CC BY
56
and neck cancer patients in the Tunisian population: Impact of different exposure sources. Biomed. Res. Int. 2013; 2013: 1-10.
23. Sycheva L.P. Cytogenetic monitoring to assess the safety of the human environment. Gigiena i sanitariya. 2012; (6): 68-72. (in Russian)
24. Kashyap B., Reddy P.S. Micronuclei assay of exfoliated oral buccal cells: Means to assess the nuclear abnormalities in different diseases. J. Cancer Res. Ther. 2012; 8(2): 184-91.
25. Abramova Zh.I. Man and Antioxidant Agents [Chelovek i protivookislitel'nye sredstva]. Moscow: Nauka; 1984. (in Russian)
26. Arutyunyan R.M. Modification of Chemical Mutagenesis in Human Cells [Modifikatsiya khimicheskogo mutageneza v kletkakh cheloveka]. Erevan: Izdatel'stvo Erevanskogo universiteta; 1985. (in Russian)
27. Il'inskikh N.N., Medvedev M.A., Bessudnova S.S., Il'inskikh I.N. Mutagenesis in Different Functional States of the Body [Mutagenez pri razlichnykh funktsional'nykh sostoyaniyakh organizma]. Tomsk: Izdatel'stvo Tomskogo universiteta; 1990. (in Russian)
Hygiene & Sanitation (Russian Journal). 2016; 95(7)
_DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-7-675-678
Reviews article
28. Ghaskadbi S., Paraskar S.V., Vaidya V.G. Bio-antimutagenic effect of L-cysteine on diiodohydroxyquinoline-induced micronuclei in swiss mice. Mutat. Res. 1987; 187: 219-22.
29. Ejchart A., Chlopkiewicz A., Czarnomska A., Koziorowska J. Effects of riboflavin on benzo(a)pyrene, 2-acetylaminofluorene and methyl methanesulfonate mutagenecity in vitro. Pol. J. Pharmacol. Pharm. 1990; 42 (2): 159-64.
30. Say K., Hayashi M., Takagi A., Hasegawa R., Sofuni T., Kurokawa Y. Effects of antioxidants on production of micronuclei in rat peripheral blood reticulocytes by potassium bromate. Mutat. Res. 1992; 269: 113-8.
31. Shimoi K., Akaiwa E., Mori N., Sano M., Nakamura Y., Tomita I. Bio-antimutagenic activies of vitamin B in E. coli and mouse peripheral blood cells. Mutat. Res. 1992; 266: 205-13.
32. Snegin E.A. Introduction to Genotoxicology: Course of Lectures (to help students) [Vvedenie v genotoksikologiyu: kurs lektsiy: (v pomoshch' stu-dentu)]. Belgorod: LitKaraVan; 2009.
Поступила 06.10.15 Принята к печати 17.11.15
Профилактическая токсикология и гигиеническое нормирование
О КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2016 УДК 614.777:632.95
Ракитский В.Н., Тулакин А.В., Синицкая Т.А., ЦыплаковаГ.В., Горшкова Е.Ф., АмплееваГ.П., МорозоваЛ.Ф., Козырева О.Н., Пивнева О.С.
СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ МЕТОДИЧЕСКИХ ПОДХОДОВ ГИГИЕНИЧЕСКОГО НОРМИРОВАНИЯ ПЕСТИЦИДОВ В ВОДНЫХ ОБЪЕКТАХ
ФБУН «Федеральный научный центр гигиены им. Ф.Ф. Эрисмана» Роспотребнадзора, 141014, Мытищи
В статье освещены методические особенности гигиенического нормирования пестицидных препаратов в воде водных объектов, конкретизированы и дополнены (уточнены) ряд позиций действующего методического документа по гигиенической оценке новых пестицидов. С позиции комплексного гигиенического нормирования обозначены принципы обоснования ПДК пестицидов в воде водных объектов, обоснована целесообразность расширения арсенала методов определения пороговых концентраций пестицидов по влиянию на органолеп-тические свойства воды и санитарный режим водоемов, показана роль и значение гидролизных процессов действующих веществ пестицидов в воде, которые следует учитывать при оценке влияния препаратов на процессы самоочищения водных объектов. В частности, оценку влияния хлорирования на органолептиче-ские свойства воды рекомендуется проводить с растворами, содержащими пестицид в концентрации, придающей воде запах в 2 балла; определение пороговых концентраций препаратов по влиянию на окраску и мутность воды дополнительно при температуре 60-100 °C. При определении пороговой концентрации по пенообразованию следует регламентировать время образования стабильной мелкопузырчатой пены 15 с. При величинах БПК 0,7 мг/л и ниже, с учетом норм погрешности измерений, рекомендуется повысить процент отклонения БПК от контроля до 20% при ингибировании и до 25% при стимуляции, что позволит не занижать гигиенических нормативов. При трактовке интенсивности и направленности процессов минерализации азотосодержащих соединений в воде водоемов необходимо учитывать продукты деструкции компонентов препаративной формы, которые могут оказывать влияние на колориметрические реакции определения азота аммиака, ионов аммония и нитритов. Использование этих и других приемов позволит уточнить уровни и обеспечить высокую надежность рекомендуемых пороговых концентраций по влиянию пестицидов на органолептические свойства воды и санитарный режим водоемов.
Ключевые слова: вода водных объектов; пестициды; гигиеническое нормирование.
Для цитирования: Ракитский В.Н., Тулакин А.В., Синицкая Т.А., Цыплакова Г.В., Горшкова Е.Ф., Амплеева Г.П., Морозова Л.Ф., Козырева О.Н., Пивнева О.С. Совершенствование методических подходов гигиенического нормирования пестицидов в водных объектах. Гигиена и санитария. 2016; 95(7): 675-678. DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-7-675-678
Raktsky V.N., Tulakin A.V., Sinitskaya T.A., Tsyplakova G.V., Gorshkova E.F., Ampleeva G.P., Morozova L.F., Kozyreva O.N., Pivneva O.S.
THE IMPROVEPMENT OF METHODICAL APPROACHES OF HYGIENIC REGULATION OF PESTICIDES IN WATER BODIES
Federal Center of Hygiene named after F. F. Erisman, Mytischi, 141014, Moscow region, Russian Federation
The article highlights the methodical features of hygienic regulation of pesticide preparation in water bodies, concretizes and supplements (specified) number of positions of the acting current methodical document on hygienic evaluation of new pesticides. From the position of the comprehensive hygienic standardization there are marked principles of the study of MPC for pesticides in water bodies, there is substantiated the expediency of expanding
дигиена и санитария. 2016; 95(7)
DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-7-675-678_
Обзорная статья
the arsenal of methods for determination of threshold concentrations of pesticides on the impact on organoleptic properties of water and sanitary regime of reservoirs, shows the role and importance of hydrolysis processes of active ingredients ofpesticides in water, which should be considered in the assessment of the impact of drugs on the processes of self-purification of water bodies/
Keywords: water bodies of water; pesticides; hygiene regulation.
For citation: Rakitsky V.N., Tulakin A.V., Sinitskaya T.A., Tsyplakova G.V., Gorshkova E.F., Ampleeva G.P., Morozova L.F., Kozyreva O.N., Pivneva O.S. The improvement of methodical approaches of hygienic regulation of pesticides in water bodies. Gigiena i Sanitaria (Hygiene and Sanitation, Russian journal) 2016; 95(7): 675-678. (In Russ.). DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-7-675-678
For correspondence: Valeriy N. Rakitsky, MD, PhD, DSc., professor, Academician of RAS Federal Center of Hygiene named after F. F. Erisman, Mytischi, 141014, Moscow region, Russian Federation. E-mail: pesicidi@yandex.ru
Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest. Funding. The study had no sponsorship.
