Влияние удобрений и биологического препарата "ризогумин" на активность азотфиксации и эмиссию N2O в агроценозах с горохом Текст научной статьи по специальности «Сельское хозяйство, лесное хозяйство, рыбное хозяйство»

УДК 631.461:631.847.21

М.А. Журба, В.В. Волкогон M.A. Zhurba, V.V. Volkogon

ВЛИЯНИЕ УДОБРЕНИЙ И БИОЛОГИЧЕСКОГО ПРЕПАРАТА «РИЗОГУМИН» НА АКТИВНОСТЬ АЗОТФИКСАЦИИ И ЭМИССИЮ N2O В АГРОЦЕНОЗАХ С ГОРОХОМ

EFFECT OF FERTILIZERS AND RHIZOGUMIN BIOLOGICAL PREPARATION ON NITROGEN-FIXING ACTIVITY AND N2O EMISSION IN AGROCENOSIS WITH PEAS

Ключевые слова: горох, Ризогумин,

азотфиксация, денитрификация, эмиссия N2O, минеральные удобрения.

Представлены результаты изучения особенностей процессов азотфиксации эмиссии N2O в агроценозах гороха под влиянием различных систем удобрения и использования для предпосевной инокуляции семян микробного препарата «Ризогумин». Исследования проведены в условиях полевого стационарного опыта на черноземе выщелоченном (короткоротационный севооборот кар-тофель-ячмень-горох-пшеница озимая). Процесс симбиотической азотфиксации активизируется во второй год последействия 40 т/га навоза КРС, при использовании сидератов и внесении невысокой (N3^30^30) и средней (N4^60^0) в опыте доз минеральных удобрений. Ризогумин способствует существенной активизации связывания азота атмосферы, за исключением варианта с навозом. Эмиссия N20 в вариантах возрастает по мере увеличения доз минеральных удобрений. Применение биологического препарата способствует ограничению газообразных потер азота даже при высоких дозах минеральных удобрений (^0Р90К90). Включение в технологии выращивания гороха зеленого удобрения не приводит к повышению эмиссии закиси азота по сравнению с контрольным вариантом. Применение биологического препарата обеспечивает уменьшение потерь ^О из почвы за счет инициирования развития растений и уменьшения концентрации субстрата для нитратного дыхания микроорганизмов. При этом отме-

чается существенное увеличение урожайности культуры и улучшение качества продукции.

Keywords: peas, Rhizogumin biological preparation, nitrogen fixation, denitrification, N2O emission, mineral fertilizers.

The research goal is to study the features of nitrogen fixation and N2O emission in pea agrocenosis when affected by various fertilizer systems and the use of Rizogumin microbial preparation for presowing seed inoculation. The studies were conducted as a field permanent trial on leached chernozem (short crop rotation potato-barley-peas-winter wheat). The process of symbiotic nitrogen fixation is activated on the second year of 40 t ha of cattle manure aftereffect with the use of green manure and application of low (N3QP3QK.3Q) and medium (N60P60K60) rates of mineral fertilizers. Rizogumin contributes to considerable activation of atmospheric nitrogen binding except for the variant with manure. N2O emission in the variants increases with increasing rates of mineral fertilizers. The application of the biological preparation reduces gaseous nitrogen losses even with high mineral fertilizers (N9QP9QK9Q) rates. The use of green manure in pea cultivation technology does not cause the increase of N2O emission as compared to the control. The application of the biological preparation reduces N2O losses from the soil by plant development initiation and reducing the concentration of substrate for microorganisms' nitrate respiration. Significant increase in crop yielding capacity and improvement of product quality is observed.

Журба Михаил Анатолиевич, аспирант, лаб. почвенной микробиологии, Институт сельскохозяйственной микробиологии и агропромышленного производства НААН Украины, г. Чернигов. Тел.: (04622) 3-17-49. E-mail: zhurba-m2013@yandex.ua. Волкогон Виталий Васильевич, д.с.-х.н., проф., чл.-корр. НААН, директор, Институт сельскохозяйственной микробиологии и агропромышленного производства НААН Украины, г. Чернигов. Тел.: (04622) 3-17-49. E-mail: volkogon@ukr.net.

Zhurba Mikhail Anatoliyevich, Post-Graduate Student, Soil Microbiology Lab., Institute of Agricultural Microbiology and Agricultural Industry of Natl. Acad. of Agr. Sci., Chernigov, Ukraine. Ph.: (04622) 3-17-49. E-mail: zhurba-m2013@yandex.ua.

