CC BY
7УДК 619:616.98:579.834.115
ЛАНДШАФТНО-ГЕОГРАФИЧЕСКИЕ И ПРИРОДНО-КЛИМАТИЧЕСКИЕ
УСЛОВИЯ ДЛЯ ФОРМИРОВАНИЯ ПРИРОДНЫХ ОЧАГОВ ЛЕПТОСПИРОЗА В РЕСПУБЛИКЕ КРЫМ НА ПРИМЕРЕ ДЖАНКОЙСКОГО РАЙОНА И ПРИСИВАШЬЯ
Полищук С.В., кандидат биологических наук, доцент; Быченко Д.Д., обучающийся; Институт «Агротехнологическая академия» ФГАОУ ВО «Крымский федеральный университет имени В.И. Вернадского».
Проведено эпизоотологическое обследование условий для формирования и функционирования инфекционной паразитарной системы лептоспи-роза на территории Республики Крым, а именно на примере Джанкойского района и Присивашья. Результатом стало выявление активных потенциальных природных очагов лептоспи-розной инфекции, а также установлены виды синантропных мышевидных грызунов (мелких млекопитающих), которые являются резервуаром данного заболевания. Итогом постановки РМА с сывороткой крови пойманных мышей было выделение нескольких штаммов лептоспир, среди которых самыми распространенными стали L. Grippotyphosа, L. Icterohaemorrhagiae и L. Hebdomadis. По полученным данным была создана общая картографическая схема, указывающая на
LANDSCAPE-GEOGRAPHICAL AND CLIMATIC CONDITIONS FOR THE FORMATION OF NATURAL FOCI OF LEPTOSPIROSIS IN THE REPUBLIC OF CRIMEA ON THE EXAMPLE OF DZHANKOY DISTRICT AND PRISIVASHYE
Polishchuk S.V., Candidate of Biological Siences, Associate Proffesor; Bychenko D.D., student; Institute «Agrotechnological Academy» of the FSAEI HE «V.I. Vernadsky Crimean Federal University».
An epizootological examination of the conditions for the formation and functioning of the infectious parasitic system of Leptospirosis on the territory of the Republic of Crimea, namely on the example of the Dzhankoy district and Prisivashye, was carried out. The result was the identification of active potential natural foci of leptospirosis infection, as well as the types of synanthropic mouselike rodents (small mammals) that are the reservoir of this disease. The result of the formulation of PMA with the blood serum of captured mice was the isolation of several strains of leptospira, among which the most common were L. Grippotyphosа, L. Icterohaemorrhagiae u L. Hebdomadis. According to the data obtained, a general cartographic scheme was created indicating potential natural foci of leptospirosis, which are dangerous for agricultural and
125
потенциальные природные очаги леп- carnivorous animais, as well as human. тоспироза, являющиеся опасными для сельскохозяйственных и плотоядных животных, а также человека.
Ключевые слова: лептоспироз, Keywords: leptospirosis, infection,
инфекция, мышевидные грызуны, Ре- mouse-like rodents, Republic of
спублика Крым, Джанкойский район, Crimea, Dzhankoy district, Prisivashye,
Присивашье, лептоспироносители, leptospirosis carries, house and
домовая и степная мышь, ландшафт, steppe mouse, landscape, climate,
климат, почвенный состав, серотипы, soil composition, serotypes, strains,
штаммы, картографический анализ. cartographic analysis.
Введение. Лептоспироз - одно из самых распространенных бактериальных заболеваний мира, которое по-прежнему представляет собой эпидемиологическую, экологическую и экономическую проблему и представляет угрозу как животным, так и человеку [2, с.3]. Со временем изменился характер течения и проявления лептоспирозной инфекции у животных, а именно по данным Департамента ветеринарии Российской Федерации болезнь протекает бессимптомно и только у 6-7 % инфицированных отмечают клинические признаки, а уровень лептоспироносительства достигает 20% и выше [4, с.107]. Возникновение инфекции у людей связано с заболеванием животных-лептоспироносителей, стоячих водоемов и ведения своей профессиональной деятельности (ветеринарные врачи) [7, с.3]. Такой значительный процент инфицированных животных существенно снижает эффективность противоэпизотических мероприятий и увеличивает количество неблагополучных по лептоспирозу хозяйств [5, с.4].
