CC BY
51
А.В. СМЫКОВ, доктор сельскохозяйственных наук; А.А. РИХТЕР, кандидат биологических наук; ОС. ФЕДОРОВА; ТВ. ШИШОВА, кандидат сельскохозяйственных наук; Ю.А. ИВАЩЕНКО
Никитский ботанический сад - Национальный научный центр, г. Ялта, АР Крым, Украина
ХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ ПЛОДОВ ГИБРИДНЫХ ФОРМ ПЕРСИКА
Приведены данные по биохимическому составу плодов у элитных гибридных форм персика селекции НБС - ННЦ. Выделено 68 форм с повышенным содержанием отдельных веществ и 22 формы с комплексом биологически активных веществ в плодах.
БИОТЕХНОЛОГИЯ РАСТЕНИЙ
УДК 579:582.26/.27:581.57
А.С. ЛЕЛЕКОВ, кандидат биологических наук; Р.Г. ГЕВОРГИЗ, кандидат биологических наук
Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского НАНУ, г. Севастополь
ДИНАМИКА ПЛОТНОСТИ КУЛЬТУРЫ МИКРОВОДОРОСЛЕЙ В СТАЦИОНАРНОЙ ФАЗЕ РОСТА
Экспериментальное исследование динамики плотности накопительной культуры микроводорослей показало, что в стационарной фазе роста возможны колебания плотности. Остается невыясненным вопрос о природе подобных процессов, являются ли периодические изменения плотности вынужденными или автоколебаниями. Показано, что при моделировании данного явления необходимо учитывать параметры роста, отражающие организацию узкого места метаболизма клетки.
Ключевые слова: микроводоросли, накопительная культура, стационарная фаза
Введение
Стационарная фаза роста накопительной культуры микроводорослей мало изучена, поскольку для биотехнологии не представляет интерес с точки зрения реализации максимальных продуктивностей. В стационарной фазе наблюдаемая продуктивность равна нулю, при этом клетки микроводорослей способны накапливать ценные биологически активные вещества: углеводы, липиды, экзометаболиты и т.д. [8]. При промышленном культивировании микроводорослей в условиях естественного освещения необходима реализация максимальных скоростей роста. На практике не всегда возможно обеспечить оптимальные условия, вследствие чего культура переходит в стационарную фазу роста. Для максимизации скоростей роста и биосинтеза в альгобиотехнологии применяют квазинепрерывный метод культивирования [6]. Однако даже в этих условиях культура может переходить в стационарную фазу роста между двумя последовательными процедурами обмена среды.
Цель данной работы - исследование динамики плотности культуры микроводорослей в стационарной фазе роста.
Объекты и методы исследования
Нами проведено исследование роста культур микроводорослей, полученых из коллекции Л. А. Ланской (ИнБЮМ, г. Севастополь), в стационарной фазе. В первом эксперименте Phaeodactylum tricornutum Bohl. выращивали в накопительном режиме в лабораторной установке [7] на среде Тренкеншу [5] в условиях круглосуточного освещения: средняя освещённость поверхности фотореактора составляла 17 кЛк, температура - 17±2°С. Во втором эксперименте культуру Arthrospira (Spirulina) platensis Geitl. выращивали на среде Заррук [9], средняя освещённость поверхности фотореактора составляла 7,6 кЛк, температура - 25±2°С. В экспериментах фиксировали следующие параметры: температуру, рН культуральной среды и плотность суспензии. рН измеряли с помощью иономера И-160, плотность культуры определяли оптическим методом [3], измеряя величину ослабления светового потока и
рассчитывая по формуле: В = к • D = к • (—IgiTJ) з где Т - величина ослабления, определяемая на КФК-2 на длине волны 750 нм.
Результаты и обсуждение
На рисунке 1 представлена накопительная кривая роста Ph. tricornutum и динамика рН культуральной среды. Стационарная фаза роста характеризовалась постоянством плотности с небольшими отклонениями от среднего значения в пределах
Время, сут. Время, сут.
Рис. 1. Динамика плотности накопительной культуры РН. ЫсогпиШт. (А) и рН
культуральной среды (В)
Обычно при переходе культуры в стационарную фазу роста в качестве лимитирующего фактора выступает концентрация биогенных элементов в питательной среде. Для плотных культур в качестве лимитирующего субстрата может выступать энергетический световой поток. Находясь в стационарной фазе роста (рис. 1 А), культура была лимитирована именно светом, поскольку при увеличении облучённости клеток на пятидесятые сутки биомасса перешла на новый стационарный уровень. Неизменность плотности культуры в стационарной фазе роста подтверждается неизменностью значений рН культуральной среды (рис. 1 В). Представленные экспериментальные результаты (рис. 1) являются классическим примером наличия продолжительной стационарной фазы роста у накопительной культуры микроводорослей.