Volkogon Vitaliy Vasilyevich, Dr. Agr. Sci., Prof., Director, Institute of Agricultural Microbiology and Agricultural Industry of Natl. Acad. of Agr. Sci., Chernigov, Ukraine. Ph.: (04622) 3-17-49. E-mail: volkogon@ukr.net.

Введение

Необходимость учета активности отдельных биологических процессов в почвах агроценозов диктуется современными представлениями о влиянии технологических факторов не только на формирование продуктивности сельскохозяйственных культур, но и на состояние окружающей среды. Одним из наи-

более точных тестов относительно реакции системы почва-микроорганизмы-растение на уровни агрохимической нагрузки является активность азотфиксации [1]. Не менее важным диагностическим показателем состояния агроценозов представляется интенсивность эмиссии парниковых газов (особенно И20). Газообразные потери азота из удобрений

связаны, прежде всего, с процессами нитрификации и денитрификации, осуществляемыми в почвах при участии микроорганизмов. По усредненным данным восьмидесяти полевых опытов потери азота в форме окислов этого элемента составляют около 26% от внесенного азота. Размеры потерь увеличиваются при внесении высоких доз удобрений. Это свидетельствует о необходимости учета особенностей биологической трансформации азота в агроценозах при обосновании принципов удобрения сельскохозяйственных культур [2]-

Цель исследований — изучить действие удобрений и микробного препарата «Ризогумин» на активность процессов симбиотической фиксации атмосферного азота и эмиссии N2O при выращивании гороха.

Объекты и методы

Исследования проводили в 2012-2013 гг. в полевом стационарном опыте Института сельскохозяйственной микробиологии и агропромышленного производства НААН на черноземе выщелоченном (рНсол. — 5,2; удержание гумуса — 3,01%; легкогидролизуемого азота — 109 мг/кг; подвижных форм фосфора (Р2О5) — 168 мг/кг; обменного калия (К2О) — 58 мг/кг почвы). Горох сорта Девиз выращивали в условиях севооборота «картофель-ячмень яровой-горох-пшеница озимая». Схема опыта включала два блока: без инокуляции и с предпосевной обработкой семян гороха микробным препаратом «Ризогумин». Варианты опыта: без удобрений, последействие второго года 40 т/га навоза КРС (внесенного под картофель), N30P30K30, КоР6о^о, N9QP9QK9Q, последействие второго года 40 т/га навоза КРС + N3QP3QK3Q, промежуточный сидерат — редька масличная.

Ризогумин — препарат комплексного действия на основе селекционированных штаммов клубеньковых бактерий и физиологически активных веществ биологического происхождения в количестве, оптимальном для органогенеза растений. Обеспечивает увеличение полевой всхожести и энергии прорастания семян, способствует формированию развитой корневой системы и активного растительно-бактериального азотфиксирующего симбиоза [3].

Для оценки активности азотфиксации и эмиссии закиси азота в системе «почва-растение» использовали метод закрытых камер [4, 5].

Камеры, объемом 10 л, с резиновой мембраной для отбора газов врезали в почву на глубину 10 см, почву вокруг камер увлажняли для создания водяной «пробки». В камеры помещали бюкс с карбидом кальция, увлажненным водой. Вследствие реакции кальций карбида с водой образовывался аце-

тилен, служащий неспецифическим субстратом для бактериального азотфиксирующего фермента нитрогеназы, что положено в основу метода определения нитрогеназной (азотфиксирующей) активности. Одновременно ацетилен ингибирует редуктазу оксида азота и останавливает процесс диссимиляции NO3_ и NO2_ на стадии восстановления оксида азота [5]. Отобранные газовые пробы анализировали газохроматографически. Нитроге-назную активность определяли на газовом хроматографе «Chrom-4» с пламенно-ионизационным детектором (стальная колонкали-ной 3 м, заполненная сорбентом Pa^pak Q 60-80 mesh; температура термостата 40°С; расход газов: водорода — 15 см3/мин., азота

— 100 см3/мин., воздуха — 500 см3/мин.).

Прямую эмиссию N2O исследовали на газовом хроматографе «Цвет — 500 М» с детектором электронного захвата. Температура колонок 40°С, температура испарителя 120°С и детектора 330°С. Расход газа — носителя (аргон с метаном 95/5) — 35 см3/мин.

