CC BY
98
Таблица 2.
Длина опистосомальных щетинок самцов Chorioptes texanus
№ щетинки Длина щетинки в um
1 2 3 4 5
Канада -Сев.олень
Длина 66-98 193-235 27-39 23-27 14-29
Сред.дл. 80 216 31 25 18
Число измерений 20 20 20 20 20
Щвеция КРС
Длина 37-69 145-185 13-32 16-32 8-40
Сред. дл. 54.2 164 24.3 24.9 18.3
Число измерений 40 40 40 40 40
Россия КРС
Длина 35-75 160-200 15-37.5 17.5-35 7.5-40
Сред. дл. 61.1 172.3 26.4 26.6 20.3
Число измерений 20 20 20 20 20
Полученные сведения будут полезны при дифференцировке клещей, представителей рода Chorioptes. В настоящий момент интерес представляют данные измерений Ch.texanus у лошадей и коз, которые мы надеемся получить в ближайшее время.
Литература: 1. _Горохова Е.В. //Ветеринария, 2010.-№П.-С.34-36;
2. Хествик Г., Захлер-Риндер М., Гавьер-Вайден Д., Линдберг Р., Меттссон Р., Моррисон Д., Борнштейн С. //Российский ветеринарный журнал, 2008. -№1.
Comparative characteristics of morphological peculiarities of ticks attributed to genus Chorioptes. Puzanova E.V. Moscow K.I. Skryabin Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology.
Summary. One found and described morphological peculiarities among ticks attributed to genus Chorioptes.
ПРОФИЛАКТИКА ГЕЛЬМИНТОЗОВ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА ПРИ СОВРЕМЕННЫХ ТЕХНОЛОГИЯХ СОДЕРЖАНИЯ
Радионов А.В., Архипов И.А.
ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина
Введение. Г ельминтозы крупного рогатого скота широко распространены в разных зонах России, особенно при пастбищном содержании (1-4), и причиняют огромный экономический ущерб из-за падежа и снижения продуктивности животных.
411
В последние годы стали использовать новые технологии содержания крупного рогатого скота, основанные на стойловой круглогодичной системе с беспривязным содержанием.
В связи с этим целью нашей работы было изучение инвазированности крупного рогатого скота гельминтами при использовании современных и традиционных технологий содержания.
Материалы и методы. Зараженность гельминтами крупного рогатого скота при разных технологиях содержания изучали в 2007-2010 гг. в различных хозяйствах, в том числе при круглогодичной стойловой технологии с привязным содержанием («ИП Пикаев» Республики Мордовия), с беспривязным содержанием (роботоферма «им. Рахимова» Апастовского района Республики Татарстан), при привязном стойловом круглогодичном содержании с выгоном животных в загоны (ЗАО «Агрохлебороб» Абоянского района Курской области), при стойлово-пастбищной технологии с привязным содержанием (ЗАО «Агрофирма Борец» Дмитровского района Московской области), с беспривязным содержанием (ЗАО «Зеленоградский» Пушкинского района Московской области), а также при стойлово-пастбищной технологии с беспривязным содержанием на глубокой подстилке (ЗАО «Приозерное» Тюменской области).
Зараженность животных определяли на основании ово- и ларвоскопических исследований проб фекалий методом флотации с использованием счетной камеры ВИГИС для учета числа яиц гельминтов в 1 г фекалий.
Стронгилят пищеварительного тракта идентифицировали до рода после культивирования личинок на основании морфологической структуры инвазионных личинок [5]. Полученные результаты обработаны статистически с использованием компьютерной программы Microsoft Excel и Primes for Biostatistics V.03.