В течении всего времени существования болезни была установлена его территориальная приуроченность к формированию аутохтонных и атропур-гических очагов в зависимости от предрасполагающих факторов конкретного биотопа. [1, с.4]. Так, на площади Джанкойского района и Присивашья замечена закономерность влияния микроклимата на создание потенциальных природных очагов лептоспирозной инфекции, ведущим звеном которой являются мышевидные грызуны 2-х видов, представляющими собой резервуар заболевания (далее лептоспироносители) и носящие угрозу для сельскохозяйственных животных данной территории.
В современном мире существует достаточное количество для выделения, идентификации и установления заболевания как у животного, так и у человека. Наиболее обширное применение получил тест микроскопической агглютинации (МАТ), который считается «золотым стандартом» в постановке диагноза [8, с.2]. Однако данный метод может давать неправильный результат, сигнализировать о предыдущем заражении и не предоставлять точной информации о способности животного поддерживать хроническую инфекцию и участвовать в цикле передачи [6, с.3].
126
Существует тенденция к образованию во многих областях России урбани-ческих очагов природно-зоонозных инфекций, что приводит к значимости комплекса «хозяин-резервуар». В связи с этим стоит острая проблема для внедрения в эпизоотологию и ветеринарную науку новые лабораторные исследования, методы эпизоотологического исследования, для своевременного установления и ликвидации эпизоотических очагов, потенциальных носителей и переносчиков возбудителей инфекционных болезней, с последующим их мониторингом [3, с.2-3].
Материал и методы исследований. Данная работа выполнялась на базе кафедры микробиологии, эпизоотологии и ветеринарно-санитарной экспертизы института «Агротехнологическая академия» КФУ им. В.И. Вернадского, а также на основании полученных данных в Санитарно-эпидемиологическом отделе по Республике Крым (СЭС РК). С целью определения лептоспироносительства у грызунов проводился отлов на колониях с 2017-2021 годы. Схема отлова состояла из установления капканов №0 с приманкой на норы, где сконцентрировано масштабное количество мышей. Для определения вида мелких млекопитающих (далее ММ) изучалась статистика за прошлые года на базе СЭС РК, где с помощью картографического анализа указана схема расположения и циркуляции популяций грызунов на конкретной территории, а также изучались анатомические особенности отловленных мышей и установление их систематики.
Рисунок 1. Пункты учета мелких млекопитающих Джанкойского района и Присивашья
На рисунке 1 представлены места пункта учета численности и отлова мелких млекопитающих. Точка назначения пункта учета ставится из расчета нахождения рядом населенных пунктов с высокой концентрацией восприимчивых животных продуктивных хозяйств и сосредоточения особей мелких грызунов в зависимости от их нозоареала на данной площади. На территории
127
Джанкойского района и примыкающего к нему Присивашья насчитывается условных 20 точек учета ММ. Данные пункты созданы для сбора контрольной группы грызунов, с целью определения эпизоотической ситуации по лептоспи-розу на территории всего Крымского полуострова.
В таблице 1 представлено количество пойманных мышевидных грызунов на территории Джанкойского района и Присивашья с 2017 по 2021 годы, ежегодный отлов, которых, проводился так, чтобы охватить всю изучаемую территорию. Общая численность составляет 2827 особей.
Таблица 1. Численность пойманных особей с 2017 - 2021 гг. на территории
Джанкойского района и Присивашья
Год проведения отлова Количество пойманных особей
2017 423
2018 502
2019 718
2020 650
2021 534
Всего 2827
У каждого животного была отобрана сыворотка крови в количестве 1 мл для проведения лабораторных исследований, с целью выявления лептоспиро-носительства и идентификации штамма. В качестве серологического метода все пробы были подвергнуты исследованию в реакции микроагглютинации (РМА), которая ставилась в полистироловых лунках с антигенами L. Bataviae-HS-26 и L. pomona Pomona в разведениях 1:5, 1:10, 1:20, 1:30 и т.д. до определенного титра с контрольной пробой. Далее все пробы выдерживали в термостате при 300 С в течении 1 часа и по истечению времени результат определяли в микроскопе согласно ГОСТ 25386-91 и учет реакции проводили в крестах по 4 - балльной системе.