Сорбционная колонка из стали длиной 3 м заполнена сорбентом Pa^pak Q 60-80 mesh.

Ведение опыта, учет урожая и статистическую обработку полученных результатов проводили по Б. Доспехову [6].

Содержание белка в зерне гороха устанавливали при определении общего азота по Кьельдалю с пересчетом показателей на коэффициент 5,7.

Результаты и обсуждение

Определение нитрогеназной активности в динамике свидетельствует, что практически все виды и дозы удобрений в опыте в определенной степени стимулировали протекание процесса. В наименьшей степени это проявляется в варианте с высокой дозой минеральных удобрений (N9QP9QK9Q) и при внесении N30P 3QK3Q по фону последействия навоза (рис. 1). Влияние микробного препарата на активность симбиотической азотфиксации зависело от агрофона. Так, ризогумин стимулировал нитрогеназную активность в контрольном (без внесения удобрений) варианте, по невысокому и среднему в опыте минеральным агрофонам, а также при заделке в почву зеленого удобрения. По фону последействия 40 т/га навоза КРС предпосевная бактеризация семян не способствовала усилению активности процесса. Это в значительной степени подтверждает правильность известного тезиса В.В. Докучаева «...несомненно, вместе с навозом вносятся в почву и бактерии, роль которых, по всей вероятности, не меньше вносимых удобрительных веществ» [7]. Другими словами, применение навоза является своеобразной бактеризацией почвы. При этом интродуцированный в агроценоз микроорганизм встречает сильную

конкуренцию со стороны микроорганизмов навоза. По сути, в наших опытах действие бактериального инокулянта нивелировалось навозом (даже в условиях второго года его последействия).

Аналогичная ситуация прослеживается и в варианте с органо-минеральным удобрением (последействие органического удобрения и прямое влияние N3QP3QK3Q), однако в фазу формирования бобов ингибирующий эффект удобрения на действие ризогумина уже не отмечается.

В целом, наиболее высокие показатели симбиотической азотфиксации, проявляющиеся длительное время, отмечены при включении в технологию выращивания гороха на черноземе выщелоченном предпосевной инокуляции в сочетании с минеральными удобрениями, количество которых не превышает N60P60K60. Высокими показателями отличается также вариант с применением сидерального удобрения в сочетании с ризогуми-ном.

Определение эмиссии закиси азота свидетельствует о значительных потерях газообразных соединений азота в вариантах с минеральным удобрением культуры. При этом эмиссия N2O возрастает по мере увеличения доз удобрений. Наименьшие потери наблюдаются при внесении N3QP3QK3Q. Применение микробного препарата способствовало ограничению газообразных потерь азота. Этот эффект мы объясняем возросшим потреблением питательных веществ инициированными бактеризацией растениями для обеспечения конструктивного метаболизма. В этих условиях количество азота в почве, как субстрата для нитрифицирующих и денитрифицирующих микроорганизмов, уменьшается. Значительные потери N2O отмечаются в варианте с второго года последействием навоза (рис. 2). Ризогумин в этих вариантах практически не влиял на ход процесса. Как и при анализе активности азотфиксации, нивелирование положительного влияния биопрепарата мы объясняем влиянием микроорганизмов навоза, создающих мощную конкурентную среду для интродуцируемого микроорганизма.

Включение в технологии выращивания гороха зеленого удобрения не приводило к повышению эмиссии закиси азота по сравнению с контрольным вариантом. Применение Ризо-гумина по сидеральному агрофону способствовало некоторому снижению исследуемых показателей.

Зависимость процессов азотфиксации и эмиссии закиси азота от удобрений и предпосевной бактеризации была сходной в 2012 и 2013 гг., хотя абсолютные показатели имели определенный диапазон отличий.

Учет урожайности гороха свидетельствует, что по мере увеличения дозы минеральных удобрений продуктивность культуры возрастает, хотя отдача урожаем каждой следующей в опыте дозы удобрений снижается. Второго года последействие навоза обеспечивает хотя и достоверную, но одну из наиболее низких в опыте прибавок. Применение сидерального удобрения обеспечивает наименьшую прибавку урожая (табл. 1).

Существенным фактором влияния на формирование продуктивности культуры является применение бактериального препарата.