Received: 08 April 2015 Accepted: 17 November 2015
Широкомасштабное применение пестицидных препаратов определяет значимость проблемы их гигиенической регламентации в объектах окружающей среды, в том числе в водных объектах. Комплексные гигиенические исследования по нормированию пестицидов предполагают выполнение комплекса работ, которые должны обеспечить объективное обоснование концентраций, при которых вещество при поступлении в организм в течение всей жизни не оказывает прямого или опосредованного влияния на здоровье населения, а также не ухудшает гигиенические условия водопользования.
Методическим документом, определяющим (регламентирующим) проведение исследований по гигиенической оценке новых пестицидов, являются методические указания, разработанные Всесоюзным НИИ гигиены и токсикологии пестицидов, полимеров и пластических масс [1]. За прошедший период накоплен и обобщен большой фактический материал по данной проблеме, который свидетельствует, что ряд позиций данного документа требуют уточнения и дополнения.
При нормировании пестицидов в воде водных объектов исходят из того, что пестициды - технологические смеси постоянного (фиксированного) состава, которые подлежат изучению как одно вещество, с установлением суммарных пороговых концентраций веществ, действующих в составе смеси. Для обоснования предельно допустимой концентрации (ПДК) требуется решить вопрос о выборе соответствующих индикаторных веществ, по которым следует проводить аналитический контроль за содержанием нормируемой смеси в воде в пределах суммарного норматива. Для пестицидов индикаторами смеси являются действующие вещества, определяющие целевое предназначение препарата. В этой связи обязательной является оценка действующих веществ по гигиеническим и токсикологическим критериям.
Величина ПДК действующего вещества каждого пестицида в воде в настоящее время разрабатывается с позиции комплексного гигиенического нормирования.
Принцип комплексного гигиенического нормирования состоит в том, что суммарное количество действующего вещества пестицида (и продуктов его трансформации), которые могут поступать в организм из разных сред (пищевые продукты, вода, атмосферный воздух), не должно превышать допустимую суточную дозу (ДСД) для человека.
ДСД пестицида для человека составляет сумму допустимых количеств его в пищевом рационе, воде и атмосферном воздухе и выражается формулой:
ДСД = ХД1,
где ДСД - допустимая суточная доза для человека; Д1 - допустимая доза, которая может поступить с продуктами питания; Д2 - допустимая доза, которая может поступить с водой; Д3 - допустимая доза, которая может поступить с атмосферным воздухом.
В качестве исходной величины при обосновании ДСД принимается величина неэффективной дозы (NOELch), установленная
Для корреспонденции: Ракитский Валерий Николаевич, акад. РАН, проф., и.о. директора, ФБУН «Федеральный научный центр гигиены им. Ф.Ф. Эрисмана» Роспотребнадзора, 141014, Мытищи. E-mail: pesticidi@yandex.ru.
в хроническом токсикологическом эксперименте при перораль-ном воздействии для наиболее чувствительного вида животных (крысы, мыши, собаки) по лимитирующему общетоксическому показателю вредности.
Для обоснования ДСД учитываются данные степени выраженности специфических и отдаленных эффектов (эмбрио-токсическое, тератогенное, канцерогенное действия, репродуктивная токсичность) согласно гигиенической классификации пестицидов по степени опасности [2] и их недействующие дозы по данным показателям вредности.
Если вещество по вышеперечисленным показателям относится ко 2-му классу опасности или одна из недействующих доз, установленная в токсикологическом эксперименте, будет ниже NOELch по общетоксическому действию при переходе от недействующей дозы для животных к ДСД для человека, увеличивается величина коэффициента запаса. В качестве минимальной величины коэффициента запаса используется 100 (10 -индивидуальная чувствительность, S10 - видовая чувствительность). Как правило, для опасных пестицидов коэффициент запаса увеличивается до 200-500, но в некоторых случаях - до 1000 и более.
ПДК действующего вещества пестицида в воде водоемов устанавливается с учетом возможного поступления ксенобиотика в организм человека и другими путями (пищевыми продуктами, атмосферным воздухом) и поэтому должна быть ниже ДСД для человека (не превышать 20-30% от ДСД).
При нормировании пестицидов в воде водных объектов чаще всего лимитирующими признаками вредности являются органо-лептический и общесанитарный (70% по ГН 1.2. 3111-13) [2].