Для оценки функционирования инфекционной паразитарной системы лептоспирозной инфекции, определения её эпизоотического проявления и природно-климатических особенностей, использовались следующие методы эпизоотологического исследования:
1. Сравнительно-географический метод: установление взаимосвязи между изменением микроклимата окружающей среды домовой и степной мыши и перемещение особей ближе к антропургическим зонам, а также определение территориальной ограниченности лептоспироза.
2. Определение биотопа ММ и проведение ландшафтного районирования местности Джанкойского района и Присивашья;
3. Статистическая обработка данных, полученных на базе Санитарно-эпидемиологического отдела по Республике Крым;
128
4. Обобщение результатов серологических исследований и выделение наиболее часто встречаемого штамма лептоспир у грызунов;
5. Построение картографической модели потенциальных природных очагов лептоспироза вблизи фермерских хозяйств и частных подворий.
Результаты и обсуждение. При ландшафтно-географическом обследовании Джанкойского района и Присивашья установлено, что данная зона отличается засушливым умеренно жарким климатом с повышенным ветровым режимом, в почвенный состав входят черноземы и среднесолонцеватые почвы с рН 6,2-6,5. Перечисленные показатели создают благоприятные условия для выращивания злаковых культур, такие как: пшеница, овес, кукуруза. По данным на 2012-2013 валовый сбор основных сельхозкультур в Крыму составил: зерновые - 1,29 млн., пшеница - 765 тыс., зернобобовые 50 тыс. [9]. Такой высокий уровень урожайности способствовал населению территории пахотных земель вредителями -грызунами, для которых вышеперечисленные культуры являются основным рационом.
Но из-за закрытия подачи воды на данную местность через Северо-Крым-ский канал в 2014 году, количество получаемого урожая в год снизилось в 2 раза, увеличилось площадь земли не пригодная для ведения земледелия, что побудило домовую и степную мышь передислоцироваться в места активной деятельности человека, а соответственно ближе к сельскохозяйственным продуктивным животным.
При проведении отлова мышевидных грызунов, как представлено на рисунке 1, а также дифференцировки отловленных особей по анатомо-физио-логическим признакам было установлено, что данный нозоареал масштабно населен домовой (Mus musculus) и степной (Sylvaemus witherbyi) мышью, экстерьер которых представлен на рисунке 2.
Рисунок 2. Домовая (МУи) и Степная (SWI) мыши
Данные виды являются самыми многочисленными на территории Крыма, сосредоточение которых наблюдается в таких биотопах как кустарники, неудобья и целина. По статистике отлова грызунов на 2012-2013 год количество представителей данного вида насчитывалось около 6 тысяч, в то время как на 2021 год 2 тысячи, что в 2 раза меньше, чем за прошлые года. Это связано с тем,
129
что произошло закрытия подачи воды на данную местность через Северо-Крым-ский канал в 2014 году, количество получаемого урожая в год снизилось в 2 раза, увеличилась площадь земли не пригодная для ведения земледелия, что является движущим фактором к сокращению приплода грызунов и побудило домовую и степную мышь изменить свой биотоп на места активной деятельности человека, а соответственно ближе к сельскохозяйственным животным.
На рисунке 3 показаны места максимальной концентрации домовой и степной мыши, что определяется конкретным ландшафтом местности.
Рисунок 3. Концентрация особей степной и домовой мышь на территории Присивашья и Джанкойского района на 2017-2021 гг.
Для определения лептоспироносительства у каждого отловленного грызуна отбиралась проба крови, которую серологическим методом исследовали в реакции микроагглютинации (далее РМА). В таблице 2 приведены результаты выделения положительно реагирующих ММ, отловленных на территории Джанкойского района и Присивашья, начиная с 2017 года и по сегодняшнее время.