Результаты и обсуждение. Как показали результаты исследований 686 голов крупного рогатого скота при стойлово-пастбищной технологии, 289 голов при стойловом круглогодичном содержании, 334 голов при стойловом круглогодичном содержании с выгоном в загоны и 127 голов при стойлово -пастбищной технологии содержания на глубокой подстилке в максимальной степени был инвазирован гельминтами крупный рогатый скот из хозяйств при стойлово-пастбищной технологии содержания. Экстенсивность инвазии (ЭИ) животных нематодами, трематодами и цестодами составила соответственно при стойлово-пастбищном содержании 28,53; 25,00 и 8,13 %, стойловом круглогодичном содержании 5,46; 0 и 0 %, стойловом круглогодичном содержании с выгоном в загоны 10,19; 0 и 0 % и стойлово-пастбищной
технологии на глубокой подстилке 40,94; 28,62 и 12,2 %. Не установлено существенной разницы в инвазированности животных при вышеуказанных технологиях с привязным и беспривязным содержанием.
Круглогодичное стойловое содержание крупного рогатого скота профилактирует их от заражения легочными и желудочно-кишечными
412
стронгилятами, а также трематодами и цестодами. При этой технологии содержания животные были инвазированы на 8,3 % Strongyloides sp., 2,07 % Bunostomum sp. и на 3,11 % Trichocephalus spp.
В слабой степени был инвазирован нематодами крупный рогатый скот при стойловой технологии с использованием загонов. При этом животные были заражены Strongyloides sp. (9,28 %), Trichocephalus spp. (4,19 %), Bunostomum sp. (3,29 %), Ostertagia spp. (2,09 %), Nematodirus spp. (1,19 %), Neoascaris vitulorum (1,19 %), Haemonchus sp. (0,89 %).
При стойлово-пастбищном содержании крупного рогатого скота ЭИ составила Fasciola hepatica 5,17 %, Dicrocoelium lanceatum 8,36,
Paramphistomum spp. 11,47, Moniezia spp. 8,13, Nematodirus spp. 9,03, Trichocephalus spp. 5,10, Haemonchus sp. 4,95, Dictyocaulus viviparus 4,08, Strongyloides sp. 3,93, Bunostomum sp. 3,79, Chabertia sp. 3,06, Ostertagia spp.
3.06 %. Зараженность животных Trichostrongylus sp., Cooperia sp., Muellerius capillaris была равной около 1 %.
При использовании глубокой подстилки в условиях стойловопастбищного содержания в Тюменской области зараженность крупного рогатого скота нематодами была максимальной и составила Strongyloides sp.
12.6 %, Nematodirus spp. 10,24, Trichocephalus spp. 7,08, Haemonchus sp. 6,3, D. viviparus 6,3, Bunostomum sp. 5,51, Chabertia sp. 3,94, Ostertagia sp. 3,15, N. vitulorum 3,15, Fasciola spp. 6,20, D. lanceatum 5,42, Paramphistomum spp. 17,0 и Moniezia spp. 12,24 %.
Таким образом, установлена значительная разница в инвазированности крупного рогатого скота при разной технологии содержания. Максимальная зараженность животных нематодами отмечена при стойлово-пастбищной технологии. Стойловое содержание в значительной степени предотвращает заражение крупного рогатого скота биогельминтами, в том числе нематодами, цестодами и трематодами, развитие которых происходит на пастбище.
Литература: 1. Асадов С.М. Гельминтофауна жвачных животных СССР и ее эколого-географический анализ. - Баку, 1960. - 511с. 2. Дурдусов С.Д., Лазарев Г.М. Паразитарные болезни жвачных животных аридной зоны юга России. - Элиста, 1999. - 273с. 3. Егоров Ю.Г. Гельминтозы жвачных. -Минск, 1965. - 140с. 4. Ивашкин В.М., Мухамадиев С.А. Определитель гельминтов крупного рогатого скота. - М.: Наука, 1981. - 259с. 5. Поляков П.А. Автореф. дис. ... канд. веет. наук. - 1953. - 23 с.
Prophylaxis of helminthoses among cattle at modern management technologies. Radionov A.V., Archipov I.A. All-Russian K.I. Skryabin Scientific Research Institute of Helminthology.
Summary. One determined the significant difference in infection prevalence of helminthoses in cattle at different management technologies. The peak infection rates were recorded at stall-pasture technology. Stall management significantly prevented the infection of cattle by biohelminths including nematodes, cestodes and trematodes which development occurred at pastures.
413