Для многих видов микроводорослей величина биомассы при достижении значений, близких к максимальному, может изменяться в широком диапазоне. Например, на рисунке 2 приведена накопительная кривая и динамика рН при культивировании А. р1а1гт18.
1.4 -|
.5
т 12.
о <
^ 1Ч
о.
р^ 0.8' л
£ а
л н и о
X I-
о ц
0.6 -
0.4 -
0.2 -
0
А
12 ■
11 -
10 -
7 -
0
П-1-1-1-1-1-1-1
4 6 8 10 12 14 16 18
Время, сут.
6 ■
О
ООО
о СР Л
О
о
о
В
П-1-1-1-1-1-1-1-1
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18
Время, сут.
Рис. 2. Динамика плотности накопительной культуры А. р1а1ет1ъ (А) и рН
культуральной среды (В)
Стационарная фаза роста была непродолжительной. На 8 сутки отмечалось статистически достоверное снижение плотности культуры с последующим восстановлением до первоначального значения, т. е наблюдались колебания плотности и рН среды (рис. 2). При достижении максимальной плотности величина рН среды достигла 12 единиц. Известно, что при таких значения рН в среде практически отсутствуют доступные для ассимиляции клетками гидрокарбонат-ионы [1]. Т. е., по сути, скорость биосинтеза была лимитирована наличием доступных источников углерода в среде. В отличие от эксперимента с Рк. МевгпиЫт в условиях данного эксперимента отсутствовал внешний приток углерода в форме углекислого газа. Следовательно, по углероду система культивирования А. р1а1ет\8 являлась закрытой [2]. Сравнивая рисунок 2 А и 2 В, можно сделать заключение о синфазности колебаний плотности культуры и величины рН. Таким образом, периодическое изменение рН свидетельствует о наличии колебаний плотности культуры. Экспериментально показано (рис. 3), что колебания плотности являются затухающими и могут быть достаточно продолжительными.
9
8
13 -I
12 -
11 -
10 -
X £1
9 т
8 -
7 -
О
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 Время, сут.
Рис. 3. Динамика рН среды накопительной культуры А. р1а1ет1ъ
В биологии известны примеры колебаний различных систем: на популяционном уровне классическим примером является модель «хищник-жертва»; на клеточном уровне введено понятие инерционности биосинтеза, посредством которого объясняется колебания плотности микроорганизмов в хемостате [4]; на молекулярном уровне описаны периодические процессы изменения концентрации веществ в клетках в циклах Кальвина, Кребса и пр. Однако объяснение механизмов и математическое описание колебательных процессов в плотных культурах микроводорослей в литературе не встречается. Возможно, это связано с тем, что использование разработанного в прошлом веке понятийного аппарата субстратзависимого роста не позволяет достаточно точно описать динамику роста в накопительной культуре. Оперируя понятиями: биомасса (В), концентрация лимитирующего субстрата (5), потребность (75), удельная скорость дыхания (цр), динамику роста в закрытой системе можно описать системой дифференциальных уравнений [2]:
Л ш
Мя-В,
где а - коэффициент возврата субстрата из распавшейся биомассы.
Данная система сводится к дифференциальному уравнению второго порядка, корни характеристического уравнения которого равны:
1 _
Кг---~-
-Г.-к.У+Л-а-Г.-к.-ъ
(1)
4
Подкоренное выражение положительно всегда, поэтому корни -действительные, следовательно, конечное решение не может быть выражено с помощью периодических функций. Таким образом, система (1) не описывает колебательные процессы в плотных культурах микроводорослей, но позволяет объяснить продолжительную стационарную фазу роста.
6
Выводы
Экспериментальное исследование динамики плотности культур микроводорослей показало, что в стационарной фазе роста возможны колебания
плотности. Остается невыясненным вопрос о природе подобных процессов, являются ли периодические изменения плотности вынужденными или автоколебаниями. Опираясь на понятийный аппарат, который приводит к системе (1), можно утверждать, что для закрытой системы колебания плотности культуры микроводорослей в стационарной фазе роста невозможны, что противоречит полученным экспериментальным результатам. Таким образом, для построения математической модели, которая позволит описать колебательные процессы, необходимо введение дополнительных параметров, учитывающих организацию «узкого места метаболизма» и структуру клетки.
Список литературы
1. Бородина А. В. Углеродный баланс в культуре цианобактерии Spirulina platensis при выращивании на различных источниках углерода / А. В. Бородина // Экология моря. - 2003. - Вып. 64. - C. 78-81.
2. Геворгиз Р. Г. Моделирование динамики роста популяции микроорганизмов в накопительной культуре. Закрытая система / Р. Г. Геворгиз, А. С. Лелеков, О. Н. Король // Морской экологический журнал. - 2013.
3. Геворгиз Р. Г. Оценка биомассы Spirulina platensis (Nordst.) Geitl. по оптической плотности культуры / Р. Г. Геворгиз, А. В. Алисиевич, М. Г Шматок // Экология моря. - 2005. - Вып. 70. - C. 96-106.