Расчет процентного соотношения (D, %) с 2017-2021 гг. между общим количеством пойманных особей и выявленных среди них положительных высчи-тывалось по следующей формуле:
А
D = — - 100%, В
где D - процентное соотношение положительных ММ от общего количества ММ; A - выявленные лептоспироносители (положительные) грызуны; В - общее количество пойманных грызунов на территории.
** % — * 1 0 0 % = 1 .9 7 *0* - процентное соотношение положительных ММ к общему количеству за 2017 г.)
По представленной формуле проводились расчеты по всем годам начиная
130
с 2017 по 2021 гг. Результаты занесены в таблицу 2.
Степень вовлеченности того или иного вида грызунов в эпизоотический процесс лептоспироза рассчитывался по следующей формуле:
где М - степень вовлеченности степной и домовой мыши в эпизоотическое проявление лептоспироза (далее ЭПЛ);
X - общее количество положительных особей ММ; N - взятый промежуток времени для исследования (5 лет).
М — — — 3;8 - степень вовлеченности в ЭПЛ домовой мыши.
[V] = — = 3 4 _ степень вовлеченности в ЭПЛ степной мыши.
5
Полученные в ходе расчета результаты занесены в таблицу 2. Таблица 2. Экспертная оценка спектра патогенности лептоспир среди популяции домовой и степной мыши на территории Джанкойского района и Присивашья за 2017-2021 гг.
№ п/п Период, взятый для анализа Домовая мышь Степная мышь
Всего Выявлено «+» D,% Всего Выявлено «+» D, %
1 2017 254 5 1,97 169 3 1,78
2 2018 212 3 1,42 290 2 0,69
3 2019 401 3 0,75 317 5 1,58
4 2020 370 4 1,08 280 3 1,07
5 2021 186 4 2,15 348 4 1,15
N = 5 лет М=285,6 М=3,8 М=1,4 М=280,8 М=3,4 М=1,2
Изучая таблицу 2 отмечаем, что домовая мышь наиболее вовлечена в проявление эпизоотического процесса лептоспирозной инфекции на исследуемой территории, положительных особей которой насчитывается наибольшее количество в 2017 году - 5 сероположительных, а наименьшее в 2018-2019 гг. -3 положительно реагирующих животных. В пробах крови, полученные от степной мыши в промежутке за 2017-2021 гг. максимальное количество выявленных случаев лептоспироносительства регистрируется в 2019 - 5 особей.
Установили, что лептоспироз в условиях изучаемого района республики регистрируется практически на всей территории. Показатель лептоспироно-сительства среди грызунов в среднем по всему изучаемому району составил М=3,6, что на домовую мышь приходится М=3,8, а на степную М=3,4, что на 0,4 меньше. Это доказывает, что эти грызуны являются ведущими видами в звеньях эпизоотического процесса лептоспироза среди мышей, регистрирую-
131
щихся на площади всего полуострова.
При исследовании проб сывороток крови в РМА положительным результатом считается повышение титра антител 1:50 и более.
С целью выявления потенциальных природных очагов лептоспирозной инфекции на территории Присивашья и Джанкойского района среди популяций мышей, была проведена идентификация возбудителя для установления наиболее встречающегося и опасного серотипа для сельскохозяйственных животных.
Для определения серотипов лептоспир из проб сывороток крови проводилась перекрестная РМА с помощью следующих наборов эталонных диагностических штаммов лептоспироза: L. Icterohaemorrhagiae - M20, L. Grippotyphosa -Moskva V, L.Pomona - Pomona П.О.5621, L. Tarassovi - перепелицин, L. Hebdomadis - M20.
В таблице 3 представлены результаты структурного анализа возбудителя по серотипам у положительно реагирующих ММ и выделение наиболее часто встречающегося среди особей.
Расчет частоты встречаемости штаммов лептоспир среди домовой и степной мыши проводился по следующей формуле:
где P - частота встречаемости штаммов лептоспир среди домовой и степной мыши; £ - сумма случаев идентификации конкретного штамма лептоспир; R - количество сероположительных ММ.