Эффективность ризогумина отмечена во всех вариантах. Обращают на себя внимание прибавки от инокуляции по фону наименьшей и средней в опыте доз минеральных удобрений. Именно по этим вариантам отмечены как наиболее высокие показатели активности симбиотической азотфиксации, так и существенное ограничение потерь закиси азота, что подтверждает высказанную выше версию о привлечении дополнительного количества азотных соединений для удовлетворения возросших потребностей конструктивного метаболизма бактеризованных растений.

Применение ризогумина совместно с си-деральным удобрением менее эффективно, однако, учитывая низкую себестоимость агроприемов, экономически выгодным. Низкая отдача сидеральных удобрений урожайностью культуры (несмотря на то влияние, которые они оказывают на течение процессов трансформации азота) объясняется либо особенностями минерализации органического вещества в почве под горохом, либо аллело-патическим влиянием промежуточной культуры на органогенез растений гороха.

Второго года последействие навоза менее эффективно, чем применение минеральных удобрений в экологически приемлемых дозах, однако обеспечивает достоверное увеличение урожайности. Несмотря на то обстоятельство, что биопрепарат в этих условиях не повлиял на активность азотфиксации и эмиссию N2O, результаты учета урожайности свидетельствуют о положительном влиянии бактеризации. Возможно, в данном случае продукционный процесс культуры улучшился за счет физиологически активных веществ ризогумина. Применение невысокой дозы минеральных удобрений по фону последействия навоза существенно усиливает действие препарата на рост урожайности гороха.

Определение содержания белка в зерне гороха демонстрирует увеличение показателей по всем испытанным агрофонам. В наибольшей степени синтез белка зависит от минерального питания растений (табл. 2).

16*061

тлщ_

ст‘8іі Ы/////////////////////////////Л

К‘Ш НЕ

80‘Ш №////////////////////////////////.

60151

іХш нн -...... ........

«‘881 *№////////////////////////////////<

ш

69‘ш тжжжжшя М‘8Н Ит* ■■■■■■■■■■■ .

99 Ш ШУ/////////////////////.

Г"

“Г"

“Г"

85*901 НЕЕ

-Г"

“Г"

“Г"

“Г"

“Г"

ічіесІеИио

ОЄНОЄсЮЄМ + еєоаен єі/± эиаюиэУэиэои

ОбУОбсЮбМ

09)Ю9сЮ9М

ОЄНОЄсЮЄМ

ееоаен е.1/1 эиаюиэАэиэои иинэс1доИЛсэд

ооооооооо ^ ^ ^ иййэ і N J

ей

о

ю

о

Ю

о;

г

X

т

ш

о

(О

т

а

ю

о

го

(О

т

&

к

г

X

ф

н

ф

Сй

(О

(О

<и

в

г

г

(О

(О

г

X

о

н

ю

03

(О

<и

в

Рис. 1. Динамика азотфиксации в корневой зоне растений гороха под влиянием удобрений и предпосевной обработки семян ризогумином, 2013 г.

со

О

Ю

0 Ю

к

X

1

го

со

О

(О

ГО

а

ю

О

го

(О

ГО

в

о»- £

І5Т

Т9Т®

5Н

ни тммммжжж

011

о шжжШж

гн 1 74 ІШШШШ

0 ■/ І

1 9Ш/////Ж

їі- Е

1Я1ес)эИио

0£>1(^0£М + есоаен єJ/l ор эиа1эиэНэиэои

ОбЖ^ОбЫ

ОЭМС^ОЭЫ

0£>1С^0£М

есоаен єJ/l ор эиа1эиэНэиэои иинасІдоІїЛ сэд

ооооооооо

ТГт-СОЮСЧСПЮСО

041 041 й>1±Лэ"ее еТ/ ОгМ_Ы -I

к

X

I

ф

н

ф

со

го

(0

ГО

в

X

X

го

(0

X

I

О

I-

Ю

ГО

(0

ГО

в

Рис. 2. Эмиссия N2O из почвы под горохом под действием удобрений и ризогумина, 2013 г.