Наши исследования свидетельствуют, что арсенал методов при определении пороговых концентраций пестицидов по влиянию на органолептические свойства воды и санитарный режим водоемов не следует ограничивать теми, которые обозначены в методических указаниях [1].
В соответствии с методическими указаниями, хлорирование проводится с водой, содержащей пестицид в концентрации, которая придает ей запах в 1 балл. При этом доза остаточного свободного хлора должна быть на уровне 0,3-0,5 мг/л. Постановка эксперимента в подобных условиях, на наш взгляд, не является вполне корректной, так как сам хлор в указанной концентрации придает воде запах в 2-3 балла. В случае, когда пестицид не обладает специфическим запахом или он не появляется в результате хлорирования, обнаружить возрастание запаха с 1 до 2 баллов практически невозможно [4].
Кроме того, концентрация пестицида, сообщающая воде запах в 1 балл, является расчетной и принимается по нижней доверительной границе. Это, в свою очередь, делает еще более уязвимым требование обнаруживать возрастание запаха с 1 до 2 баллов. В связи с этим влияние хлорирования на органолеп-тические свойства воды рекомендуется проводить с растворами, содержащими пестицид в концентрациях, придающих запах в 2 балла. И лишь в случае усиления или появления нового специфического запаха должна быть установлена концентрация пестицида в воде, при которой после хлорирования появляется запах интенсивностью в 1 балл.
В случаях, когда концентрация порога восприятия по запаху (1 балл) значительно превышает пороговые концентрации
Hygiene & Sanitation (Russian Journal). 2016; 95(7)
DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-7-675-678
по влиянию препарата на другие органолептические свойства воды, исследования рекомендуется проводить с пороговой концентрацией лимитирующего показателя вредности на органолептические свойства воды. При этом следует оценивать только вероятность появления запаха, отличного от контроля. При наличии постороннего запаха (не хлорного), необходимо установить пороговую концентрацию, при которой интенсивность нового запаха соответствует 1 баллу.
Методическим руководством не предлагается установление пороговых концентраций препаратов по влиянию на окраску и мутность (прозрачность) воды при разных температурах. Вместе с тем проведение экспериментальных исследований с рядом препаратов в условиях, обозначенных в методических документах, когда температура водных растворов не превышает 20°С, приводило к завышению конечного результата [4, 5].
При определении пороговых концентраций препаратов по влиянию на эти показатели качества воды рекомендуется проведение исследований при температуре 60-100°С.
При определении пороговой концентрации по пенообразо-ванию в существующих методических документах не обозначено время, в течение которого у краев цилиндра устанавливается стабильная мелкопузырчатая пена. На наш взгляд, это время не должно превышать 15 секунд.
Методическими указаниями для исследований по установлению пороговых концентраций вещества по влиянию на процессы самоочищения водных объектов [6] определены величины биохимического потребления кислорода (БПК) за первые сутки на уровне 0,7-1,2 мг/л. За пороговую при ингибировании процессов БПК рекомендуется принимать концентрацию вещества, вызывающую угнетение на 15%, а при стимуляции - 20%.
Среди различных методов установления БПК наиболее распространено определение по разности содержания растворенного кислорода до и после инкубации при стандартных условиях.
Данные, полученные при нормировании пестицидов, свидетельствуют, что величины БПК в скляночном опыте в первые сутки эксперимента не всегда достигают величины 0,7 мг/л. Вероятно, это обусловлено как качеством разводящей дехлорированной водопроводной воды, так и качеством хозяйственно-бытовой сточной воды, добавляемой в разводящую воду как источник органических веществ естественного происхождения и активной сапрофитной микрофлоры. Используемые воды по интегральному показателю (перманганатная окисляемость) в этих случаях соответствовали требованиям методического документа [3, 4]. При величинах БПК 0,7 мг/л и ниже (до 0,1 мг/л) норма погрешности измерений БПК по ГОСТу 27384-2002 составляет ± 50% [7]. С учетом вышеизложенного, уровни отклонения БПК 15 и 20%, на наш взгляд, являются несколько «жесткими». Рекомендуется в таких случаях повысить процент отклонения БПК от контроля до 20% при ингибировании процесса и до 25% при стимуляции. Это позволит не занижать гигиенический норматив по показателю БПК.