7
Р — — о 1 0 0% = 1 9 ,4% - частота встречаемости штамма L. Icterohaemorrha-gia среди сероположительных ММ.
По представленной формуле проводились расчеты по всем годам начиная с 2017 по 2021 годы. Результаты занесены в таблицу 3.
Таблица 3. Выделенные штаммы лептоспир из проб сыворотки крови домовой и степной мыши за 2017-2021 гг.
Год Домовая мышь Степная мышь Ictero-haem. Gripp. Hebdom. Pomona Tarassovi
2017 5 3 1 4 2 0 1
2018 3 2 0 2 1 1 1
2019 3 5 2 2 1 1 2
2020 4 3 1 3 2 0 1
2021 4 4 3 4 0 1 0
I 19 17 7 15 6 3 5
R=36 P = 19,4% P= 41,7% P= 16,7% P= 8,3% P= 13,9%
132
■ I:: I с ■ |: з 11 ] г ■ г г:: г | М ; ] I :
■ 1Лп|:;:::I||т\ |
■ НеЬ<ЯоппасЯ|5 Рота па
■ Таага550У|
Рисунок 4. Линейно-графическая сравнительная схема-модель частоты встречаемости штаммов лептоспир среди домовой и степной мыши на территории Джанкойского района и Присивашья
При проведении сравнительного анализа результатов из таблицы 3 и рисунка 4 установлено, что самыми распространенными серотипами среди проб крови положительных мышевидных грызунов стали L. Grippotyphosa - 41,7 %, L. Icterohaemorrhagia - 19,4 %, L. Hebdomadis - 16,7 %, на долю которых приходится до 77,8 %.
По данным ежегодного учета Джанкойского ВЛПЦ сельскохозяйственных животных из хозяйств и частных подворий, на 2021 год на территории Джанкойского района, включающего город Джанкой и примыкающие крупные сёла (Лобаново, Новокрымское, Заречное, Луганское, Целиное), а также территории Присивашья (Азовское, Медведевка) насчитывается: 5250 голов КРС, 120 голов свиней и 1000 голов сельскохозяйственной птицы (куры, гуси, утки). В то время как по данным за 2017-2020 гг. количество с/х животных составило: КРС - 11428 голов, свиньи - 347 голов, птицы - 2475.
Динамика численности с/х животных в районе представлена на рисунке 5.
12000
10000 8000 6000 4000 2000 0
133
12017-2020 ■ 2021
I.
КРС Свиньи с/хптица
Рисунок 5. Динамика численности с/х животных на территории Джанкойского района с 2017-2021 гг.
Из рисунка 5 прослеживается четкая тенденция к уменьшению численности продуктивных животных в 2 раза. Это связано с изменением уровня ведения животноводства, нет дотаций на скотоводство, а также отсутствует надлежащая кормовая база, из-за прекращения ведения аграрной отрасли хозяйства.
Исходя из результатов, полученных в ходе данной работы, были выявлены 2 вида мышевидных грызунов - это степная и домовая мышь, представители которых являются лептоспироносителями трех штаммов L.Grippotyphosa, L. Icterohaemorrhagia и L. Hebdomadis. Данные особи циркулируют вблизи крупных сел и города в пределах Джанкойского района и Присивашья, на территории которых регистрируются несколько крупных предприятий: СПК «Северный Крым», СК «Победа», ЗАО «Семена Крыма», СООО «Ясная Поляна», КСП «Маяк», СК «КПА», СХООО «Обильный», СПК «Заречное», ОАО «Новатор», а также поголовье скота на частных дворах. Данные комплексы специализируются на выращивании зерновых культур и продуктивного скота, с целью реализации доброкачественной продукции и являются местами концентрации ММ, что представляет угрозу для заболевания животных лептоспирозом, контаминации возбудителя с кормами и готовой продукцией, а также их инфицирования.
