гелиометеорологические
факторы, миокард.
Цель исследования - изучение линейных корреляционных отношений между морфологическими показателями правого желудочка сердца собак и гелиометеорологическими факторами. Обследование проведено во время магнитной бури (МБ, 10 животных) и в спокойный геофизический период (контроль, 10 животных). В
* ГОУ ВПО НижГМА Минздравсоцразвития, 603005, Нижний Новгород, пл. Минина и Пожарского, 10/1, e-mail: veronika [email protected]