Таблица 1

Влияние удобрений и бактеризации на урожайность гороха

Варианты опыта Урожайность, т/га Прибавка

от удоб рений* от инокуляции

2012 г. | 2013 г. | среднее т/га % N0 О4 а г / т

Без инокуляции

Без удобрений 1,48 1,99 1,74 - - - -

Последействие 40 т/га навоза 1,71 2,29 2,00 0,26 14,9 - -

^0Р30К30 1,81 2,82 2,32 0,58 33,3 - -

N^60^0 2,03 3,15 2,59 0,85 48,9 - -

^0Р90К90 2,14 3,35 2,75 1,01 58,0 - -

Последействие 40 т/га навоза + ^0Р30К30 2,00 2,76 2,38 0,64 36,8 - -

Сидераты 1,68 2,24 1,96 0,22 12,6 - -

Инокуляция ризогумином

Без удобрений 1,91 2,30 2,11 - - 0,37 21,3

Последействие 40 т/га навоза 2,02 2,51 2,27 0,53 30,5 0,27 13,5

^0Р30К30 2,05 3,33 2,69 0,95 54,6 0,37 16,0

^0р60к60 2,30 3,50 2,90 1,16 66,7 0,31 12,0

^0Р90К90 2,31 3,62 2,97 1,23 70,7 0,22 8,0

Последействие 40 т/га навоза + ^0Р30К30 2,10 3,05 2,58 0,84 48,3 0,20 8,4

Сидераты 1,98 2,42 2,20 0,46 26,4 0,24 12,2

НСР05 по опыту для агрофонов для инокуляции и взаимодействия 0,21 0,11 0,10 0,29 0,17 0,14

* В т.ч. от взаимодействия с биопрепаратом.

Таблица 2

Влияние удобрений и предпосевной бактеризации на содержание белка в зерне гороха, 2013 г.

Варианты опыта Содержание белка

без инокуляции с инокуляцией

Без удобрений 20,74+0,09 21,03+0,15

Последействие 40 т/га навоза 21,50+0,11 21,63+0,13

^0Р30К30 21,47+0,09 21,83+0,09

^0р60к60 21,85+0,04 22,03+0,06

^0Р90К90 22,03+0,03 22,08+0,04

Последействие 40 т/га навоза + ^0Р30К30 21,63+0,11 22,05+0,10

Сидераты 21,41+0,13 21,78+0,09

Существенное влияние на содержание белка оказывает применение Ризогумина. Исключением является вариант второго года последействия навоза, где биопрепарат не повлиял на изучаемый показатель. В то же время прямое действие минеральных удобрений ^30Р30К30), примененных по данному агрофону в сочетании с предпосевной бактеризацией семян, обеспечивает возрастание содержания белка в зерне гороха.

Выводы

Применение микробного препарата «Ризо-гумин» при выращивании гороха на черноземе выщелоченном по невысоким минеральным агрофонам (не превышающим ^0Р60К60) обеспечивает увеличение активности процесса симбиотической азотфиксации и ограничение эмиссии закиси азота. При этом отмечается существенное увеличение продуктивности культуры и улучшение качества продук-

ции. Включение биопрепарата в технологию выращивания гороха по фону высокой дозы минеральных удобрений (^0Р90К90) не обеспечивает достоверной прибавки урожая в сравнении с эффективностью ризогумина, примененного в сочетании с экологически приемлемой нормой ^0Р60К60. Выращивание бактеризованного гороха по фону сидераль-ных удобрений способствует увеличению активности азотфиксации и снижению эмиссии N20 в агроценозе. Однако продуктивность культуры при этом остается невысокой.

Библиографический список

1. Умаров М.М. Микробиологическая трансформация азота в почве. — М.: ГЕОС, 2007. — 138 с.

2. Макаров Б.Н., Геращенко Л.Б. Влияние газообразных потерь азота почвы и удобрений на размер загрязнения атмосферы газообразными соединениями азота // Экологи-

ческие последствия применения агрохимикатов (удобрения). — Пущино, 1982. —

C. 58-59.

3. Волкогон В.В., Заришняк A.C., Гри-ник І .В. та ін Методологія і практика використання мікробних препаратів у технологіях вирощування сільськогосподарських культур.

— Киев: Аграрна наука, 2011. — 156 с.

4. Звягинцев Д.Г., Бабьева И.П., Бызов Б.А. и др. Методы почвенной микробиологии и биохимии / под. ред. Д.Г. Звягинцева. — М.: МГУ, 1991. — 304 с.

5. Kusa K., Sawamoto T., Hu R., Hata-no R. Comparison of the closed-chamber and gas concentration gradient methods for measurement of CO2 and N2O fluxes in two upland field soils // Soil Science and Plant Nutrition. - 2008. - Vol. 54. - P. 777-785.

6. Доспехов В.А. Методика полевого опыта с основами статистической обработки результатов исследований. — 5-е изд. доп. и перер. — М.: Агропромиздат, 1985. — 351 с.