На рисунке 6 представлены обобщенные данные по выявленным потенциальным природным очагам лептоспироза, которые находятся вблизи крупных предприятий и сел, с высокой концентрацией продуктивного восприимчивого скота, с указанием конкретно циркулирующего вида грызунов.
Рисунок 6. Картографическая схема-модель концентрации синантропных очагов лептоспироза вблизи антропургических зон и фермерских хозяйств Джанкойского района и Присивашья
134
В процессе данной работы установлено, что на территории Джанкойского района и Присивашья наблюдается повышенная концентрация лептоспироно-сителей, а именно популяции домовой и степной мыши, среди которых циркулируют 3 часто встречаемых серотипа L.Grippotyphosa, L. Icterohaemorrhagia и L. Hebdomadis. Данные особи населяют в основном антропургические зоны района с продуктивным скотом, для которых эти виды грызунов являются опасным источником лептоспирозной инфекции.
Выводы.
1. Домовая и степная мышь является резервуаром лептоспирозной инфекции на территории Республики Крым;
2. Наиболее часто регистрируемые штаммы лептоспир среди популяций домовой и степной мыши по серологическим исследованиям стали L. Grippotyphosа, L. Icterohaemorrhagiae и L. Hebdomadis.
3. Джанкойский район и Присивашье - потенциальные природные синан-тропные очаги лептоспироза;
4. Большая часть особей мышевидных грызунов концентрируется вблизи КФХ и частных секторов формируя антропоургические природные очаги, что несет угрозу и риски для массового заболевания сельскохозяйственных и плотоядных животных, а также человека лептоспирозной инфекцией.
Список использованных источников:
1. Ананьин В.В. Географическое распространение лептопирозов / В.В. Ананьин, Е.В. Карасева // Лептоспи-розы людей и животных. - М.: Медицина. - 2015. - 26 с.
2. Назарова О. О природной очаговости лептоспирозной инфекции в Таджикистане / О. Назарова, А. Му-минов, Ш. Джумаев // Сельскохозяйственный технологии №°6. - Екатеринбург. - 2019. - 5 с.
3. Орехов, И.В. Оценка Эпидемиологического значения компонентов городской синантропной фауны: авто-реф. дис... докт.биол.наук / И.В. Орехов: - Ростов-на-Дону. - 2004. - С. 5.
4. Шатрубова Е. Эпизоотологи-ческое районирование лептоспироза сельскохозяйственных животных в горных районах юга-западной Сибири / Е.В. Шатрубова, П.И. Барышни-
References:
1. Ananyin V. Geographical distribution of leptospirosis / V. V. Ananyin, E.V. Karaseva // Leptospirosis of humans and animals. - M.: Medicine. - 2015. -P. 26.
2. Nazarova O. On the natural foci of leptospirosis infection in Tajikistan / O. Nazarova, A. Muminov, Sh. Dzhumaev // Agricultural Technologies No.6. -Yekaterinburg. - 2019. - P.5.
3. Orekhov I Assessment of the epidemiological significance of the components of the urban synanthropic fauna: abstract.diss.. .doct.biol.sciences / I.V. Orekhov: - Rostov-on-Don. -2004. - P. 5.
4. Shatrubova E. Epizootological zoning of leptospirosis of farm animals in mountainous areas of southwestern Siberia / E.V. Shatrubova, P.I. Baryshnikov // Bulletin of the Altai
135
ков // Вестник Алтайского государственного аграрного универститета №7 (165). - Алтай. - 2018. - С. 106.
5. Guzman B. Seroprevalence and risk factors for Leptospira spp. in small ruminats of semi-arid zone in northeastern Colombia. / B. Guzman, L.C. Marti-nez-Rodrigez, J.C.Tobon-Torreglosa, G.A. Tafur-Gomez // Tropical Animal Health and Productoin 54. - 2021. - P. 21
6. Gomard, Y. Tracking Animal Reservoirs of Pathogenic Leptospira: The Rigth Test for the Right Claim. / Y. Gomard, K. Dellagi, S.M. Goodman, P. Mavingui // Tropical Medicine and Infections Disease. - 2021. - P. 19
7. Guzman B. Seroprevalence and risk factors for Leptospira spp. in small ruminats of semi-arid zone in northeastern Colombia. / B. Guzman, L.C. Martinez-Rodrigez, J.C. Tobon-Torreglosa, G.A. Tafur-Gomez // Tropical Animal Health and Productoin 54. - 2021. - P. 15.