Многолетними исследованиями установлена роль и значимость процессов деструкции (гидролиза) действующих веществ пестицидов при изучении их влияния на санитарный режим водных объектов.
Этим процессом может быть обусловлен разброс изменений и характер действия пестицида на процесс БПК в разных сериях опытов. Показательными в этом отношении являются производные сульфонилмочевины, триазолов, имидазолинов и другие. Количество продуктов разложения действующих веществ пестицидов в разные сроки наблюдения может колебаться от 1 до 10.
Деструкцию действующих веществ препаративной формы следует принимать во внимание и при трактовке интенсивности и направленности процессов минерализации азотосодержащих соединений в воде водоемов. Методические указания не регламентируют количественные изменения процессов аммонизации и нитрификации водоемов. Вместе с тем продукты деструкции компонентов препаративной формы могут оказывать влияние на колориметрические реакции при определении в воде водоемов азота аммиака и ионов аммония, нитритов.
Так, гидролиз действующего вещества метальдегида, относящегося к химическому классу альдегидов, приводит к появлению в анализируемой среде уксусного альдегида. Последний
Reviews article
реагирует с аммиаком и его производными, находящимися в воде, путем присоединения аммиака к карбоксильной группе с образованием оксиаминов. Оксиамины не создают окрашенный комплекс (желтый) с реактивом Несслера (реактив на аммиак и ион аммония). Вследствие этого в опытных водоемах в определенные сроки эксперимента азот аммиака и ионов аммония определяется на уровнях ниже контрольного водоема. Оксиа-мины являются неустойчивыми соединениями и различия концентраций азота аммиака в опытных и контрольном водоемах в последующие сроки эксперимента исчезают [5].
Альдегидная группа бензимидазол-2-карбоксамид, являющегося метаболитом действующего вещества тиабендазол, при взаимодействии с присутствующим в воде азотом аммиака образует шестичленное кольцо альдегид-аммиак. Последнее соединение также не образует желтого окрашивания с реактивом Несслера [5].
В данных случаях оценка влияния препарата на процесс минерализации органического вещества должна основываться на анализе баланса уменьшения количества аммиачного азота, нарастания и убыли нитритного азота и нарастания азота нитратов в каждый момент определения.
Гидролизные процессы могут явиться причиной различия уровней нитритов в опытных водоемах относительно контрольного. Это происходит в случаях, когда в молекулах метаболитов действующих веществ содержатся группы, относящиеся к хромофорам (азогруппа, нитрозогруппа, карбонил, этенил) и ауксохромам (гидроксильная группа, аминогруппа, диметилами-ногруппа, карбоксильная группа, сульфогруппа). Присутствие этих групп приводит к аномальной интенсивности сигнала поглощения в области спектра при реакции реактива Грисса и нитрит иона, что отражается на определяемом в водоеме уровне нитритов.
Показательными в этом отношении являются метаболиты действующих веществ, которые относятся к химическим классам тиазолов, триазолов, триазолпиримидинов, имидазолов, анилидов, ацетамидов, морфолинов, имидозолинов, никотино-идов, бензимидазола, карбоксамидов, пиридинаминов, нитро-гуанидинов, альдегидов, хлорацетамидов, неоникотиноидов, индандионов, пиридинов, а также к производным сульфонилмо-чевины, дитиокарбамата, феноксиуксусной кислоты, тетроно-вых кислот, алифатических спиртов.
От степени деструкции действующих веществ и, соответственно, присутствия в анализируемой среде различных метаболитов зависит как уровень, так и направленность (снижение, увеличение) регистрируемых различий.