7. Докучаев В.В. К вопросу об открытии при русских университетах кафедр почвоведения и учение о микроорганизмах // Избранные сочинения. — М.: Гос. изд-во с.-х. л-ры, 1948. — Т. 2. — C. 290-318.

References

1. Umarov M.M. Mikrobiologicheskaya transformatsiya azota v pochve. — M.: GEOS,

2007. — 138 s.

+ +

2. Makarov B.N., Gerashchenko L.B. Vliya-

nie gazoobraznykh poter' azota pochvy i udob-renii na razmer zagryazneniya atmosfery gazo-obraznymi soedineniyami azota // Ekologi-cheskie posledstviya primeneniya agrokhimi-katov (udobreniya). — Pushchino, 1982. —

S. 58-59.

3. Volkogon V.V., Zaryshnjak A.S., Gry-nyk I.V. ta in. Metodologija i praktyka vykorys-tannja mikrobnyh preparativ u tehnologijah vyroshhuvannja sil's'kogospo-dars'kyh kul'tur. — K.: Agrarna nauka, 2011. — 156 s.

4. Zvyagintsev D.G., Aseeva I.V., Babe-va I.P., Byizov B.A. i dr.Metodyi pochvennoy mikrobiologii i biohimii / Pod. red. D.G. Zvyagintseva. — M.: MGU, 1991. — 304 s.

5. Kusa K., Sawamoto T., Hu R., Hata-no R. Comparison of the closed-chamber and gas concentration gradient methods for measurement of CO2 and N2O fluxes in two upland field soils // Soil Science and Plant Nutrition. —

2008. — Vol. 54. — P. 777-785.

6. Dospekhov V.A. Metodika polevogo opyta s osnovami statisticheskoi obrabotki re-zul'tatov issledovanii. — 5-e izd. pererab. i dop.

— M.: Agropromizdat, 1985. — 351 s.

7. Dokuchaev V.V. K voprosu ob otkrytii pri russkikh universitetakh kafedr pochvovedeniya i uchenie o mikroorganizmakh // Izbrannye so-chineniya. — M.: Gos. izd. s.-kh. literatury, 1948. — T. 2. — S. 290-318.

+

УДК 581.8 :631.52:634.11

С.А. Макаренко, О.В. Мочалова

S.A. Makarenko, O.V. Mochalova

МОРФОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ И КОРРЕЛЯЦИИ У ГЕТЕРОПЛОИДНЫХ СЕЯНЦЕВ ЯБЛОНИ

MORPHOBIOLOGICAL FEATURES AND CORRELATIONS OF HETEROPLOID APPLE-TREE SEEDLINGS

Ключевые слова: яблоня, адаптация, гетеро-плоидные скрещивания, диплоид, полиплоид, морфобиологические особенности, корреляции.

Представлены результаты привлечения в гибридизацию иммунной к парше отцовской исходной формы донора диплоидных гамет 30-47-88 (4п = 68) и триплоидных сортов М^и, Зефир и Фея с сортообразцами алтайской селекции в низ-когорье Алтая. Повышенный выход устойчивых гибридов к распространенным расам парши (до 100%) отмечен в 8 из 9 комбинаций скрещивания с 30-47-88 (4х), в то время как с триплоидными сортами Mutsu, Зефир, Фея он был на уровне от 56 до 84%. В F1, F2 Malus baccata до 17-29% гибридов имеют степень культурности 4,0 балла, в F3, F2 степень культурности 4,0-5,0 балла показали

до 56% гибридов. Проведен анализ 5 морфобиологических показателей гибридных сеянцев. Первичный отбор сеянцев для оценки плоидности выполнен по толщине и индексу (отношение ширины к длине) листа. Среди гибридных сеянцев выделено 72 образца. Полиплоидные сеянцы (3п = 51 и 4п = 68) найдены в комбинациях скрещивания материнских форм Алтайское пурпуровое, Со-81-907 с отцовскими исходными формами 30-48-88 (4п = 68) и Зефир. В комбинациях 2х * 4х результативность отбора сеянцев с высокой плоидностью по морфологическим признакам составляет от 20 до 88%. На основании расчета коэффициента корреляции Спирмена установлено, что его значение имеет как положительную, так и отрицательную направленность. Величина коэффициента по признакам плоидность, высота растения, толщина штамба, степень культурности,