8. Oyamada Y. Amachine learning model of microscopic agglutination test for diagnosis of leptospirosis. / Y. Oymada, R. Ozuru, T. Masuzawa, A. Miyahara // PLoS ONE 16 (11): e0259907. - 2021. - P. 16.
9. https://ru.wikipedia.org/wiki/ Сельское_хозяйство_Крыма
State Agrarian Iniversity No. 7 (165). -Altai. - 2018. - P. 106.
5. Guzman B. Seroprevalence and risk factors for Leptospira spp. in small ruminats of semi-arid zone in northeastern Colombia. / B. Guzman, L.C. Marti-nez-Rodrigez, J.C.Tobon-Torreglosa, G.A. Tafur-Gomez // Tropical Animal Health and Productoin 54. - 2021. - P. 21.
6. Gomard, Y. Tracking Animal Reservoirs of Pathogenic Leptospira: The Rigth Test for the Right Claim. / Y. Gomard, K. Dellagi, S.M. Goodman, P. Mavingui // Tropical Medicine and Infections Disease. - 2021. - P. 19.
7. Guzman B. Seroprevalence and risk factors for Leptospira spp. in small ruminats of semi-arid zone in northeastern Colombia. / B. Guzman, L. C. Martinez-Rodrigez, J.C.Tobon-Torreglosa, G.A. Tafur-Gomez // Tropical Animal Health and Productoin 54. -2021. - P. 15.
8. Oyamada Y. Amachine learning model of microscopic agglutination test for diagnosis of leptospirosis. / Y. Oymada, R. Ozuru, T. Masuzawa, A. Miyahara // PLoS ONE 16 (11): e0259907. - 2021. - P. 16.
9. https://ru.wikipedia.org/wiki/ CenbCK0e_x03aHCTB0_KpbiMa
Сведения об авторах:
Полищук Светлана Викторовна -кандидат биологических наук, доцент, доцент кафедры микробиологии, эпизоотологии и ветеринарно-сани-тарной экспертизы института «Агро-технологическая академия» ФГАОУ ВО «КФУ имени В.И. Вернадского»,
Information about the authors:
Polishchuk Svetlana Viktorovna -Candidate of Biological Science, Associate Professor, Associate Professor of the Department of Microbiology, Epizootology and Veterinary and Sanitary Expertise of the Institute "Agrotechnological Academy" of FSAEI
136
e-mail: poliver@bk.ru, 295492, Россия, Республика Крым, г. Симферополь, п. Аграрное, Институт «Агротехноло-гическая академия» ФГАОУ ВО «КФУ им. В.И.Вернадского».
Быченко Дарья Дмитриевна - обучающаяся факультета ветеринарной медицины института «Агротехноло-гическая академия» ФГАОУ ВО «КФУ имени В.И. Вернадского», e-mail: chevroleimpala67@mail.ru, 295492, Россия, Республика Крым, г. Симферополь, п. Аграрное, Институт «Агро-технологическая академия» ФГАОУ ВО «КФУ им. В.И.Вернадского».
HE "V.I. Vernadsky Crimean Federal University", e-mail: poliver@bk.ru, Institute "Agrotechnological academy" of the FSAEI HE "V.I. Vernadsky Crimean Federal University", Agrarnoye v., Simferopol, Republic of Crimea, 295492, Russia.
Bychenko Daria Dmitrievna - student ofthe Faculty ofVeterinary Medicine ofthe Institute "Agrotechnological Academy" of the FSAEI HE "V.I. Vernadsky Crimean Federal University", e-mail: chevroleimpala67@mail.ru, Institute "Agrotechnological academy" of the FSAEI HE "V.I. Vernadsky Crimean Federal University", Agrarnoye v., Simferopol, Republic of Crimea, 295492, Russia.
137