Регистрируемые различия уровней нитритов не рекомендуется рассматривать как влияние исследуемых концентраций пестицида на процесс самоочищения водоемов в случаях отсутствия значимых относительно контрольного водоема изменений концентраций азота аммиака и нитратов в каждый момент определения (> 50%).
Использование рассмотренных выше положений и методов позволяет не только уточнить пороговые уровни, но и обеспечить высокую надежность рекомендуемых величин по установлению пороговых концентраций по влиянию на органолептиче-ские свойства воды и санитарный режим водоемов.
Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки. Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Литер атур а
1. Методические указания по гигиенической оценке новых пестицидов (№ 4263-87). Киев; 1988.
2. СанПиН 1.2.2584—10. Гигиенические требования к безопасности процессов испытаний, хранения, перевозки, применения, обезвреживания и утилизации пестицидов и агрохимикатов. М.; 2010.
3. ГН 1.2.3111—13. Гигиенические нормативы содержания пестицидов в объектах окружающей среды (перечень). М.; 2013.
4. Ракитский В.Н., Плитман С.И., Гуськов Г.В. и др. Гигиена и санитария. 1995; (4): 11—4.
5. Тулакин А.В., Ракитский В.Н., Горшкова Е.Ф., Морозова Л.Ф., Сай-футдинов М.М., Трухина Г.М. Методические особенности гигиенического нормирования пестицидов в воде. Гигиена и санитария. 2004; (1): 56—7.
6. МУ 2.1.5.720—98. Обоснование гигиенических нормативов химических веществ в воде водных объектов хозяйственно-питьевого и культурно-бытового водопользования. М.; 1998.
гиена и санитария. 2016; 95(7)
DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-7-678-681_
Оригинальная статья
7. ГОСТ 27384-2002. Вода. Нормы погрешности измерений показателей состава и свойств. М.; 2002.
References
1. Guidelines for the hygienic assessment of new pesticides (№ 4263-87). Kiev; 1988.
2. SanPin 1.2.2584-10. Hygienic requirements safety testing processes, storage, transportation, applications, neutralization and disposal of pesticides and agrochemicals. Moscow; 2010.
3. GN 1.2.3111-13. Hygienic standards of pesticide content in the environment (the list). Moscow; 2013.
4. Rakitskiy V.N., Plitman S.I., Gus'kov G.V. et al. Gigiena i sanitariya. 1995; (4): 11-4.
5. Tulakin A.V., Rakitskiy V.N., Gorshkova E.F., Morozova L.F., Sayfutdi-nov M.M., Trukhina G.M. Methodical features of hygienic regulation of pesticides in the water. Gigiena i sanitariya. 2004; (1): 56-7.
6. MU 2.1.5.720-98. Substantiation of hygienic standards of chemicals in water bodies drinking and cultural and community water use. Moscow; 1998.
7. GOST 27384-2002. Water. Measurement error norms composition and properties of indicators. Moscow; 2002.
Поступила 08.04.15 Принята к печати 17.11.15
0 КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2016 УДК 613.863-084-092.9
Момот Т.В.'4, Кушнерова Н.Ф.2, Рахманин Ю.А.3
ПРОФИЛАКТИКА НАРУШЕНИЯ БИОХИМИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ В КРОВИ КРЫС ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ СТРЕССЕ
1 ФГАОУ ВПО «Дальневосточный федеральный университет», Школа биомедицины, 690950, Владивосток;
2 ФГБУН Тихоокеанский океанологический институт им. В.И. Ильичева ДВО РАН, 690041, Владивосток;
3 ФГБУ «НИИ экологии человека и гигиены окружающей среды им. А.Н. Сысина» Минздрава России, 119121, Москва;
4 ФГБУН Институт биологии моря им. А.В. Жирмунского ДВО РАН, 690041, Владивосток
Представлены результаты исследования влияния экстракта из отжима калины, содержащего комплекс фла-воноидов (65% от сухого веса), в условиях экспериментального стресс-воздействия (вертикальная фиксация крыс за дорзальную шейную складку на 22 часа). Показано, что влияние стресса сопровождалось увеличением массы надпочечников на 42%. В сыворотке крови отмечалась гипертриглицеринемия, гиперхолестеринемия, увеличение активности супероксиддисмутазы, снижение количества восстановленного глутатиона и антирадикальной активности, рост лизофракций фосфолипидов, снижение фосфатидилхолина, фосфатидилэ-таноламина, эфиров холестерина. Введение экстракта из отжима калины способствовало нормализации показателей массы надпочечников и липидного обмена в сыворотке крови более эффективно, чем эталонный стресс-протектор «Экстракт элеутерококка®». При введении элеутерококка оставались повышенными уровень холестерина, свободных жирных кислот, лизофракций фосфолипидов; низкими - уровни эфиров жирных кислот, эфиров холестерина и дифосфатидилглицерина. Показано, что отжим калины представляет перспективный вид сырья для получения стресс-протекторных препаратов.