4. Колебательные процессы в биохимических и химических системах. - М.: Наука, 1967. - 440 с.
5. Тренкеншу Р. П. Влияние элементов микроэлементного питания на продуктивность водоросли Рlаtуmоnаs viridis Rouch / Р. П. Тренкеншу, В. Н. Белянин. // Биология моря. - 1979. - № 51. - C. 41-46.
6. Тренкеншу Р. П. Простейшие модели роста микроводорослей. 2. Квазинепрерывная культура / Р. П. Тренкеншу // Экология моря. - 2005. - Вып. 67. -C.98-110.
7. Тренкеншу Р. П. Унифицированная лабораторная установка для исследования низших фототрофов: препринт ОЦ НАНУ / Р. П. Тренкеншу, А. Б. Боровков, А. С. Лелеков. - Севастополь, 2009. - 40 с.
8. Biochemical composition of three algal species proposed as food for captive freshwater mussels /C. M. Gatenby, D. M. Orcutt, D. A. Kreeger et al. // J. Appl. Phycol. -2003. - Vol. 15. - P. 1-11.
9. Zarrouk C. Contribution а l'etude d'une cyanophycee. Influence de divers facteurs physiques et chimiques sur la croissance et la photosynthese de Spirulina maxima (Setch et Gardner) Geitler: Ph D thesis / C. Zarrouk. - Paris, 1966. - 114 p.
Статья поступила в редакцию 16.05.2013 г.
A.S. LELEKOV, Ph.D. in Biology; R.G. GEVORHIZ, Ph.D. in Biology
Institute of Biology of the Southern Seas by A. O. Kovalevsky, the National Academy of
Sciences of Ukraine, Sevastopol, Ukraine
DYNAMICS OF ALGAL CULTURE'S DENSITY IN THE STATIONARY GROWTH PHASE
Researches of algal culture density's dynamic have shown that the biomass oscillations in the stationary growth phase are possible. It remains unclear the nature of such processes,
whether periodic changes of cell density forced or self-excited oscillations. It has been shown that for modeling of this phenomenon is necessary to take into account the growth parameters, reflecting the organization of cell «metabolism bottleneck».
О.С. ЛЕЛЕКОВ, кандидат б1олог1чних наук; Р.Г. ГЕВОРГ1З, кандидат б1олог1чних наук 1нститут бюлогл твденних MopiB ïm. О. О. Ковалевського НАНУ, м. Севастополь, Укра'ша
ДИНАМ1КА Щ1ЛЬНОСТ1 КУЛЬТУРИ М1КРОВОДОРОСТЕЙ У СТАЩОНАРНШ ФАЗ1 РОСТУ
Дослiдження динамши щiльностi накопичувально'1 культури мiкроводоростей показало, що в стацiонарнiй фазi росту можливi коливання величини бiомаси. Залишаеться нез'ясованим питання про природу подiбних процесiв, чи е перiодичнi змши щiльностi вимушеними або автоколиваннями. Показано, що для моделювання даного явища необхiдно враховувати параметри росту, що вщображають органiзацiю «вузького мiсця метаболiзму» клiтини.
А.С. ЛЕЛЕКОВ, кандидат биологических наук; Р.Г. ГЕВОРГИЗ, кандидат биологических наук
Институт биологии южных морей им. А. О. Ковалевского НАНУ, г. Севастополь, Украина
ДИНАМИКА ПЛОТНОСТИ КУЛЬТУРЫ МИКРОВОДОРОСЛЕЙ В СТАЦИОНАРНОЙ ФАЗЕ РОСТА
Исследование динамики плотности накопительной культуры микроводорослей показало, что в стационарной фазе роста возможны колебания плотности. Остается невыясненным вопрос о природе подобных процессов, являются ли периодические изменения плотности вынужденными или автоколебаниями. Показано, что для моделирования данного явления необходимо учитывать параметры роста, отражающие организацию «узкого места метаболизма» клетки.
УДК 582.232:519.876.5
Т.М. НОВИКОВА; А.Б. БОРОВКОВ, кандидат биологических наук Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского НАНУ, г. Севастополь
УПРАВЛЕНИЕ ИНТЕНСИВНОЙ КУЛЬТУРОЙ TETRASELMIS VIRIDIS ПЛОТНОСТАТНЫМ МЕТОДОМ
Экспериментально определена динамика роста микроводоросли Tetraselmis viridis в плотностатном режиме культивирования. Установлена зависимость удельной скорости роста T. viridis от плотности культуры. Проведена апробация простейшей математической модели динамики плотности культуры микроводоросли для режима плотностата на примере T. viridis. Выявлена плотность культуры, которая обеспечивает максимальную удельную скорость роста исследуемой культуры микроводоросли.
Ключевые слова: Tetraselmis viridis, плотностат, математическая модель, управление ростом.