Ключевые слова: стресс; кровь; антиоксидантная защита; нейтральные липиды; фосфолипиды; калина; элеутерококк.
Для цитирования: Момот Т.В., Кушнерова Н.Ф., Рахманин Ю.А. Профилактика нарушения биохимических показателей в крови крыс при экспериментальном стрессе. Гигиена и санитария. 2016; 95(7): 678-681. DOI: 10.18821/0016-9900-2016-95-7-678-681
Momot T.V.14, Kushnerova N.F.2, Rakhmanin Yu.A.3
PREVENTION OF DETERIORATIONS OF BLOOD BIOCHEMICAL INDICES IN EXPERIMENTAL STRESS IN RATS
'Biomedicine School of Far East Federal University, Vladivostok, Russian Federation, 690950;
2V.I. Ilichev Pacific Oceanological Institute, FEB of RAS, Vladivostok, 69004', Russian Federation;
3A.N. Sysin Research Institute of Human Ecology and Environmental Health , Moskow, '1912', Russian Federation;
4A.V. Zhirmunsky Institute of Marine Biology FEB of RAS, Vladivostok, ,69004', Russian Federation
Results of the research of the impact of extract from the byproducts of guelder-rose, containing a complexflavonoides (65% of dry weight), in the conditions of experimental a stress (vertical fixing of rats by a dorsal cervical foldfor 22 o'clock) are presented. The impact of a stress was shown to be followed by the gain in mass of adrenal glands by 42%. In blood serum there were noted marked hypertriglyceridemia, hypercholesterolemia, increased superoxide dismutase activity, decline in the number of reduced glutathione and anti-radical activity, the gain in lisofractions of phospholipids, decrease of phosphatidylcholine, phosphatidylethanolamine, cholesterol esters. Administration of the extract from the byproducts of guelder rose crushing promoted the normalization of indices of mass of adrenal glands and lipid metabolism in blood serum, was more effective, than a reference stress protector "Extract eleuterokokka® ". The introduction of eleuterococcus was followed by the persistent both elevated level of cholesterol, free fatty acids, lisofraction of phospholipidsand low level offatty acids esters, cholesterol esters and a diphosphatidilglicerin. Byproducts of guelder-rose were shown to represent a perspective view of raw materials for the producing of stress protective preparations.
Keywords: stress; blood serum; antioxidant protection; neutral lipids; phospholipids; guelder-rose; eleuterokokkus.
For citation: Momot T.V., Kushnerova N.F., Rakhmanin Yu.A. Prevention of deteriorations of blood biochemical indices in experimental stress in rats. Gigiena i Sanitaria (Hygiene and Sanitation, Russian journal) 2016; 95(7): 678-681. (In Russ.). DOI: 10.18821/0016-9900-201695-7-678-681
For correspondence: Natalya F. Kushnerova, MD, PhD, DSci., professor, зав. Head of the Department of Biochemical Technologies V I. Ilichev Pacific Oceanological Institute, FEB of RAS, Vladivostok, 690041, Russian Federation. E-mail: natasha50@mail.ru
Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest.
Funding.This work was supported by the Russian Scientific Foundation, the project № 14-50-00034. Received: 27 April 2015 Accepted: 17 November 2015
